Protocol for obtaining Cedrela odorata L. plants through tissue culture

Authors

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v9i12.10771

Keywords:

In vitro growth; Micropropagation; Cytokinins; Auxins.

Abstract

The work aimed to develop a basic protocol for micropropagation of Cedrela odorata L. plants from seedlings germinated in vitro. The experiments were conducted at the Embrapa Amazônia Oriental Genetic Resources and Biotechnology laboratory. For the disinfestation of seeds, sodium hypochlorite solution was tested at 0; 1.0; 1.5 and 2.0% for 10, 15 and 20 minutes. For budding induction in MS medium, 5 concentrations of BAP and 2 types of segments were tested and rooting was used 0; 1.0; 1.5; 2.0 and 2.5 mg.L-1 of ANA. The design used was completely randomized or in a factorial arrangement according to the treatments analyzed. The data obtained in the different experiments were subjected to analysis of variance and the means compared by the Tukey test at 5% probability. The results showed that the use of 2.0% sodium hypochlorite for 15 minutes showed the lowest percentage of contamination of the seeds. Treatment with 1 mg. L-1 of BAP promoted the largest number and length of shoots in apical segments and with the addition of 2 g.L-1 of sucrose induced the appearance of shoots in stem segments. The largest number and length of root / explant was obtained with 1 mg. ANA L-1. It is possible to obtain a complete Cedrella odorata plant from disinfected seeds in 2.0% sodium hypochlorite solution, and the use of 1 mg. L-1 of BAP and ANA for budding induction and rooting, respectively.

References

Albino, B. É. S., Canatto, R. A., Cordeiro, A. T., Fukushima, C. H., Pilon, A. M. (2019). Propagação in vitro de jequitibá-branco (Cariniana estrellensis): uma alternativa para programas de reflorestamento. Brazilian Journal of Biosystems Engineering, 13(2), 88-99. doi: http://dx.doi.org/10.18011/bioeng2019v13n2p88-99.

Amaral, V. F. M. (2006). Multiplicação in vitro de Cedrella fissilis Vell. Dissertação Mestrado, Programa dre Pós Graduação em Engenharia Florestal, Universidade Federal de Santa Maria. Santa Maria, RS, Brasil.

Aragão, V. P. M., De Souza, R. Y. R., Reis, R. S., Macedo, A. F., Floh, E. I. S., Silveira, V. (2016). In vitro organogenesis of Cedrela fissilis Vell. (Meliaceae): the involvement of endogenous polyamines and carbohydrates on shoot development. Plant Cell Tissue and Organ Cult, 124, 611-620. doi.org/10.1007/s11240-015-0919-8.

Bianchetti, R. E., DE Resende, C. F., Pacheco, V. S., Dornellas, F. F., DE Oliveira, A. M. S., Freitas, J. C. E., Peixoto, P. H. P. (2017). An improved protocol for in vitro propagation of the medicinal plant Mimosa pudica L. African Journal of Biotechnology, 16(9), 418-428. Doi.org/10.5897/AJB2016.15831.

Botin, A. A., & Carvalho, A. De (2015). Reguladores de crescimento na produção de mudas florestais, Revista de Ciências Agroambientais, 13(1), 83-96.

Brondani, G. E., Dutra, L. F., Grossi, F., Wendling, I., Hornig, J. (2009). Estabelecimento, multiplicação e alongamento in vitro de Eucalyptus benthamii Maiden & Cambage x Eucalyptus dunnii Maiden. Revista Árvore, 33(1), 11-19. doi.org/10.1590/S0100-67622009000100002.

Carvalho, P. E. R. (2010) Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica; Colombo, PR: Embrapa Espécies arbóreas brasileiras. Florestas, 4, 644.

Carvalho, P. E. R. (1994). Espécies Florestais Brasileiras: Recomendações silviculturais, potencialidades e uso da madeira. Colombo, EMBRAPA-CNPF/SPI, 693.

Ferreira, D. F. (2011). Sisvar: A computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, 35(6), 1039-1042.

Ferreira, M. G. R., Cárdenas, F. E. N., Carvalho, C. H. S., Carneiro, A. A., Filho, C. F. D. (2002). Resposta de eixos embrionários de cupuaçu (Theobroma grandiflorum Schum.) à concentração de sais, doses de sacarose e renovação do meio de cultivo. Revista Brasileira de Fruticultura. Jaboticabal, 24(1), 246-248. doi.org/10.1590/S0100-29452002000100053.

Laudano, W. L. DE S. A. (2005). Cultura de calos e criopreservação de sementes de Cedrela fissilis Vellozo (Meliaceae). Dissertação de Mestrado, Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia, Universidade Federal de Santa Catarina. Florianópolis, Brasil.

Lopes, S. C., Lameira, O. A., Fortes, G. R. L., Nogueira, R. C., Pinto, J. E. B. P. (2001). Enraizamento in vitro de Mogno (Swietenia macrophyla King). Cerne, Lavras, 7(1), 124-128.

Maestri, M. P., Cardoso, M. G. C. A., Rabelo, L. K. L. A. (2020). A praga do mogno brasileiro: Hypsipyla grandella Zeller. Biodiversidade, 19(3), 24.

Marchi, R. R. Y., & Fernandes, D. A. (2018). Doses de hipoclorito e tempos de contato no estabelecimento in vitro de sementes de rosa do deserto, (Adenium obesum Roem. & Schult. (Forssk.)), TCC-Agronomia, Centro Universitário de Várzea Grande – UNIVAG, Várzea Grande, Mato Grosso, Brasil.

Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15, 473-497. doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

Nietsche, S., Marques, S. V., Pereira, M. C. T., Salles, B., Xavier, A. A., França, A. C., Lima, C., Silva, L. S. (2006). Estabelecimento in vitro de explantes de três cultivares de bananeira. Ciência Rural, 36(3), 989-991. doi.org/10.1590/S0103-84782006000300043.

Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. B. & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da pesquisa científica [recurso eletrônico [eBook]. Santa Maria. Ed. UAB / NTE / UFSM. Retrieved from https://repositorio.ufsm.br/bitstream/handle/1/15824/Lic_C omputacao_MetodologiaPesquisa-Cientifica.pdf?sequence=1.

Reis, I. N. R. de., Lameira, O. A., Cordeiro, I. M. C. C., Carneiro, A. G., Ferreira, S. F. (2008). Indução in vitro de brotos em paricá (Schizolobium parahyba var. amazonicum). Plant Cell Culture and Micropropagation. Lavras, 4(1), 21-27.

Roussos, P. A., Archimandriti, A., Beldekou, I. (2016). Improving in vitro multiplication of juvenile Europe anchestnut (Castanea sativa Mill) explants by the use of growthret ardants. Scientia Horticulturae, 198, 254-256. doi: 10.1016 / j.scienta.2015.11.039.

Souza, L. M. S., Silva, J. B., Gomes, N. S. B. (2013). Qualidade sanitária e germinação de sementes de copaíba. Bioscience Journal, Uberlândia, 29(1), 1524-1531.

Schottz, E. S., Filho, A. N. K., Tracz, A. L., Koehler, H., Ribas, L. L. F., Quoirin, M. (2007). Multiplicação in vitro de Swietenia macrophylla King (Meliaceae) a partir de material juvenil. Ciência Florestal, 17(2), 109-117. doi.org/10.5902/198050981942.

Sakuragui, C. M., Stefano, M. V., Calazans, L. S. B. (2012) Meliaceae in Lista de Espécies da Flora do Brasil, Jardim Botânico do Rio de Janeiro. 2012. Recuperado de < http:// floradobrasil.jbrj.gov.br/2012/FB009998>.

Taiz, L., & Zeiger, E. (2004). Fisiologia vegetal. Porto Alegre: Artmed, 3, 719.

Torres, A. C., Caldas, L. S., Buso, J. A. (1998) Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas, Brasília- DF: EMBRAPA/CBAB, 1, 509.

Vankova, R., Hsiao, K. C., Bornman, C. H., Gaudinova, A. (1991). Effects of synthetic cytokinins on levels of endogenous cytokinins and respiration patterns of Beta vulgaris cells suspension. Journal of Plant Growth Regulation, 10, 197-199. doi.org/10.1007/BF02279334.

Published

14/12/2020

How to Cite

LAMEIRA, O. A. .; CORDEIRO, I. M. C. C. .; CAMPELO, M. F. Protocol for obtaining Cedrela odorata L. plants through tissue culture. Research, Society and Development, [S. l.], v. 9, n. 12, p. e9491210771, 2020. DOI: 10.33448/rsd-v9i12.10771. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/10771. Acesso em: 23 nov. 2024.

Issue

Section

Agrarian and Biological Sciences