Relación de la viabilidad del semen criopreservado con la tasa de preñez en la inseminación artificial a tiempo fijo de vacas Nelore

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v10i2.12184

Palabras clave:

Bovino; Citometría de flujo; Preñez; Sistema CASA.

Resumen

El objetivo fue evaluar la relación entre el análisis de la integridad de la membrana, la actividad mitocondrial y la cinética de los espermatozoides bovinos, con taxones de preñez en hembras Nellore sometidas a inseminación artificial por tiempo fijo (IATF). Muestras de semen fueron validadas por microscopía óptica para la motilidad, vigor y morfología de los espermatozoides; la citometría de flujo evaluó la integridad de la membrana y la función mitocondrial; y el sistema CASA analizó la cinética de los espermatozoides. Las vacas fueron sometidas al mismo protocolo IATF e inseminadas con el mismo equipo técnico. Una relación entre los diversos se encuentra a través de la correlación de Pearson. Un análisis de conglomerados evaluó la relación entre las tasas de preñez y combinaciones de pruebas in vitro (P ≤ 0,05). Las señales de semen de toros Angus (89,2 ± 5,5) presentarán un VSL más alto (P = 0,004) que el semen de Nelore (78,6 ± 8,6), pero esto no afectó la tasa de preñez (Nelore: 51, 0% frente a Angus: 50,5%, P> 0,05). La citometría de flujo identificó 44,3% de integridad de membrana y 47,3% de integridad mitocondrial. Se seleccionaron cinco grupos, y el grupo que contiene valores más equilibrados entre la velocidad progresiva y la actividad mitocondrial (VSL 71,16 μm / s, MITO 49,69%, TxP 62,4%) demostrarán tasas de preñez más altas. Muestras de semen bovino con taxones progresivos y actividad mitocondrial equilibrada muestran una mejora de la fertilidad para el programa IATF.

Citas

Aitken, R. John, Ryan, A. L., Baker, M. A., & McLaughlin, E. A. (2004). Redox activity associated with the maturation and capacitation of mammalian spermatozoa. Free Radical Biology and Medicine, 36(8), 994–1010. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2004.01.017

Aitken, R. J., Paterson, M., Fisher, H., Buckingham, D. W., & Van Duin, M. (1995). Redox regulation of tyrosine phosphosryllation in human spermatozoa and its role in the controlo f human sperm function. Free Radic Biol Med, 36, 994–1010.

Amann, R. P., & Waberski, D. (2014). Computer-assisted sperm analysis (CASA): Capabilities and potential developments. Theriogenology, 81(1), 5-17.e3. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.09.004

Arruda, R. L., Orro, I. R., Passos, T. S., Costa e Silva, E. V., & Zúccari, C. E. S. N. (2010). Técnicas para avaliação laboratorial da integridade estrutural e funcional do sêmen congelado de touros. Revista Brasileira de Reprodução Animal, 168–184.

ASBIA. (2015). Relatório Estatístico De Importação, Exportação E Comercialização De Sêmen.

Baruselli, P. S., Ferreira, R. M., Sá, Filho, M. F., & Bó, G. A. (2018). Review: Using artificial insemination v. natural service in beef herds. Animal, 12(s1), s45–s52. https://doi.org/10.1017/S175173111800054X

Baruselli, P, Sales, J. N., Sala, R., Vieira, L., & Sá Filho, M. (2012). History, evolution and perspect ives of timed artificial in semination programs in Brazil. Animal Reproduction, 9(3), 139–152.

Baruselli, P. S, Reis, E. L., Marques, M. O., Nasser, L. F., & Bó, G. A. (2004). The use of hormonal treatments to improve reproductive performance of anestrous beef cattle in tropical climates. Animal Reproduction Science, 82–83, 479–486. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2004.04.025

Bergstein, T. G., Weiss, R. R., & Bicudo, S. D. (2014). Técnicas de análise de sêmen. 189–194.

Blom, E. (1983). Pathological condictions in the genital organs and in the semen of group for rejection of breeding bulls for import or export to and from Denmark, 1958-1982. Nordisk Veterinaer Medicin, 3, 105–130.

Bó, G. A., Huguenine, E., de la Mata, J. J., Núñez-Olivera, R., Baruselli, P. S., & Menchaca, A. (2018). Programs for fixed-time artificial insemination in South American beef cattle. Animal Reproduction, 15(Irrs), 952–962. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR2018-0025

CBRA, C. B. de R. A.-. (2013). Manual para exame andrológico e avaliação de sêmen animal.

de Lamirande, E., & Cagnon, C. (1993). Human sperm hyperactivation and capacitation as parts of an oxidative process. Free Radical Biology and Medicine, 14(2), 157–166. https://doi.org/10.1016/0891-5849(93)90006-G

Fontes, P. L. P., Oosthuizen, N., & Cliff Lamb, G. (2020). Reproductive management of beef cattle. Animal Agriculture, 57–73. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-817052-6.00004-5

Halliwell, B., & Gutteridge, J. M. C. (1999). Free Radicals in Biology and Medicine. (3rd ed.).

Hancock, G. L. (1959). The morphologic characteristics of spermatozoa and fertility. Internacional Journal of Fertility, 4, 347–359.

Hirao, K. (1975). A multiple regression analysis on six measurements of bovine semen characteristics for fertility. Japanese Journal of Veterinary Research, 4, 204–208.

Kathiravan, P., Kalatharan, J., Karthikeya, G., Rengarajan, K., & Kadirvel, G. (2011). Objective Sperm Motion Analysis to Assess Dairy Bull Fertility Using Computer-Aided System - A Review. Reproduction in Domestic Animals, 46(1), 165–172. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2010.01603.x

Koppers, A. J., De Iuliis, G. N., Finnie, J. M., McLaughlin, E. A., & Aitken, R. J. (2008). Significance of mitochondrial reactive oxygen species in the generation of oxidative stress in spermatozoa. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 93(8), 3199–3207. https://doi.org/10.1210/jc.2007-2616

Lamirande, E. de, Tsai, C., Harakat, A., & Gagnon, C. (1998). Involvement of reactive oxygen species in human sperm arcosome reaction induced by A23187, lysophosphatidylcholine, and biological fluid ultrafiltrates. Journal of Andrology, 19(1995), 585–594.

Machado, R., Corrêa, R. F., Barbosa, R. T., & Bergamaschi, M. A. C. M. (2008). Escore da condição corporal e sua aplicação no manejo reprodutivo de ruminantes. Circular Técnica, 57, 1–16.

Marques, M. de O., Morotti, F., Lorenzetti, E., Bizarro-Silva, C., & Seneda, M. M. (2018). Intensified use of TAI and sexed semen on commercial farms. Animal Reproduction, 15(3), 197–203. https://doi.org/10.21451/1984-3143-AR2018-0070

Martinez-Pastor, F., Johannisson, A., Gil, J., Kaabi, M., Anel, L., Paz, P., & Rodriguez-Martinez, H. (2004). Use of chromatin stability assay, mitochondrial stain JC-1, and fluorometric assessment of plasma membrane to evaluate frozen-thawed ram semen. Animal Reproduction Science, 84(1–2), 121–133. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2003.12.006

Meneghetti, M., Filho, O. G. S., Peres, R. F. G., Lamb, G. C., & Vasconcelos, J. L. M. (2009). Fixed-time artificial insemination with estradiol and progesterone for Bos indicus cows I: Basis for development of protocols. Theriogenology, 72(2), 179–189. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2009.02.010

Negreiros, M. P. M., Seugling, G. H. F., Almeida, A. B. M., Hidalgo, M. M. T., Martins, M., Isabel, M., Blaschi, W., & Barreiros, T. R. R. (2020). Influence of nutritional and ovarian parameters on pregnancy rates of Nelore cows artificially inseminated at fixed time. Research, Society and Development, 9(9), 1–18. http://www.elsevier.com/locate/scp

O’Connell, M., McClure, N., & Lewis, S. (2002). The effects of cryopreservation on sperm morphology, motility and mitochondrial function. Human Reproduction, 17(3), 704–709. https://doi.org/10.1093/humrep/17.3.704

Oliveira, L. Z., Arruda, R. P. de, Andrade, A. F. C. de, Celeghini, E. C. C., Reeb, P. D., Martins, J. P. N., Santos, R. M. dos, Beletti, M. E., Peres, R. F. G., Monteiro, F. M., & Hossepian de Lima, V. F. M. (2013). Assessment of in vitro sperm characteristics and their importance in the prediction of conception rate in a bovine timed-AI program. Animal Reproduction Science, 137(3–4), 145–155. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.01.010

Pinheiro, O. L., Barros, C. M., Figueiredo, R. A., Valle, E. R., Encarna, R. O., Padovani, C. R., & Ib, F. (1998). Estrous Behavior And The Estrus-To-Ovulation Interval In Nelore Cattle ( Bos Indicus ) With Natural Estrus Or Estrus Induced With. Theriogenology, 55(014), 667–681.

Rodríguez-Martínez, H. (2003). Laboratory Semen Assessment and Prediction of Fertility : still Utopia ?* Outcomes from Routine Laboratory Sperm. Reproduction of Domestic Animals, 38, 312–318.

Rui, B., Bicudo, L., & Arruda, R. (2015). Ferramentas para avaliação da funcionalidade da mitocôndria espermática. Revista Brasileira de Reprodução Animal, 39(2), 277–283.

Sellem, E., Broekhuijse, M. L. W. J., Chevrier, L., Camugli, S., Schmitt, E., Schibler, L., & Koenen, E. P. C. (2015). Use of combinations of in vitro quality assessments to predict fertility of bovine semen. Theriogenology, 84(9), 1447-1454.e5. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2015.07.035

Sudano, M. J., Crespilho, A. M. I., Fernandes, C. B., Junior, A. M., Papa, F. O., Rodrigues, J., MacHado, R., & Landim-Alvarenga, F. D. C. (2011). Use of bayesian inference to correlate in vitro embryo production and in vivo fertility in Zebu Bulls. Veterinary Medicine International, 2011, 10–12. https://doi.org/10.4061/2011/436381

Tortorella, R. D., Modesto, M. R., Neves, J. P., & Ramos, A. F. (2016). Development of fixed-time artificial insemination protocols for locally adapted Curraleiro Pé-Duro cows. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinaria e Zootecnia, 68(5), 1159–1167. https://doi.org/10.1590/1678-4162-8555

Troiano, L., Granata, A. R. M., Cossarizza, A., Kalashnikova, G., Bianchi, R., Pini, G., Tropea, F., Carani, C., & Franceschi, C. (1998). Mitochondrial membrane potential and DNA stainability in human sperm cells: A flow cytometry analysis with implications for male infertility. Experimental Cell Research, 241(2), 384–393. https://doi.org/10.1006/excr.1998.4064

Tsakmakidis, I. A. (2010). Ram semen evaluation: Development and efficiency of modern techniques. Small Ruminant Research, 92(1–3), 126–130. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2010.04.017

Vianna, F. P., Papa, F. O., Zahn, F. S., Melo, C. M., & Dell’Aqua, J. A. (2009). Thermoresistance sperm tests are not predictive of potential fertility for cryopreserved bull semen. Animal Reproduction Science, 113(1–4), 279–282. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2008.06.009

Descargas

Publicado

25/02/2021

Cómo citar

PEREIRA, F. R. .; ALMEIDA, A. B. M. de; HIDALGO, M. M. T.; POTIENS, J. R.; SOUZA, A. K. .; LOPES, F. G. .; BARREIROS, T. R. R.; MOROTTI, F.; MARTINS, M. I. M. Relación de la viabilidad del semen criopreservado con la tasa de preñez en la inseminación artificial a tiempo fijo de vacas Nelore. Research, Society and Development, [S. l.], v. 10, n. 2, p. e49710212184, 2021. DOI: 10.33448/rsd-v10i2.12184. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/12184. Acesso em: 29 sep. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas