Actividad antimicrobiana de hongos endofíticos aislados de Brugmansia suaveolens Bercht. & J. Presl
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i14.21646Palabras clave:
Brugmansia suaveolens; Hongos endofíticos; Eliciação; hongos endofíticos; Brugmansia suaveolens Bercht. & J. Presl.; elicitationResumen
Los productos naturales producidos a partir de hongos endófitos tienen un amplio espectro de actividad biológica y pueden agruparse en varias categorías. Los antimicrobianos constituyen un grupo importante de agentes terapéuticos, que pueden producirse y obtenerse de organismos vivos. El objetivo principal de este estudio es investigar los hongos endofíticos y las hojas de Brugmansia suaveolens Bercht. & J. Presl como inductores, con el objetivo de la producción de sustancias bioactivas con propiedades antimicrobianas. Los extractos se prepararon a partir de 19 hongos aislados de las hojas de B. suaveolens Bercht. & J. Presl, utilizados como elicitor biótico. Los extractos se obtuvieron por fermentación en medio sumergido con la adición de hojas de sus hojas secas, y se evaluó la actividad antimicrobiana de sus extractos mediante el método de difusión en agar. Los resultados mostraron que el 57% de los hongos endofíticos mostraron actividad antimicrobiana después de la fermentación con el elicitor. Se observó que la actividad antimicrobiana se incrementó en comparación con los cultivos de control. Las hojas de B. suaveolens Bercht. & J. Presl presentaron bioactivos que estimularon la producción de una sustancia con actividad antimicrobiana por hongos endofíticos, el estudio de dichos compuestos mostró ser prometedor para esclarecer el potencial de aplicación de estos bioactivos.
Citas
Wu, F & Tanksley, S. D. (2010) Chromosomal evolution in the plant Family Solanaceae. Bmc Genomics 11, 182. PMID: 20236516 PMCID: PMC2847972 DOI: 10.1186/1471-2164-11-182
Bauer A.W., Kirby W.M.M., Sherris J.C. (1996). Turck M. Antibiotic susceptibility testing by standardized single method. Am. J. Clin. Pathol. 1996, 45:493-496. PMID: 5325707.
Broecling, C.D. Huhman, D. V. Farag, M. A. Smith, J. T. May, G. D. Mendes, P. Dixon, R. A. Summer L. W. (2005). Metabolic profiling of Medicago truncatula cell cultures reveals the effects of biotic and abiotic elicitors on metabolism. J Exp Bot, 56(410): 323-36. PMID: 15596476 DOI: 10.1093 / jxb / eri058.
Guimarães, D. O.; Da Silva. Momesso, L.; Pupo, M. T. (2010). Antibióticos: Importância Terapêutica e Perspectivas para a Descoberta e Desenvolvimento de Novos Agentes. Química Nova, v. 33, n. 3, p. 667-679. https://doi.org/10.1590/S0100-40422010000300035
Qian, Z.G. Zhao, H. J. Xu, Y. Qian, X. Zhong J. J. (2006). Novel chemically synthesized salicylate derivative as an effective elicitor for inducing the biosynthesis of plant secondary metabolites. Biotechnol Prog. 22(1): 331-3. PMID: 16454528 DOI: 10.1021 / bp0502330.
Oliveira, R.B.; Pires S.A. G. Costa, F.B. (2003). In: Plantas tóxicas. Conhecimento e prevenção de acidentes. Ed. Holos, p. 34-37.
Otero, J.M.; Nielsen, J. (2010). Industrial systems biology. Biotechnol. Bioeng, 105, 439-460. https://doi.org/10.1002/bit.22592
Ribeiro, I. Ribeiro, M. H. L (2008). Naringin and naringenin determination and control in grapefruit juice by a validated HPLC method. Food Control. v.19, n.4, p.432-438. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2007.05.007
Simões, C.M.O.; Schenkel, E.P.; Gosmann, G.; Mello, J.C.P. De; Mentz, L.A. Petrovick, P.R. (1999). Farmacognosia da planta ao medicamento. Porto Alegre: UFRGS e UFSC, 821p.
Strobel GA, Daisy B, Castillo U. Harper J. (2004). Natural products from endophytic microrganisms. J Nat Prod, 67(2):257–268. PMID: 14987067 DOI: 10.1021 / np030397v.
Ting, D., Wei, S.W., Xia, Q.Y. Yang, J.H. (2013). Studies on some active components and antimicrobial activities of the fermentation broth of endophytic fungi DZY16 isolated from Eucommia ulmoides oliv, Afr. J. Biotechnol. 12 15. DOI: 10.5897 / AJB11.2638
Yoshikawa, M. Yamaoka, N. Takeuchi, Y. (1993). Elicitors: Their significance and primary modes of action in the induction of plant defense reactions. Plant Cell Physiol, 34: 1163-1173. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.pcp.a078537
Zhang H.W., Song Y.C. Tan R.X. (2006). Biology and chemistry of endophytes. Nat Prod Rep 23:753–771. PMID: 17003908 DOI: 10.1039 / b609472b
Zheng, W.; Wang, S.Y. (2001). Antioxidant activity and phenolic compounds in selected herbs. J. Agric. Food Chemistry. Chicago: v.49, p. 5165-5170. PMID: 11714298 DOI: 10.1021 / jf010697n
Radman, R. Saez, T. Bucke, C. Keshavarz T. (2003). Elicitation of plant and microbial systems. Biotechnol Appl Biochem. 37: 91-102. PMID: 12578556 DOI: 10.1042 / ba20020118
Gao F. Yong Y. Dai. C. (2011). Effects of endophytic fungal elicitor on two kinds of terpenoids production and physiological indexes in Euphorbia pekinensis suspension cells. J. Med. Plant. Res. Vol. 5(18), pp. 4418-4425. https://doi.org/10.5897/JMPR.9000519
NCSLI Clinical and laboratory standards institute. (2011). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 21st informational supplement. CLSI document M100-S21. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA, 2011. ISBN 1-56238-742-1
LIU, D. Z.; LIANG, B. W.; LI, X. F.; LIU, Q. (2014). Induced production of new diterpenoids in the fungus Penicillium funiculosum. Natural Product Communications, v. 9, n. 5, p. 607 - 608. https://doi.org/10.1177/1934578X1400900502
Salvador, M.J.; Ferreira, E.O.; Pral, E.M.F.; Alfieri, S.C.; Albuquerque, S.; Ito, I. Y. & Dias, D.A. (2002). Bioactivity of crude extracts and some constituents of Blutaparon portulacoides (Amaranthaceae). Phytomedicine, 9 (6), 566 - 571. PMID: 12403168 DOI: 10.1078 / 09447110260573227
Candido, R.C.; Toloi, M.R.T.; Frnaceschini, S.A.; Garcia, F.R. & Minto, E.C.M. (1998). In vitro activity of antimycotic agents determined by E-test method against vagina shape Candid a species. Mycopathologia. 144 (1), 15 - 20. PMID: 10422269 DOI: 10.1023 / a: 1006928628550
Penna, C.; Marinos, S.; Vivot, E.; Cruañes, M.C.; Munoz, J.D.; Cruanes, J.; Ferraro, G.; Gutkind, G. & Martino, V. (2001). Antimicrobial activity of Argentine plants used in the treatment of infectious diseases. Isolation of active compounds from Sebastiania brasiliensis. Journal of Ethnopharmacology, 77 (1), 37 – 40. PMID: 11483376 DOI: 10.1016 / s0378-8741 (01) 00266-5
Nogueira, L.G. (2009). Determinação do potencial biológico e antioxidante de extratos de casca de raiz de Maytenus ilicifolia (Celastraceae). 88p. Masters dissertation, Araraquara. Universidade Estadual Paulista. “Júlio de Mesquita Filho”. Faculty of Pharmaceutical Sciences.
Bracjet, A.; Mateus, L., Cherkaooui, S.; Christen, P.; Gauvrit, J.-Y.; Lantéri, P.; Veuthey, J.-L. (1999). Apllication of central composite designs in the supercritical fluid extraction of tropane alkaloids in plant extracts. Analysis, v. 27, p. 772- 778. DOI: 10.1051 / analusis: 1999143
Cusido, R.M.; Palazón, J.; Piñol, M.T.; Bonfill, M.; Morales, C. (1999). Datura metel: in vitro production of tropane alkaloids. Planta Medica, v.65, p. 144- 148. PMID: 10193206 DOI: 10.1055 / s-1999-13976
Azevedo, J. L.; Costa, S. O. P. (1973). Exercícios Práticos de Genética. Companhia Editora Nacional – EDUSP, São Paulo-SP. 288 p.
Castellani, A. (1939). Viability of Mold Culture of Fungi in Distilled Water. J. Trop. Med. Hyg. 42: 225
Galvão, R. M. S. (1998). Variabilidade Genética Detectada por RAPD em Glomerella cingulata, um dos fungos endofíticos mais frequentes, isolados de Theobroma grandiflorum, Pueraria phaseoloides e Scleria pterota. Masters dissertation, UFSCar/UFAM. Manaus, Amazonas. 151p.
Li, J.Y.; Harper, J. K.; Grant, D. M.; Tombe, B. O.; Bashyal, B.; Hess, W. M.; Strobel, G. A. (2001). Ambuic Acid, a Highly Functionalized Cyclohexenone with Antifungal Activity from Pestalotiopsis spp. and Monochaetia sp. Phytochemistry, 56(5): 463-468. PMID: 11261579 DOI: 10.1016 / s0031-9422 (00) 00408-8
Li, J.Y; Strobel, G.A. (2001). Jesterone and Hydroxy-Jesterone Antioomycete Cyclohexenone Epoxides From the Endophytic Fungus Pestalotiopsis jesteri. Phytochemistry, 57(2): 262-265. PMID: 11382242 DOI: 10.1016 / s0031-9422 (01) 00021-8.
Stamford, T. L. M.; Araújo, J. M.; Stamford, N. P. (1998). Atividade enzimática de microrganismos isolados do Jacatupé (Pachyrhizus erosus L. Urban). Ciênc. Tecnol. Aliment.18(4): 382-385. https://doi.org/10.1590/S0101-20611998000400004
Kleinkauf, H.; Von Dohren, H. (1990). Biosynthesis of Peptide Antibiotics. European Journal of Biochemistry, 192: 1-15. PMID: 2205497 DOI: 10.1111 / j.1432-1033.1990.tb19188.x
Alexopoulos, C.J.; Mims, C.W. (1996). Introductory Mycology. 4th edition. John Wiley & Sons INC, USA. 869p. ISBN: 978-0-471-52229-4
Demain, A. (1992). Microbial Secondary Metabolism: a New Opportunity for Industry. Ciba Foundation Symposium. 3-23. PMID: 1302184 DOI: 10.1002 / 9780470514344.ch2
Trilli, V.; Michilini, V.; Montovani, V.; Pirt, S.J. (1978). Development of the agar disk method for the rapid selection of cephalosporim producers with improved yields. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 13(1): 7-13. DOI: https://doi.org/10.1128/AAC.13.1.7
Bach, E.E.; Kimati, H. (1999). Purification and Characterization of Toxins from Wheat Isolates of Drechslera tririci-repentis, Bipolaris bicolor, and Bipolaris sorokiniana. Journal of Venomous Animals and Toxins, 5(2): 184-199. DOI: https://doi.org/10.1590/S0104-79301999000200006
Wang, J.; Li, G.; Lu, H.; Zheng, Z.; Huang, Y.; Su, W. (2000). Taxol from Tubercularia sp. strain TF5, an endophytic fungus of Taxus mairei. FEMS-Microbiology Letters, 193: 249-253. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2000.tb09432.x
Rodrigues, K. F.; Hesse, M.; Werner, C. (2000). Antimicrobial activities of secondary metabolites produced by endophytic fungi from Spondias mombin. Journal Basic Microbial, 40(4): 261-267. PMID: 10986672 DOI: 10.1002 / 1521-4028 (200008) 40: 4 <261 :: AID-JOBM261> 3.0.CO; 2-D
El-Hawary, S. S.; Mohammed, R.; AbouZid, S. F.; Bakeer, W.; Ebel, R.; Sayed, A. M.; Rateb, M. E. (2016). Solamargine production by a fungal endophyte of Solanum nigrum. Journal of Applied Microbiology, 120, 900—911. PMID: 26811095 DOI: 10.1111 / jam.13077
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