Composición química y actividad antibacteriana de los aceites comerciales de copaiba (Copaifera spp.) contra patógenos bacterianos aislados de mamoplastia posoperatoria
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8593Palabras clave:
Viabilidad microbiana; Bacterias gramnegativas; Bacterias grampositivas; Mamoplastia; Staphylococcus aureus.Resumen
Las cirugías plásticas se consideran procedimientos limpios o potencialmente contaminados. La incidencia de infección en la mamoplastia de reducción es del 1,1 al 22% y los principales agentes etiológicos son las bacterias presentes en la piel y mucosas como Staphylococcus aureus. Debido al aumento de la resistencia bacteriana con el uso generalizado de antibióticos, identificar compuestos naturales con acción antibacteriana sobre las heridas de la cirugía postoperatoria es fundamental. Así, el objetivo de esta investigación fue la identificación de compuestos y la evaluación de la acción antibacteriana de Copaifera spp. (copaiba) contra cepas estándar y patógenos bacterianos aislados de la cirugía de mamoplastia postoperatoria. Para ello, cuatro aceites de copaiba comerciales (1, 2, 3 y 4) se sometieron a un análisis de cromatografía de gases / espectrometría de masas. Se evaluó la actividad antimicrobiana in vitro y la concentración mínima inhibitoria (CMI) de los aceites en cepas estándar y muestras clínicas, así como la sensibilidad a los antibióticos de disco y el efecto sinérgico de los aceites y antibióticos. Se identificaron un total de 72 compuestos, que representan ~ 99% de los constituyentes volátiles de los aceites. Los sesquiterpenos comprendieron entre el 67,24 y el 90,11% de los componentes, siendo el β-cariofileno el más común. Los aceites 1 y 2 fueron los más activos en la cepa de S. aureus, con CMI similar al aceite 3, mientras que el aceite 4 no presentó actividad. El mismo patrón se observó en las muestras clínicas. Además, Oil 2 presentó sinergismo cuando se asoció con amoxicilina. Los efectos sinérgicos de los aceites de Copaiba pueden representar una fuente de compuestos terapéuticos contra infecciones bacterianas en heridas quirúrgicas.
Citas
Adams, R. P. (2012). Identification of essential oils components by gas chromatography/mass spectroscopy. 4.ed. AlluredBussiness Media, USA, pp. 804.
Arruda, C., Mejía, J. A. A., Ribeiro, V. P., Borges, C. A. G., Martins, C. H. G., & Veneziani, R. C. S. et al. (2009). Occurrence, chemical composition, biological activities and analytical methods on Copaifera genus – a review. Biomed.Pharmacother. 109, 1–20.
Balouiri, M., Sadiki, M., & Ibnsouda, S. K. (2016). Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: a review. J. Pharm. Anal.6,71–79.
Barbosa, P. C. S., Medeiros, R. S., Sampaio, P. T. B., Vieira, G., Wiedemann, L. S. M., & Veiga-Junior, V. F. (2012). Influence of abiotic factors on the chemical composition of copaiba oil (Copaiferamultijuga Hayne): soil composition, seasonality and diameter at breast height. J. Braz. Chem. Soc.23, 10, 1823–1833.
Belletti, N., Ndagijimana, M., Sisto, C., Guerzoni, M. E., Lanciotti, R., & Gardini, F. (2004). Evaluation of the antimicrobial activity of citrus essences on Saccharomyces cerevisiae. J. Agric. Food Chem. 52, 6932–6938.
Cascon, V., & Gilbert, B. (2000). Characterization of the chemical composition of oleoresins of CopaiferaguianensisDesf., Copaiferaduckei Dwyer and Copaiferamultijuga Hayne. Phytochem.55, 773–778.
Chiavari-Frederico, M.O., Barbosa, L.N., dos Santos, I.C., da Silva, G.R., de Castro, A.F., Bortolucci, W.C., Barboza, L.N., Campos, C.F.A.A., Gonçalves, J.E., Menetrier, J.V., Jacomassi, E., Gazim, Z.C., Wietzikoski, S., Lívero, F.A.R., Wietzikoski Lovato, E.C. (2020) Antimicrobial activity of Asteraceae species against bacterial pathogens isolated from postmenopausal women. Plos one. 5(1), e0227023. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0227023
CLSI. (2018). Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals. 4th ed. CLSI supplement VET08. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standards Institute. 1–170.
Coates, A. R. M., & Hu, Y. (2007). Novel approaches to developing new antibiotics for bacterial infections. Br. J.Pharmacol. 152, 1147–1154.
El-Kalamouni, C., Venskutonis, P. R., Zebib, B., Merah, O., Raynaud, C., & Talou, T. (2017). Antioxidant and antimicrobial activities of the essential oil of Achilleamillefolium L. grown in France. Medicines. 4, 1-10.
Fair, R. J., & Tor, Y. (2014). Antibiotics and bacterial resistance in the 21st century. Perspect.Medicin. Chem. 6, 25–64.
Feldman, E. M., Kontoyiannis, D. P., Sharabi, S. E., Lee, E., Kaufman, Y., & Heller, L. (2010). Breast implant infections: is cefazolin enough? Plast.Reconstr. Surg.126, 779–785.
Franco, D., Cardoso, F. L. L., & Franco, T. (2006). Antibiotic use in plastic surgery. Rev. Soc. Bras. Cir.Plast.21, 112–115.
Fung, H. B., Kirschenbaum, H. L., & Ojofeitimi, B. O. (2001). Linezolid: an oxazolidinone antimicrobial agent. Clin.Ther. 23, 356–391.
Gazim, Z. C., Amorim, A. C. L., Hovell, A. M. C., Rezende, C. M., & Nascimento, I. A. et al. (2010). Seasonal variation, chemical composition, and analgesic and antimicrobial activities of the essential oil from leaves of Tetradeniariparia(Hochst.) codd in southern Brazil. Mol.15, 5509–5524.
Goren, A. C., Piozz, F., Akcicek, E., Kiliç, T., Çarikçi, S., & Mozioglu, E. et al. (2011). Essential oil composition of twenty-two Stachysspecies (mountain tea) and their biological activities. Phytochem.Lett. 4, 448–453.
Gravante, G., Caruso, R., Araco, A., & Cervelli, V. (2008). Infections after plastic procedures: incidences, etiologies, risk factors, and antibiotic prophylaxis. Aesth.Plast. Surg.232, 243–251.
Gutwein, L. G., Panigrahi, M., Schultz, G. S., & Mast, B. A. (2012). Microbial barriers. Clin.Plast. Surg. 39, 229–238.
Hashim, S. E., Sirat, H. M., & Yen, K. H. (2014). Chemical compositions and antimicrobial activity of the essential oils of Hornstedtiahavilandii (Zingiberaceae). Nat. Prod.Commun. 9, 119–120.
Jawetz, E., Melnick, J. L., Adelberg, E. A., Jawetz, Melnick & Adelberg's. (1991). Med. Microbiol. 19aed. Typopress, Beirut, Lebanon. 632.
Kaye, K. S., Anderson, D. J., Sloane, R., Chen, L. F., Choi, Y., & Link, K. et al. (2009). The impact of surgical site infection on older operative patients. J. Am.Geriatr. Soc. 57, 46–54.
Khan, U. D. (2010). Breast augmentation, antibiotic prophylaxis, and infection: comparative analysis of 1,628 primary augmentation mammoplasties assessing the role and efficacy of antibiotics prophylaxis duration. Aesth.Plast. Surg.34, 42–47.
Krumperman, & P. H. (1983). Multiple antibiotic resistance indexing of Escherichia coli to identify high-risk sources of fecal contamination of foods. Appl.Environ. Microbiol.46, 165–170.
Leandro, L. M., Varas, F. S., Barbosa, P. C., Neves, J. K., Silva, J. A., & Veiga-Junior, V. F. (2012). Review: chemistry and biological activities of terpenoids from copaiba (Copaifera spp.) oleo-resins. Mol.17, 3866–3889.
Matsuo, Y., Sakagami, H., & Mimaki, Y. (2014). A rare type of sesquiterpene and β-santalol derivatives from Santalum album and their cytotoxic activities. Chem. Pharm. Bull. 62, 1192–1199.
Monzote, L., Scull, R., Cos, P., & Setzer, W. N. (2017). Essential oil from Piper aduncum: chemical analysis, antimicrobial assessment, and literature review. Medicines 4, 49.
Nascimento, P. F. C., Nascimento, A. C., Rodrigues, C. S., Antoniolli, A. R., Santos, P. O., & Barbosa Junior, A. M. et al. (2007). Antimicrobial activity of the Essentials oils: a multifactor approach of the methods. Rev. Bras.Farmacogn. 17, 108–113.
Negi, P. S. (2012). Plant extracts for the control of bacterial growth: efficacy, stability and safety issues for food application. Int. J. Food Microbiol. 156, 7–17.
Njume, C., Afolayan, A. J., Green, E., & Ndip, R. N. (2011). Volatile compounds in the stem bark of Sclerocaryabirrea (Anacardiaceae) possess antimicrobial activity against drug-resistant strains of Helicobacter pylori. Int J.Antimicrob. Agents. 38, 319–324.
Okdakowska-Jedynak, U., Paczek, L., Krawczyk, M., Zieniewicz, K., Nyckowski, P., & Pawlak, J. et al. (2003). Resistance of gram-positive pathogens to antibiotic is a therapeutic challenge after liver transplantation: clinical experience in one center with linezolid. Transplant. Proc. 35, 2304–2306.
Payne, D. J., & Gwynn, M. N., Holmes, D. J., Pompliano, D. L. (2007). Drugs for bad bugs: confronting the challenges of antibacterial discovery. Nat. Rev. Drug.Discov. 6, 29–40.
Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Pereira, F. J., Shitsuka, R. (2018) Metodologia do trabalho científico. Santa Maria: UAB / NTE / UFSM.
Pieri, F. A., Silva, V. O., Souza, C. F., Costa, J. C. M., Santos, L. F., & Moreira, M. A. S. (2012). Antimicrobial profile screeningoftwooilsofCopaifera genus. Arq. Bras. Med. Vet.Zootec.64, 241–244.
Saepou, S., Pohmakotr, M., Reutrakul, V., Yoosook, C., Kasisit, J., & Napaswad, C. et al. (2010). Anti-HIV-1 diterpenoids from leaves and twigs of Polyalthiasclerophylla. Planta Med.76, 721–725.
Santos, A. O., Ueda-Nakamura, T., Dias Filho, B. P., Veiga Junior, V. F., Pinto, A. C., & Nakamura, C. V. (2008). Antimicrobial activity of Brazilian copaiba oils obtained from different species of the Copaifera genus. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 103, 277–281.
Sebisubi, F. M., Odyek, O., Anokbonggo, W. W., Ogwal-Okeng, J., Carcache-Blanco, E. J., & Ma, C. et al. (2010). Antimalarial activity of Aspiliapruliseta, a medicinal plant from Uganda. Planta Med.76, 1870–1873.
Spear, S. L., & Seruya, M. (2010). Management of the infected or exposed breast prosthesis: a single surgeon’s 15-year experience with 69 patients. Plast.Reconstr. Surg.125, 1074–1084.
Teng, Y., Yang, Q., Yu, Z., Zhou, G., Sun, Q., & Jin, H. et al. (2010). In vitro antimicrobial activity of the leaf essential oil of Spiraeaalpina Pall. World J.Microbiol.Biotechnol. 26, 9–14.
Valgas, C., Souza, S. M., Smânia, E. F. A., & Smânia, A. J. (2007). Screening methods to determine antibacterial activity of natural products. Braz. J. Microbiol. 38, 369–380.
Veiga Junior, V. F., & Pinto, A. C. (2002). The Copaifera L. genus. Quím. Nova. 25, 273–286.
Walsh, C. (2003). Where will new antibiotics come from? Nat. Rev.Microbiol. 1, 65–70.
Wietzikoski Lovato, E.C., Gurgel Velasquez, P.A., dos Santos Oliveira, C., Baruffi, C., Anghinoni, T., Machado, R.C., Lívero, F.A.R., Sato, S.W., Martins, L.A. (2018). High frequency equipment promotes antibacterial effects dependent on intensity and exposure time. Clin Cosmet Investig Dermatol. 11, 131-135. https://doi.org/10.2147/CCID.S156282
Zetola, N., Francis, J. S., Nuermberger, E. L., & Bishai, W. R. (2005). Community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus: an emerging threat. Lancet. Infect. Dis. 5, 275–286.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2020 Raquel Costa Machado; Ana Karina Vargas Soares; Isabela Carvalho dos Santos; Wanessa de Campos Bortolucci; Luis Fernando Espinoza Luizar; Caio Franco de Araújo Almeida Campos; José Eduardo Gonçalves; Lidiane Nunes Barbosa; Samantha Wietzikoski; Lisiane de Almeida Martins; Zilda Cristiani Gazim; Francislaine Aparecida dos Reis Lívero; Evellyn Claudia Wietzikoski Lovato
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.
