Combinación de monensina, virginiamicina, micro minerales y levaduras sobre el perfil bioquímico de la sangre i estrés oxidativo del plasma, hígado y carne de bovinos alimentados con una dieta rica en cereales

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v9i11.9918

Palabras clave:

Aditivos naturales; Actividad antioxidante; Carbonilación de proteínas; Glutatión peroxidasa.

Resumen

Este estudio se realizó para evaluar la influencia de la combinación de monensina, virginiamicina y mezcla de micros minerales + levaduras (Advantage™ Confinamento) sobre el hemograma, estrés oxidativo y la actividad antioxidante en el plasma sanguíneo, hígado y en el musculo de bovinos alimentados con dieta rica en granos. En total, 36 bovinos (Europeos vs Nelores) de 24 ± 3,2 meses y peso inicial de 385,5 ± 3,84 kg y distribuidos en un diseño completamente al azar. Los animales se dividieron en cuatro grupos con 9 réplicas. La dieta basal fue compuesta de 850 g/kg MS de concentrado y 150 g/kg MS de ensilado de maíz fornecida ad libitum durante 84 días. La composición de la dieta fue igual para todos los animales. Los cuatro tratamientos fueron: CONT – dieta basal sin aditivos; MONE – dieta basal e inclusión de 30 mg/kg de materia seca de monensina; MO+VI – dieta basal e inclusión de 30 mg/kg de monensina + 30 mg/kg de materia seca de virginiamicina; MO+AD – dieta basal e inclusión de 30 mg/kg de monensina + 3,0 g/kg de materia seca de micros minerales e Saccharomyces cerevisiae (Advantage™ Confinamento). En las variables relacionadas al perfil bioquímico hubo alteraciones en el volumen corpuscular medio, creatinina y urea durante los días de estabulación. Los parámetros de evaluación hepática, evaluados por marcador oxidativo y antioxidante no fueron influenciados por dietas experimentales. Para los parámetros de evaluación del estado oxidativo en la carne, se observó que la inclusión de los aditivos redujo el daño oxidativo, descarbonilación de la proteína muscular, y que los bovinos alimentados con dietas suplementadas con monensina + virginiamicina o monensina asociada a microminerales + levaduras aumentaron la concentración muscular de GHS, en comparación con la dieta CONT y MONE. El perfil bioquímico sanguíneo fue normal tanto al inicio y final del experimento. El estrés oxidativo del hígado no difirió en ningún parámetro evaluado; sin embargo, en el musculo hubo una diferencia en la enzima glutatión peroxidasa y en el grupo de proteínas carboniladas. En el estrés oxidativo plasmático, la única diferencia fue en el grupo de proteínas carboniladas. Se concluyó que la monensin puede ser reemplazado por la combinación de monensina + virginiamicina o monensina + Advantage™ Confinamento sin generar alteraciones oxidativas en el plasma sanguíneo, hígado y músculo.

Citas

Arcuri, P. B., Lopes, F. C. F., Carneiro, J. C., & FUNEP. (2011). Microbiologia do rumen. In T. T. Berchielli, A. V Pires, & S. G. Oliveira (Eds.), Nutrição de Ruminantes (2th ed.), 115–148.

Aruoma, O. I. (1998). Free radicals, oxidative stress, and antioxidants in human health and disease. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 75(2), 199–212. https://doi.org/10.1007/s11746-998-0032-9.

Beal, M. F. (2002). Oxidatively modified proteins in aging and disease. Free Radical Biology and Medicine, 32(9), 797–803. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(02)00780-3.

Benzie, I. F. F., & Strain, J. J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1), 70–76.

Berchielli, T. T., Pires, A. V, Oliveira, S. G., & FUNEP. (2011). Nutrição de Ruminantes (2th ed.). FUNEP.

Bergen, W. G., & Bates, D. B. (1984). Ionophores: their effect on production efficiency and mode of action. Journal of Aimal Science, 58(6), 1465–1483.

Bergmeyer, H U, & Bergmeyer, J. (1985). Methods of enzymatic analysis, vol. VI. Verlag Chemie: Weinheim, Germany.

Bergmeyer, Hans Ulrich. (1987). Methods of enzymatic analysis. Journal of Clinical Pathology, 40(8), 934–934. https://doi.org/10.1136/jcp.40.8.934-a.

Buege, J. A., & Aust, S. D. (1978). [30] Microsomal lipid peroxidation. Methods in Enzymology, 52, 302–310. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(78)52032-6

Cocito, C. (1979). Antibiotics of the virginiamycin family, inhibitors which contain synergistic components. Microbiological Reviews, 43(2), 145–198. https://doi.org/10.1128/mmbr.43.2.145-192.1979.

Coe, M. L., Nagaraja, T. G., Sun, Y. D., Wallace, N., Towne, E. G., Kemp, K. E., & Hutcheson, J. P. (1999). Effect of virginiamycin on ruminal fermentation in cattle during adaptation to a high concentrate diet and during an induced acidosis. Journal of Animal Science, 77(8), 2259–2268. https://doi.org/http://jas.fass.org/content/77/8/2259.

Daun, C., & Åkesson, B. (2004). Glutathione peroxidase activity, and content of total and soluble selenium in five bovine and porcine organs used in meat production. Meat Science, 66(4), 801–807. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1016/S0309-1740(03)00178-5

Erasmus, L. J., Muya, C., Erasmus, S., Coertze, R. F., & Catton, D. G. (2008). Effect of virginiamycin and monensin supplementation on performance of multiparous Holstein cows. Livestock Science, 119(1–3), 107–115. https://doi.org/http://jas.fass.org/content/77/8/2259.

Fonseca, M. P., Borges, A. L. C. C., Silva, R. R., Lage, H. F., Ferreira, A. L., Lopes, F. C. F., Pancoti, C. G., & Rodrigues, J. A. S. (2016). Intake , apparent digestibility , and methane emission in bulls receiving a feed supplement of monensin , virginiamycin , or a combination. Animal Production Science, 56(7), 1041–1045. https://doi.org/10.1071/AN14742.

Goodrich, R. D., Garrett, J. E., Gast, D. R., Kirick, M. A., Larson, D. A., & Meiske, J. C. (1984). Influence of monensin on the performance of cattle. Journal of Animal Science, 58(6), 1484–1498. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/6378865

Gornall, A. G., Bardawill, C. J., & David, M. M. (1949). Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. Journal of Biological Chemistry, 177(2), 751–766.

Hissin, P. J., & Hilf, R. (1976). A fluorometric method for determination of oxidized and reduced glutathione in tissues. Analytical Biochemistry, 74(1), 214–226. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90326-2.

Hobson, P. N., & Stewart, C. S. (2012). Rumen microbial ecosystem (2nd ed.). Blackie Academic & Professional.

Jaffe, M. (1986). Quantitative colorimetric determination of creatinine in serum or urine. Z. Physiol. Chem, 10, 391–400.

Jain, N. C. (1993). Essentials of Veterinary Hematology. Wiley-Blackwell.

Kaneko, J. J., Harvey, J. W., & Bruss, M. L. (2008). Clinical biochemistry of domestic animals (6th ed.), 1. Academic press.

Konvičná, J., Vargová, M., Paulíková, I., Kováč, G., & Kostecká, Z. (2015). Oxidative stress and antioxidant status in dairy cows during prepartal and postpartal periods. Acta Veterinaria Brno, 84(2), 133–140. https://doi.org/10.2754/avb201584020133

Kramer, J. W. (2000). Normal hematology of cattle, sheep and goats. In B. F. Feldman, J. G. Zinkl, & N. C. Jain (Eds.), Schalm’s veterinary hematology, 5, 1075–1084. Lippincott Williams and Wilkins Philadelphia.

Kurz, M. W. (2004). Nutritional modulation of immunity and physiological responses in beef calves. Texas A&M University.

Ladikos, D., & Lougovois, V. (1990). Lipid oxidation in muscle foods: A review. Food Chemistry, 35(4), 295–314. https://doi.org/10.1016/0308-8146(90)90019-Z

Levine, R. L., Garland, D., Oliver, C. N., Amici, A., Climent, I., Lenz, A.-G., Ahn, B.-W., Shaltiel, S., & Stadtman, E. R. (1990). [49] Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins. Methods in Enzymology, 186, 464–478. https://doi.org/10.1016/0076-6879(90)86141-H

López-Alonso, M. (2012). Trace Minerals and Livestock: Not Too Much Not Too Little. ISRN Veterinary Science, 2012, 1–18. https://doi.org/10.5402/2012/704825

Marklund, S., & Marklund, G. J. (2007). Biochem catalytic activity of superoxide dismutase: A method based on its concentration-dependent constant decrease in rate of autoxidation of pyrogallol. Current Science, 47, 1481–1482.

Montano, M. F., Manriquez, O. M., Salinas-Chavira, J., Torrentera, N., & Zinn, R. A. (2015). Effects of monensin and virginiamycin supplementation in finishing diets with distiller dried grains plus solubles on growth performance and digestive function of steers. Journal of Applied Animal Research, 43(4), 417–425. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1080/09712119.2014.978785.

Moreira, F. B., Prado, I. N., Cecato, U., Wada, F. Y., & Mizubuti, I. Y. (2004). Forage evaluation, chemical composition, and in vitro digestibility of continuously grazed star grass. Animal Feed Science and Technology, 113(1–4). https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2003.08.009

Nagaraja, T. G., Newbold, C. J., Van Nevel, C. J., & Demeyer, D. I. (2012). Manipulation of ruminal fermentation. In P. N. Hobson & C. S. Stewart (Eds.), The rumen microbial ecosystem 1, 523–632. Black Acaddemic & Professional.

Niki, E. (1999). Action of antioxidants against oxidative stress. In M. Dizdaroglu & A. E. Katarataya (Eds.), Advances in DNA Damage and Repair, 313–318. Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-4865-2_25.

Ornaghi, M. G., Guerrero, A., Vital, A. C. P., Souza, K. A., Passetti, R. A. C., Mottin, C., Araújo Castilho, R., Sañudo, C., & Prado, I. N. (2020). Improvements in the quality of meat from beef cattle fed natural additives. Meat Science, 163(108059), 108059. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2020.108059

Pereira, A. S. et al. (2018). Metodologia da pesquisa científica. [eBook]. Santa Maria. Ed. UAB/NTE/UFSM. Recuperado de https://www.ufsm.br/app/uploads/sites/358/2019/02/Metodologia-da-Pesquisa-Cientifica_final.pdf

Pereira, M. C. S., Rigueiro, A. L. N., Oliveira, C. A., Soutello, R. V. G., Arrigoni, M. de B., & Millen, D. D. (2018). Different doses of sodium monensin on feedlot performance, carcass characteristics and digestibility of Nellore cattle. Acta Scientiarum. Technology, 41, e34988--e34988. https://doi.org/10.4025/actascitechnol.v41i1.34988.

Rigueiro, A. L. N., Pereira, M. C. S., Squizatti, M. M., Ferreira, M. M., Dondé, S. C., Luiz, F. P., Silvestre, A. M., Muller, L. R., Garcia, C. P., Bueno, A. P. D., Toledo, L. V, Estevam, D. D., Martins, C. L., Arrigoni, M. D. B., & Millen, D. D. (2020). Different combinations of sodium monensin and virginiamycin during feedlot finishing of Nellore cattle. Animal Production Science, 60(8), 1061–1072. https://doi.org/https://doi.org/10.1071/AN18657.

Rivaroli, D. C., Del Mar Campo, M., Sañudo, C., Guerrero, A., Jorge, A. M., Vital, A. C. P., Valero, M. V., Prado, R. M., & Prado, I. N. (2020). Effect of an essential oils blend on meat characteristics of crossbred heifers finished on a high-grain diet in a feedlot. Animal Production Science, 60(4), 595–602. https://doi.org/10.1071/AN18620

Sá-Nakanishi, A. B., Soni-Neto, J., Moreira, L. S., Gonçalves, G. A., Silva, F. M. S., Bracht, L., Bersani-Amado, C. A., Peralta, R. M., Bracht, A., & Comar, J. F. (2018). Anti-Inflammatory and Antioxidant Actions of Methyl Jasmonate Are Associated with Metabolic Modifications in the Liver of Arthritic Rats. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2018, 2056250. https://doi.org/10.1155/2018/2056250

Sánchez-Valle, V., Chavez-Tapia, N. C., Uribe, M., & Méndez-Sánchez, N. (2012). Role of oxidative stress and molecular changes in liver fibrosis: a review. Current Medicinal Chemistry, 19(28), 4850–4860.

SAS. (2004). SAS/STAT User guide, Version 9.1.2. SAS Institute Inc.

Schelling, G. T. (1984). Monensin mode of action in the rumen. Journal of Animal Science, 58(6), 1518–1527.

Silva, M., Lima, W. G., Silva, M. E., & Pedrosa, M. L. (2011). Efeito da estreptozotocina sobre os perfis glicêmico e lipídico e o estresse oxidativo em hamsters. Arquivos Brasileiros de Endocrinologia & Metabologia, 55(1), 46–53. https://doi.org/10.1590/S0004-27302011000100006.

Souza, K. A., Ramos, T. R., Bonin, E., Carvalho, V. M., Guerrero, A., Bagaldo, A. R., Cecato, U., & Prado, I. N. (2020). Performance and immune response of steers Nellore finished in feedlot and fed diets containing dry leaves of Baccharis dracunculifolia. Research, Society and Development, 9(10), e339107776. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.7776

Thrall, M. A. (2015). Hematologia e Bioquímica Clínica Veterinária. In 2. ed. Editora Roca.

Valadares Filho, S. C., Costa e Silva, L. F., Gionbelli, M. P., Rotta, P. P., Marcondes, M. I., Chizzotti, M. L., & Prados, L. F. (2016). Exigências nutricionais de zebuínos puros e cruzado - BR-Corte (Vol. 1). Universidade Federal de Viçosa. https://doi.org/10.5935/978-85-8179-111-1.2016b001.

Valadares Filho, S. C., Pina, D. S., & FUNEP. (2011). Fermentação ruminal. In T. T. Berchielli, A. V Pires, & S. G. Oliveira (Eds.), Nutrição de Ruminantes (2th ed.), 161–192. FUNEP.

Weiss, W. P. (2005). Antioxidant nutrients, cow health, and milk quality. Dairy Cattle Nutrition Workshop, Department of Dairy and Animal Sciences, Penn State, 11–18.

Witzig, M., Zeder, M., & Rodehutscord, M. (2018). Effect of the ionophore monensin and tannin extracts supplemented to grass silage on populations of ruminal cellulolytics and methanogens in vitro. Anaerobe, 50, 44–54. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2018.01.012.

Publicado

26/11/2020

Cómo citar

TAGIARIOLLI, M. A. .; DUARTE, V.; MATOS, A. M. .; CARVALHO, V. M. .; BONIN, E.; PRADO, R. M. do .; MARÓSTICA, H. V. P. .; COMAR, J. F. .; SILVA, L. F. C. e .; PRADO, I. N. do . Combinación de monensina, virginiamicina, micro minerales y levaduras sobre el perfil bioquímico de la sangre i estrés oxidativo del plasma, hígado y carne de bovinos alimentados con una dieta rica en cereales. Research, Society and Development, [S. l.], v. 9, n. 11, p. e5479119918, 2020. DOI: 10.33448/rsd-v9i11.9918. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/9918. Acesso em: 23 nov. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas