Biofertilizantes no controle de Pratylenchus brachyurus na cultura da soja
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i1.22133Palavras-chave:
Controle biológico; Glycine max L.; Nematoide das lesões radiculares; Pratylenchus brachyurus.Resumo
Os nematoides possuem grande importância na cultura da soja, destacando-se o Pratylenchus brachyurus conhecido como nematoide das lesões radiculares. O seu ataque nas raízes das plantas provoca menor eficiência na absorção de água e nutrientes, além de danificar o desenvolvimento do vegetal. Não existe ainda um método com total eficiência para o controle desse fitopatógeno, no entanto, alguns produtos estão disponíveis no mercado, entre eles, de controle biológico. Assim, objetivou-se com o presente estudo avaliar produtos biológicos comerciais na eficiência de redução da população de nematoides na cultura de soja em Goiás, Brasil. O delineamento foi inteiramente casualizado em esquema fatorial 2x4, sendo o primeiro fator, dois genótipos de soja (Brasmax Bônus e Nidera NS 8383) e o segundo fator os tratamentos constituídos de diferentes dosagens em uma associação de três produtos comerciais: No-Estio®, Bio-fertility® e Radic®. Os tratamentos utilizados foram: T1- testemunha- sem aplicação dos produtos; o T2 meia dose recomendada; o T3 a dose recomendada e o T4 uma dose e meia da recomendada pelo fabricante. A avaliação das plantas foi realizada após 75 dias de inoculação dos nematoides. Os resultados obtidos demonstraram que ambas as cultivares foram hospedeiras de P. brachyurus, porém, os tratamentos utilizando os produtos apresentaram menor densidade populacional desse nematoide. Concluiu-se que as duas cultivares de soja são hospedeiras de Pratylenchus brachyurus. O caractere agronômico altura de planta foi mais prejudicado quando não houve a aplicação pelo método biológico. A associação dos produtos No-Estio®, Bio-fertility® e Radic® diminuíram a densidade populacional dos nematoides nas plantas infectadas.
Referências
Antonio, S. F., Mendes, F. L., Franchini, J. C., Debiasi, H., Dias, W. P., Ramos Junior, E. U. & Silva, J. F. V. (2012). Perdas de produtividade da soja em área infestada por nematoide das lesões radiculares em Vera, MT. In: Congresso Brasileiro de Soja, 6, 2012, Cuiabá. Anais. Cuiabá: Embrapa Soja, 1-4.
Bellé, C., Kuhn, P. R., Kaspary, T. E. & Schmitt, J. (2017). Reação de cultivares de soja a Pratylenchus brachyurus. Revista Agrarian, 10(36), 136-140.
Bonaldo, S. M. (2005). Indução de resistência em plantas a patógenos e insetos. FEALQ.
Brida, A. L., Rosa, J. M. O., Oliveira, C. M. G., Castro, B. M. C., Serrão, J. E., Zanuncio, J. C., Leite, L. G. & Wilcken, S. R. S. (2017). Entomopathogenic nematodes in agricultural áreas in Brazil. Scientific Reports, 7(6), 45254.
Castanheira, C. M., Falcão, H. G., Ida, E. L., Dias-Arieira, C. R. & Barros, B. C. B. (2020). Pratylenchus brachyurus parasitismo n soybean: effects on productivity, vegetative and nematological parameters and chemical properties. European Journal of Plant Pathology, 157(3), 651-661.
Canteri, M. G., Althaus, R. A., Virgens Filho, J. S., Giglioti, E. A. & Godoy, C. V. (2001). SASM - Agri: Sistema para análise e separação de médias em experimentos agrícolas pelos métodos Scott-Knott, Tukey e Duncan. Revista Brasileira de Agrocomputação, 1(2), 18-24.
Cardoso, R. B. & Araújo, F. F. (2011). Multiplicação de Bacillus subtilis em vinhaça e viabilidade no controle da meloidoginose, em cana-de-açúcar. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 15(12), 1283-1288.
Conab (2020). Décimo primeiro levantamento safra 2019/20 - Boletim de grãos - agosto de 2021, Boletim da Safra de Grãos – Conab, 7(11).
Dias, W. P., Garcia, A., Silva, J. F. V. & Carneiro, G. E. S. (2010). Nematoides em soja: identificação e controle. Embrapa Soja.
Dong, L. Q. & Zhang, K. Q. (2006). Microbial control of plant-parasitic nematodes: a five-party interaction. Plant and Soil, 288, 31-45.
Elsen, A., Baimey, H., Swennen, R. & Waele, D. (2003). Relative mycorrhizal dependency and mycorrhiza-nematode interaction in banana cultivars (Musa spp.) differing in nematode susceptibility. Plant and Soil, 256, 303-313.
Elsen, A., Declerck, S. & Waele, D. (2001). Effects of Glomus intraradices on the reproduction of the burrowing nematode (Radopholus similis) in dixenic culture. Mycorrhiza, 11(3), 49–51.
Embrapa (2004). Tecnologias de Produção de Soja. http://www.cnpso.embrapa.br.
Federici, B. A., Park, H. W., Bideshi, D. K., Wirth, M. C., Johnson, J. J., Sakano, Y & Tang, M. (2007). Developing recombinant bacteria for control of mosquito larvae. Journal of the American Mosquito Control Association, 23(2), 164-175.
Federici, B. A., Park, H. W. & Bideshi, D. K. (2010). Overview of the basic biology of Bacillus thuringiensis with emphasis on genetic engineering of bacterial larvicides for mosquito control. The Open Toxinology Journal, 3(1), 83-100.
Ferraz, S., Freitas, L. G., Lopes, E. A. & Dias-Arieira, C. R. (2010). Manejo sustentável de fitonematoides. Editora UFV.
Franchini, J. C., Debiasi, H., Dias, W. P., Ramos Junior, E. U. & Silva, J. F. V. (2014). A perda de produtividade da soja em área infestada por nematoide das lesões radiculares na região médio norte do Mato Grosso. In: Bernardi, A. C. C., Naime, J. M., Resende, A. V., Bassoi, L. H. & Inamasu, R. Y. (ed.). Agricultura de precisão: resultados de um novo olhar. Embrapa.
Gerdemann, J. W. (1968). Vesicular arbuscular mycorrhiza and pant growth. Annual Review of Phytopathology, 6(6), 397-418.
Goulart, A. M. C. (2008). Aspectos gerais sobre nematoides das lesões radiculares (gênero Pratylenchus). Embrapa Cerrados.
Hartman, G. L, Rupe, J. C, Sikora, E. J, Domier, L. L, Davis, J. A. & Steffey, K. L. (2015). Compendium of soybean diseases and pests. The American Phytopathological Society.
Kamunya, S. M, Wachira, F. N, Lang’at, J, Otieno, W & Sudoi, V. (2008). Integrated management of root-knot nematode (Meloidogyne spp.) in tea (Camellia sinensis) in Kenya. International Journal of Pest Management, 54(1), 129-136.
Kath, J., Dias-Arieira, C. R., Ferreira, J. C. A., Homiak, J. A., Silva, C. R. & Cardoso, C. R. (2017). Control of Pratylenchus brachyurus in soybean with Trichoderma spp. and resistance inducers. Journal of Phytopathology, 165(11-12), 791-799.
Leite, M. L. T., Almeida, F. A., Fonseca, W. L., Oliveira, A. M., Prochnow, J. T., Pereira, F. F. & Neto, F. A. (2019). Effects of vinasse in the suppressiveness to Pratylenchus brachyurus in soybean. Journal of Agricultural Science, 11(1), 538-545.
Lopes, E. A., Ferraz, S., Ferreira, P. A., Freitas, L. G., Dhingra, O. D., Gardiano, C. G. & Carvalho, S. L. (2007). Potencial de isolados de fungos nematófagos no controle de Meloidogyne javanica. Nematologia Brasileira, 31(2), 78-84.
Lopes, A. P. M., Toninato, B. O., Soares, M. R. C. & Dias-Arieira, C. R. (2020). Biological control associated with plant nutrition for Meloidogyne javanica and Pratylenchus brachyurus management in soybean. Journal of Agricultural Science, 12(1), 149-158.
Maciel, S. L. & Ferraz, L. C. C. B. (1996). Reprodução de Meloidogyne incognita raça 2 e de Meloidogyne javanica em oito espécie de plantas medicinais. Scientia Agricola, 53(2-3), 956- 960.
Melo, T. A., Nascimento, I. T. V. & Serra, I. M. R. S. (2021). The Bacillus genus applied to the biological control of plat diseases. Research, Society and Development, 10(9), e18110917817.
Mello, E. S. & Brum, A. L. (2020). A cadeia produtiva da soja e alguns reflexos no desenvolvimento regional do Rio Grande do Sul. Brazilian Journal of Development, 6(10), 74734-74750.
Miamoto, A., Silva, M. T. R., Dias-Arieira, C. R. & Higashi, H. (2017). Alternative products for Pratylenchus brachyurus and Meloidogyne javanica management in soya bean plants. Journal of Phytopathology, 165(10), 635-640.
Morais, D. C. O., Tramontin, M. A. & Andaló, V. (2020). Isolation of entomopathogenic nematodes in the West region of Santa Catarina, Brazil. Arquivos do Instituto Biológico, 87, 1-6.
Moreira, F. M. S. & Siqueira, J. O. (2002). Microbiologia e bioquímica do solo. Editora UFLA.
Oliveira, C. M., Almeida, N. O., Côrtes, M. V. C., Júnior, M. L., Rocha, M. R. & Ulhoa, C. J. (2021). Biological control of Pratylenchus brachyurus with isolates of Trichoderma spp. On soybean. Biological Control, 152, 104425.
Pimentel, M. S., Peixoto, A. R. & Paz, C. D. (2009). Potencial de controle biológico de Meloidogyne utilizando fungos nematófagos e bactérias em cafeeiros. Coffee Science, 4(1), 84-92.
Rosa, T. E. A., Souza, J. C., Pereira, W. J., Moreira, J. A. A. & Araújo, F. G. (2021). Biological nematicides associated with poultry litter in the control of nematodes in soybean and second corn crop. Revista Caatinga, 34(3), 580-589.
Santana-Gomes, S. M., Dias-Arieira, C. R., Ferreira, J. C. A., Schwengber, R. P. & Baldisera, S. S. (2019). Reproduction of Pratylenchus zeae and P. brachyurus in cover crops. Revista Caatinga, 32(2), 295-301.
Santos, A. R. B., Almeida, F. A., Leite, M. L. T., Fonseca, W. L., Neto, F. A., Pereira, F. F., Carvalho, R. M., Barreto, A. F. & Santos, T. S. (2019). Biocontrole no manejo de Pratylenchus brachyurus na soja. Revista de Ciências Agrárias, 42(3), 776-785.
Sediyama, T. (2009). Tecnologias de produção e usos da soja. Mecenas.
Sharma, K., Niraula, P. M., Troell, H. A., Adhikari, M., Alshehri, H. A., Alkharouf, N. W., Lawrence, K. S. & Klink, V. P. (2020). Exocyst components promote an incompatible interaction between Glycine max (soybean) and Heterodera glycines (the soybean cyst nematode). Scientific Reports, 10(2020), 15003.
Shreenivasa, K. R., Krishnappa, K. & Ravichandra, N. G. (2007). Interaction Effects of Arbuscular Mycorrhizal Fungus and Root – Knot Nematode, inco on Growth and Phosphorous Uptake of Tomato. Karnataka J. Agric. Sci., 20 (1), 57-61.
Torkamamenh, D., Laroche, J., Valliyodan, B., O’Donoughue, L., Cober, E., Rajcan, I., Abdelnoor, R. V., Sreedasyam, A., Schmutz, J., Nguyen, H. & Belzile, F. (2021). Soybean (Glycine max) haplotype map (GmHapMap): a universal resource for soybean translational and functional genomic. Plant Biotechnology Journal, 19(2), 324-334.
TRENTIN, E. (2016). Supressão do nematoide Pratylenchus brachyurus e estímulo ao crescimento da soja por fungo micorrízico arbuscular. Dissertação (Mestrado em Ciência do Solo) – Universidade Federal de Santa Maria, Santa Maria.
VILLALVA, M. M. H. (2008). Modificação química para obtenção de um isolado proteico de soja com solubilidade semelhante à da caseína humana. Dissertação (Mestrado em Ciências e Tecnologia de Alimentos) – Universidade Federal de Viçosa, Viçosa.
Vos, C. M., Tesfehun, A. N., Panis, B., Waele, D. & Elsen, A. (2012). Arbuscular mycorrhizal fungi induce systemic resistance in tomato against the sedentary nematode Meloidogyne incognita and the migratory Pratylenchus penetrans. Applied Soil Ecology, 61, 1-6.
Vos, C.M., Geerinckx, K., Mkandawire, R., Panis, B., Waele, D. & Elsen, A. (2012b). Arbuscular mycorrhizal fungi affect both penetration and further life stage development of root-knot nematodes in tomato. Mycorrhiza, 22(2), 157–163.
Xiang, N., Lawrence, K. S. & Donald, P. A. (2018). Biological control potential of plant growth-promoting rhizobacteria suppression of Meloidogyne incognita on cotton and Heterodera glycines on soybean: A review. Journal of Phytopathology, 166(7-8), 449-458.
Zhao, L., Xu, Y. & Lai, X. (2018). Antagonistic endophytic bacteria associated with nodules of soybean (Glycine max L.) and plant growth-promoting properties. Brazilian Journal of Microbiology, 49(2), 269-278.
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