Distribuição das subpopulações de linfócitos de caprinos experimentalmente infectados com as linhagens selvagem VD57 e atenuada T1 de Corynebacterium pseudotuberculosis em resposta aos antígenos secretados (TPP E MQD) da linhagem atenuada

Autores

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v11i11.33241

Palavras-chave:

Corynebacterium pseusotuberculosis; Ovinos; Caprinos; Citometria de fluxo.

Resumo

A linfadenite caseosa, é uma doença crônica infecciosa de pequenos ruminantes, caprinos e ovinos, causadora de grandes perdas econômicas, caracterizada pela formação de granulomas subcutâneosz e em órgãos internos cujo agente etiológico é Corynebacterium pseudotuberculosis, bacilo Gram-positivo, patógeno intracelular facultativo de fagócitos, relacionados filogeneticamente com Mycobacterium tuberculosis. Este trabalho teve como objetivo avaliar “in vitro” os fenótipos das subpopulações de células da linhagem leucocitária do sangue periférico de caprinos experimentalmente infectados com as linhagens T1 e VD57 de Corynebacterium pseudotuberculosis, sendo as células estimuladas com antígenos secretados/excretados da linhagem T1 utilizando como ferramenta a técnica de citometria de fluxo. A expressão de células CD4 é maior nos animais infectados com a linhagem VD57 sob os dois estímulos antigênicos TPP e MQD. A expressão de células com marcação para CD8 é maior no grupo de animais infectados com a linhagem T1 para os dois estímulos com o aumento da expressão ao longo do tempo. Para o marcador CD21 houve maior expressão no grupo de animais infectados com a linhagem T1, entretanto no grupo de animais infectados com a linhagem VD57 ocorreu expressão significativa aos 60 dias de infecção. Não houve diferença no índice de proliferação de células TCRgd sob o estímulo dos dois antígenos no grupo infectado com T1, enquanto que no grupo infectado com a linhagem VD57 o antígeno TPP teve maior índice de proliferação aos 60 dias de infecção. Pode-se observar que houve diferenças expressão do fenótipo celular em células do sangue periférico dos animais infectados com as linhagens T1 e VD57 e estimulados com os antígenos secretados TPP e MQD, entretanto o antígeno TPP mostrou-se maior indutor de proliferação celular. Ambas as linhagens demonstraram índices significativos na proliferação de células.

Referências

Alvarez, A. J., Endsley, J. J., Werling, D., & Mark Estes, D. (2009). WC1+ γδ T Cells Indirectly Regulate Chemokine Production During Mycobacterium bovis Infection in SCID‐bo Mice. Transboundary and Emerging Diseases, 56(6‐7), 275-284. https://doi.org/10.1111/j.1865-1682.2009.01081.x

Andrade; C. L. B., de Moura Costa, L. F., dos Santos, R. M., Conceição, R. R., Oliveira, L. G. F., dos Santos, A. S., & de Sá, M. D. C. A. (2022) Avaliação do crescimento bacteriano por citometria de fluxo e produção de antìgenos secretados de diferentes cepas de Corynebacterium pseudotuberculosis. In Mota, D., Silva, Clécio (Org.), Produção Científica em Ciências Biológicas (pp. 58-83). Atena. https://doi.org/10.22533/at.ed.2192230036

Araújo, C. L., Alves, J., Nogueira, W., Pereira, L. C., Gomide, A. C., Ramos, R., & Folador, A. (2019). Prediction of new vaccine targets in the core genome of Corynebacterium pseudotuberculosis through omics approaches and reverse vaccinology. Gene, 702, 36-45. https://doi.org/10.1016/j.gene.2019.03.049

Asai, K. I., Yamaguchi, T., Kuroishi, T., Komine, Y., Kai, K., Komine, K. I., & Kumagai, K. (2003). Differential gene expression of cytokine and cell surface molecules in T cell subpopulation derived from mammary gland secretion of cows. American Journal of Reproductive Immunology, 50(6), 453-462. https://doi.org/10.1046/j.8755-8920.2003.00113.x

Baird, G. J., & Fontaine, M. C. (2007). Corynebacterium pseudotuberculosis and its role in ovine caseous lymphadenitis. Journal of comparative pathology, 137(4), 179-210. https://doi.org/10.1016/j.jcpa.2007.07.002

Bastos, B. L., Portela, R. D., Dorella, F. A., Ribeiro, D., Seyffert, N., Castro, T. L. D. P., & Azevedo, V. (2012). Corynebacterium pseudotuberculosis: immunological responses in animal models and zoonotic potential. J Clin Cell Immunol S, 4, 005. 10.4172/2155-9899.S4-005

Batey, R. G., Speed, C. M., & Kobes, C. J. (1986). Prevalence and distribution of caseous lymphadenitis in feral goats. Australian veterinary journal, 63(2), 33-36. https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.1986.tb02916.x

Begg, D. J., & Griffin, J. F. T. (2005). Vaccination of sheep against M. paratuberculosis: immune parameters and protective efficacy. Vaccine, 23(42), 4999-5008. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2005.05.031

Buza, J., Kiros, T., Zerihun, A., Abraham, I., & Ameni, G. (2009). Vaccination of calves with Mycobacteria bovis Bacilli Calmete Guerin (BCG) induced rapid increase in the proportion of peripheral blood γδ T cells. Veterinary immunology and immunopathology, 130(3-4), 251-255. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2008.12.021

Cooper, A. M. (2009). Cell mediated immune responses in tuberculosis. Annual review of immunology, 27, 393. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.021908.132703

da Silva, W. M., Seyffert, N., Silva, A., & Azevedo, V. (2021). A journey through the Corynebacterium pseudotuberculosis proteome promotes insights into its functional genome. PeerJ, 9, e12456. https://doi.org/10.7717/peerj.12456

de Silva, K., Begg, D., Carter, N., Taylor, D., Di Fiore, L., & Whittington, R. (2010). The early lymphocyte proliferation response in sheep exposed to Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis compared to infection status. Immunobiology, 215(1), 12-25. https://doi.org/10.1016/j.imbio.2009.01.014

Derrick, S. C., Yabe, I. M., Yang, A., & Morris, S. L. (2011). Vaccine-induced anti-tuberculosis protective immunity in mice correlates with the magnitude and quality of multifunctional CD4 T cells. Vaccine, 29(16), 2902-2909. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.02.010

Fontaine, M. C., & Baird, G. J. (2008). Caseous lymphadenitis. Small Ruminant Research, 76(1-2), 42-48. https://doi.org/10.1016/j.smallrumres.2007.12.025.

Guaraldi, A. L. de M., Hirata, R., & Azevedo, V. A. de C. (2013). Corynebacterium diphtheriae, Corynebacterium ulcerans and Corynebacterium pseudotuberculosis—General Aspects. Corynebacterium Diphtheriae and Related Toxigenic Species, 15–37.10.1007/978-94-007-7624-1_2

Guo, S., Bao, L., Qin, Z. F., & Shi, X. X. (2010). The CFP-10/ESAT-6 complex of Mycobacterium tuberculosis potentiates the activation of murine macrophages involvement of IFN-γ signaling. Medical microbiology and immunology, 199(2), 129-137. https://doi.org/10.1007/s00430-010-0146-1

Hasvold, H. J., Valheim, M., Berntsen, G., & Storset, A. K. (2002). In vitro responses to purified protein derivate of caprine T lymphocytes following vaccination with live strains of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. Veterinary immunology and immunopathology, 90(1-2), 79-89. https://doi.org/10.1016/s0165-2427(02)00224-6

Kathaperumal, K., Kumanan, V., McDonough, S., Chen, L. H., Park, S. U., Moreira, M. A., & Chang, Y. F. (2009). Evaluation of immune responses and protective efficacy in a goat model following immunization with a coctail of recombinant antigens and a polyprotein of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis. Vaccine, 27(1), 123-135. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2008.10.019

Kaufmann, S. H. (1993). Immunity to intracellular bacteria. Annual review of immunology, 11, 129-163. https://doi.org/10.1146/annurev.iy.11.040193.001021

Lan, D. T. B., Makino, S. I., Shirahata, T., Yamada, M., & Nakane, A. (1999). Complement receptor type 3 plays an important role in development of protective immunity to primary and secondary Corynebacterium pseudotuberculosis infection in mice. Microbiology and immunology, 43(12), 1103-1106. https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.1999.tb03367.x

Lan, D. T. B., Taniguchi, S., Makino, S. I., Shirahata, T., & Nakane, A. (1998). Role of endogenous tumor necrosis factor alpha and gamma interferon in resistance to Corynebacterium pseudotuberculosis infection in mice. Microbiology and immunology, 42(12), 863-870. https://doi.org/10.1111/j.1348-0421.1998.tb02362.x

Lim, J. H., Kim, H. J., Lee, K. S., Jo, E. K., Song, C. H., Jung, S. B., & Park, J. K. (2004). Identification of the new T-cell-stimulating antigens from Mycobacterium tuberculosis culture filtrate. FEMS microbiology letters, 232(1), 51-59. https://doi.org/10.1016/S0378-1097(04)00018-7

Moura Costa, L., JA Paule, B., M Freire, S., Nascimento, I., Schaer, R., F Regis, L., & Meyer, R. (2005). Meio Sintético Quimicamente Definido para o Cultivo de Corynebacterium pseudotuberculosis. Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal.

Pascual, C., Lawson, P. A., Farrow, J. A., Gimenez, M. N., & Collins, M. D. (1995). Phylogenetic analysis of the genus Corynebacterium based on 16S rRNA gene sequences. International journal of systematic and evolutionary microbiology, 45(4), 724-728. https://doi.org/10.1099/00207713-45-4-724

Paule, B. J. A., Azevedo, V. A. D. C., Costa, L. F. M., Freire, S. M., Regis, L. F., Vale, V. L. C., & Nascimento, R. J. M. (2004a). SDS-PAGE and Western blot analysis of somatic and extracellular antigens of Corynebacterium pseudotuberculosis.

Paule, B. J. A., Azevedo, V., Regis, L. F., Carminati, R., Bahia, C. R., Vale, V. L. C., & Meyer, R. (2003). Experimental Corynebacterium pseudotuberculosis primary infection in goats: kinetics of IgG and interferon-γ production, IgG avidity and antigen recognition by Western blotting. Veterinary immunology and immunopathology, 96(3-4), 129-139. https://doi.org/10.1016/S0165-2427(03)00146-6

Paule, B. J., Meyer, R., Moura-Costa, L. F., Bahia, R. C., Carminati, R., Regis, L. F., Vale, V. L., Freire, S. M., Nascimento, I., Schaer, R., & Azevedo, V. (2004b). Three-phase partitioning as an efficient method for extraction/concentration of immunoreactive excreted-secreted proteins of Corynebacterium pseudotuberculosis. Protein expression and purification, 34(2), 311–316. https://doi.org/10.1016/j.pep.2003.12.003

Pépin, M., Pittet, J. C., Olivier, M., & Gohin, I. (1994). Cellular composition of Corynebacterium pseudotuberculosis pyogranulomas in sheep. Journal of leukocyte biology, 56(5), 666–670. https://doi.org/10.1002/jlb.56.5.666

Pépin, M., Seow, H. F., Corner, L., Rothel, J. S., Hodgson, A. L., & Wood, P. R. (1997). Cytokine gene expression in sheep following experimental infection with various strains of Corynebacterium pseudotuberculosis differing in virulence. Veterinary research, 28(2), 149–163. https://hal.archives-ouvertes.fr/hal-00902468

Pestka, S., Krause, C. D., Sarkar, D., Walter, M. R., Shi, Y., & Fisher, P. B. (2004). Interleukin-10 and related cytokines and receptors. Annual review of immunology, 22, 929–979. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.22.012703.104622

Platt, R., Roth, J. A., Royer, R. L., & Thoen, C. O. (2006). Monitoring responses by use of five-color flow cytometry in subsets of peripheral T cells obtained from cattle inoculated with a killed Mycobacterium avium subsp paratuberculosis vaccine. American journal of veterinary research, 67(12), 2050–2058. https://doi.org/10.2460/ajvr.67.12.2050

Platt, R., Thoen, C. O., Stalberger, R. J., Chiang, Y. W., & Roth, J. A. (2010). Evaluation of the cell-mediated immune response to reduced doses of Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis vaccine in cattle. Veterinary immunology and immunopathology, 136(1-2), 122–126. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2010.02.003

Raynal, J. T., Bastos, B. L., Vilas-Boas, P. C. B., Sousa, T. D. J., Costa-Silva, M., De Sá, M. D. C. A., Portela, R. W., Moura-Costa, L. F., Azevedo, V., Meyer, R. (2018). Identification of membrane-associated proteins with pathogenic potential expressed by Corynebacterium pseudotuberculosis grown in animal serum. BMC Research Notes, 11, 73,. https://doi.org/10.1186/s13104-018-3180-5.

Rebouças, M. F., Portela, R. W., Lima, D. D., Loureiro, D., Bastos, B. L., Moura-Costa, L. F., & Meyer, R. (2011). Corynebacterium pseudotuberculosis secreted antigen-induced specific gamma-interferon production by peripheral blood leukocytes: potential diagnostic marker for caseous lymphadenitis in sheep and goats. Journal of veterinary diagnostic investigation, 23(2), 213-220. https://doi.org/10.1177/104063871102300204

Ribeiro, O. C., Silva, J. A. H., & Pereira filho, M. (1988a) Incidência da linfadenite caseosa no semi-árido baiano. Revista Brasileira de Medicina Veterinária, 10(2), 23-24.

Rodrigues, G., Vale, V. L. C., Nascimento, A. B., Nascimento, A. B., da Costa Silva, M., Raynal, J. T., & Meyer, R. (2018). Aspectos da resposta imune em ovinos experimentalmente co-infectados com Corynebacterium pseudotuberculosis e Haemonchus contortus. Pubvet, 12, 172. https://doi.org/10.22256/pubvet.v12n5a99.1-11

Sá, M. D. C. A., Rocha Filho, J. T. R., Rosa, D. S., de Sá Oliveira, S. A., Freire, D. P., Alcantara, M. E., ... & Meyer, R. (2018). Linfadenite caseosa em caprinos e ovinos: Revisão. Pubvet, 12, 133. https://doi.org/10.31533/pubvet.v12n11a202.1-13

Sampaio, G. P., Vale, V. L. C., de Moura Costa, L. F., Fraga, R. E., de Melo Santos, H. H., de Sá, M. D. C. A., & Nascimento, R. J. M. (2019). Padronização de técnicas por citometria de fluxo para avaliar Corynebacterium pseudotuberculosise células fagocitárias murinas. Pubvet, 13, 150. https://doi.org/10.31533/pubvet.v13n11a443.1-9

Saunders, B. M., Frank, A. A., Cooper, A. M., & Orme, I. M. (1998). Role of gamma delta T cells in immunopathology of pulmonary Mycobacterium avium infection in mice. Infection and immunity, 66(11), 5508–5514. https://doi.org/10.1128/IAI.66.11.5508-5514.1998.

Seder, R. A., Darrah, P. A., & Roederer, M. (2008). T-cell quality in memory and protection: implications for vaccine design. Nature reviews. Immunology, 8(4), 247–258. https://doi.org/10.1038/nri2274

Tanaka, S., Sato, M., Onitsuka, T., Kamata, H., & Yokomizo, Y. (2005). Inflammatory cytokine gene expression in different types of granulomatous lesions during asymptomatic stages of bovine paratuberculosis. Veterinary pathology, 42(5), 579–588. https://doi.org/10.1354/vp.42-5-579

Vale, V., Freire, S., Ribeiro, M., Regis, L., Bahia, R., Carminati, R., Paule, B. J. A., Nascimento, I., & Meyer, R. (2003). Reconhecimento de antígenos por anticorpos de caprinos naturalmente infectados ou imunizados contra Corynebacterium pseudotuberculosis. Revista De Ciências Médicas E Biológicas, 2(2), 192–200. https://doi.org/10.9771/cmbio.v2i2.4286

Vaz, A. J., Takei, K., & Bueno, E. C. (2007). Imunoensaios: fundamentos e aplicações. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan.

Walker, J., Jackson, H., Brandon, M. R., & Meeusen, E. (1991). Lymphocyte subpopulations in pyogranulomas of caseous lymphadenitis. Clinical and experimental immunology, 86(1), 13–18. https://doi.org/10.1111/j.1365-2249.1991.tb05766.x

Yaacob, M. F., Murata, A., Nor, N. H. M., Jesse, F. F. A., & Yahya, M. F. Z. R. (2021). Biochemical composition, morphology and antimicrobial susceptibility pattern of Corynebacterium pseudotuberculosis biofilm. Journal of King Saud University-Science, 33(1), 101225. https://doi.org/10.1016/j.jksus.2020.10.022

Zaki, M. M. (1976). Relation between the toxogenicity and pyogenicity of Corynebacterium ovis in experimentally infected mice. Research in veterinary science, 20(2), 197–200.

Downloads

Publicado

20/08/2022

Como Citar

OLIVEIRA, I. B. de .; VALE, V.; SILVA, M. da C. .; MOURA-COSTA, L.; SOUZA, A. P. de .; SANTOS, H. A. dos .; MARQUES, A. S. .; RAYNAL FILHO, J. T. .; TRINDADE, S. C. .; MEYER, R. Distribuição das subpopulações de linfócitos de caprinos experimentalmente infectados com as linhagens selvagem VD57 e atenuada T1 de Corynebacterium pseudotuberculosis em resposta aos antígenos secretados (TPP E MQD) da linhagem atenuada . Research, Society and Development, [S. l.], v. 11, n. 11, p. e206111133241, 2022. DOI: 10.33448/rsd-v11i11.33241. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/33241. Acesso em: 30 jun. 2024.

Edição

Seção

Ciências da Saúde