Detecção de neurônios do plexo mientérico em ratos dislipidêmicos, tabagistas e diabéticos tratados com carqueja
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v9i9.8093Palavras-chave:
Baccharis trimera; Hipercolesterolemia; Hiperglicemia; Plexo mioentérico.Resumo
A espécie vegetal Baccharis trimera apresenta antioxidantes que podem ter efeitos neuroprotetores sobre os neurônios do plexo mioentérico. Assim, o objetivo do presente estudo foi investigar possíveis alterações quantitativas nos neurônios do plexo mioentérico e no perfil glicêmico e lipídico de 25 ratos com 90 dias de idade, expostos ao tabagismo, dieta hipercolesterolêmica e com diabetes mellitus induzido por estreptozotocina durante quatro semanas, e depois tratada com diferentes doses de extrato de carqueja por duas semanas. Os neurônios do plexo mioentérico foram corados com Giemsa básico e usando o protocolo de histoquímica NADPH-diaforase. Nas condições do estudo, houve uma redução significativa no número de neurônios totais entre os grupos tratados com carqueja e o controle positivo, corado com Giemsa. Em contrapartida, não houve diferença significativa no número de neurônios da subpopulação inibitória entre os grupos tratados com carqueja e o controle negativo, evidenciada pela histoquímica da NADPH-diaforase. Na dose de 30mg/kg houve redução dos níveis de colesterol e triglicerídeos. Com base nos resultados, Baccharis trimera não apresentou efeito neuroprotetor ou hipoglicemiante, embora a subpopulação nítrica tenha se mostrado mais resistente aos efeitos deletérios do diabetes, tabagismo e dieta hipercolesterolêmica.
Referências
American Diabetes Association. (2019). 9. Abordagens farmacológicas para o tratamento glicêmico: Padrões de Cuidados Médicos no Diabetes — 2019. Cuidados com a diabetes , 42 (Suplemento 1), S90-S102. Retrieved May 21, 2020, from www.diabetes.org/diabetescare
Asmat, U., Abad, K., & Ismail, K. (2016). Diabetes mellitus and oxidative stress—A concise review. Saudi pharmaceutical journal, 24(5), 547-553. https://doi.org/10.1016/j.jsps.2015.03.013
Barbosa, A., & AJ, A. B. (1978). Técnica histológica para gânglios nervosos intramurais em preparados espessos. Retrieved Ago 5, 2019, from https://pascal-francis.inist.fr/vibad/index.php?action=getRecordDetail&idt=PASCAL7950158800
Bastida, G., & Beltrán, B. (2011). Ulcerative colitis in smokers, non-smokers and ex-smokers. World journal of gastroenterology: WJG, 17(22), 2740. https://doi.org/10.3748/wjg.v17.i22.2740
Belai, A., Cooper, S., & Burnstock, G. (1995). Effect of age on NADPH-diaphorase-containing myenteric neurones of rat ileum and proximal colon. Cell and tissue research, 279(2), 379-383. Retrieved Ago 5, 2019, from https://link.springer.com/article/10.1007/BF00318495
Bernstein, C. N., Eliakim, A., Fedail, S., Fried, M., Gearry, R., Goh, K. L., ... & Ouyang, Q. (2016). World gastroenterology organisation global guidelines inflammatory bowel disease: update August 2015. Journal of clinical gastroenterology, 50(10), 803-818. https://doi.org/ 10.1097/MCG.0000000000000660
Cakir, Y., Yang, Z., Knight, C. A., Pompilius, M., Westbrook, D., Bailey, S. M., ... & Ballinger, S. W. (2007). Effect of alcohol and tobacco smoke on mtDNA damage and atherogenesis. Free Radical Biology and Medicine, 43(9), 1279-1288. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2007.07.015
Camilleri, M., Bharucha, A. E., & Farrugia, G. (2011). Epidemiology, mechanisms, and management of diabetic gastroparesis. Clinical Gastroenterology and Hepatology, 9(1), 5-12. https://doi.org/10.1016/j.cgh.2010.09.022
Carver, T. W., Vora, R. S., & Taneja, A. (2016). Mesenteric ischemia. Critical care clinics, 32(2), 155-171. https://doi.org/10.1016/j.ccc.2015.11.001
Chandrasekharan, B., & Srinivasan, S. (2007). Diabetes and the enteric nervous system. Neurogastroenterology & Motility, 19(12), 951-960. https://doi.org/10.1111/j.1365-2982.2007.01023.x
Cowen, T., Johnson, R. J. R., Soubeyre, V., & Santer, R. M. (2000). Restricted diet rescues rat enteric motor neurones from age related cell death. Gut, 47(5), 653-660. Retrieved Ago 5, 2019, from https://gut.bmj.com/content/gutjnl/47/5/653.full.pdf
Cronenwett, J. L., & Johnston, K. W. (2014). Rutherford’s vascular surgery, vol. 2.
Davison, G. W., George, L., Jackson, S. K., Young, I. S., Davies, B., Bailey, D. M., ... & Ashton, T. (2002). Exercise, free radicals, and lipid peroxidation in type 1 diabetes mellitus. Free Radical Biology and Medicine, 33(11), 1543-1551. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(02)01090-0
Feldman, E. L., Nave, K. A., Jensen, T. S., & Bennett, D. L. (2017). New horizons in diabetic neuropathy: mechanisms, bioenergetics, and pain. Neuron, 93(6), 1296-1313. https://doi.org/10.1016/j.neuron.2017.02.005
Ferezin, R. I., Vicentino-Vieira, S. L., Góis, M. B., Araújo, E. J. D. A., Melo, G. D. A. N. D., Garcia, J. L., & Sant'Ana, D. D. M. G. (2017). Different inoculum loads of Toxoplasma gondii induce reduction of myenteric neurons of the rat colon. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 26(1), 47-53. https://doi.org/10.1590/s1984-29612017003
Fochi G. R. A. Tabagismo: uma revisão. J Psiquiatria 2003; 4(2): 127-135. Retrieved Ago 6, 2019, from http://ri.unir.br/jspui/handle/123456789/1262
Fonseca, K. P., & Abi Rached, C. D. (2019). Complicações do diabetes mellitus. International Journal of Health Management Review, 5(1). Retrieved Ago 6, 2019, from https://www.ijhmreview.org/ijhmreview/article/view/149.
Furlan, M. M. D., Molinari, S. L., & Miranda Neto, M. H. D. (2002). Morphoquantitative effects of acute diabetes on the myenteric neurons of the proximal colon of adult rats. Arquivos de neuro-psiquiatria, 60(3A), 576-581. http://dx.doi.org/10.1590/S0004-282X2002000400012
Furlan, M. M. D. P., Molinari, S. L., & Neto, M. H. M. (2004). Resposta dos neurônios mioentéricos do duodeno de ratos ao diabetes de curto prazo. Arquivos de Ciências da Saúde da UNIPAR, 8(2). Retrieved Ago 6, 2019, from https://revistas.unipar.br/index.php/saude/article/viewFile/222/195.
Furman, B. L. (2015). Streptozotocin‐induced diabetic models in mice and rats. Current protocols in pharmacology, 70(1), 5-47. https://doi.org/10.1002/0471141755.ph0547s70
Furness, J. B. (2012). The enteric nervous system and neurogastroenterology. Nature reviews Gastroenterology & hepatology, 9(5), 286. https://doi.org/10.1038/nrgastro.2012.32
Furness, J. B. (2006). Novel gut afferents: Intrinsic afferent neurons and intestinofugal neurons. Autonomic Neuroscience, 125(1-2), 81-85. https://doi.org/10.1016/j.autneu.2006.01.007
Gagliardo, K. M., Clebis, N. K., Stabille, S. R., Mari, R. D. B., De Sousa, J. M. A., & De Souza, R. R. (2008). Exercise reduces inhibitory neuroactivity and protects myenteric neurons from age-related neurodegeneration. Autonomic Neuroscience, 141(1-2), 31-37. https://doi.org/10.1016/j.autneu.2008.04.009
Giri, B., Dey, S., Das, T., Sarkar, M., Banerjee, J., & Dash, S. K. (2018). Chronic hyperglycemia mediated physiological alteration and metabolic distortion leads to organ dysfunction, infection, cancer progression and other pathophysiological consequences: an update on glucose toxicity. Biomedicine & Pharmacotherapy, 107, 306-328. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2018.07.157
Gois, M. B., Hermes-Uliana, C., Paltanin, A., Pontes, W., Araújo, E. J. A., & Miranda, M. H. N. (2016). Morphoquantitative study of Rattus norvegicus submucosal plexus by different neuronal evidentiation histochemical techniques. Int. j. morphol, 34(4), 1487-1493. Retrieved Ago 6, 2019, from http://www.intjmorphol.com/wp-content/uploads/2017/01/art_50_344.pdf
HERNANDES, L., BAZOTTE, R. B., GAMA, P., & MIRANDA-NETO, M. H. D. (2000). Streptozotocin-induced diabetes duration is important to determine changes in the number and basophily of myenteric neurons. Arquivos de Neuro-Psiquiatria, 58(4), 1035-1039. https://doi.org/10.1590/S0004-282X2000000600010
Irwin, D. A. (1931). The anatomy of Auerbach's plexus. American Journal of Anatomy, 49(1), 141-166. https://doi.org/10.1002/aja.1000490106
Jaldin, R. G., Falcão Filho, H. A., Sequeira, J. L., & Yoshida, W. B. (2006). O processo aterosclerótico em artérias de coelhos submetidos a dieta suplementada com gema de ovo: modelo experimental de baixo custo. Jornal Vascular Brasileiro, 5(4), 247-256. https://doi.org/10.1590/S1677-54492006000400003
Kanamori, K. S., Oderich, G. S., Fatima, J., Sarac, T., Cha, S., Kalra, M., ... & Bower, T. C. (2014). Outcomes of reoperative open or endovascular interventions to treat patients with failing open mesenteric reconstructions for mesenteric ischemia. Journal of vascular surgery, 60(6), 1612-1619. https://doi.org/10.1016/j.jvs.2014.08.093
Kolkman, J. J., & Geelkerken, R. H. (2017). Diagnosis and treatment of chronic mesenteric ischemia: An update. Best practice & research Clinical gastroenterology, 31(1), 49-57. https://doi.org/10.1016/j.bpg.2017.01.003
Ksiazek, K., & Wiśniewska, J. (2001). The role of glucose and reactive oxygen species in the development of vascular complications of diabetes mellitus. Przeglad lekarski, 58(10), 915-918. Retrieved Oct 21, 2019, from https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/11957818/
Lívero, F. A. R., Martins, G. G., Telles, J. E. Q., Beltrame, O. C., Biscaia, S. M. P., Franco, C. R. C., ... & Acco, A. (2016). Hydroethanolic extract of Baccharis trimera ameliorates alcoholic fatty liver disease in mice. Chemico-biological interactions, 260, 22-32. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2016.10.003
Miranda-Neto, M. H., Molinari, S. L., Natali, M. R. M., & Sant'Ana, D. D. M. G. (2001). Regional differences in the number and type of myenteric neurons of the ileum of rats: a comparison of techniques of the neuronal evidentiation. Arquivos de neuro-psiquiatria, 59(1), 54-59. https://doi.org/10.1590/S0004-282X2001000100012
Oyenihi, A. B., Ayeleso, A. O., Mukwevho, E., & Masola, B. (2015). Antioxidant strategies in the management of diabetic neuropathy. Biomed Res Int, 2015(515042), 515042. https://dx.doi.org/10.1155/2014/515042
Pádua, B. C., Victor Rossoni Junior, J., Lopes de Brito Magalhaes, C., Brandao Seiberf, J., Morais Araujo, C., Henrique Bianco de Souza, G., ... & Caldeira Costa, D. (2013). Baccharis trimera improves the antioxidant defense system and inhibits iNOS and NADPH oxidase expression in a rat model of inflammation. Current Pharmaceutical Biotechnology, 14(11), 975-984. https://doi.org/10.2174/1389201014666131226151728
Pádua, B. C., Silva, L. D., Júnior, J. V. R., Humberto, J. L., Chaves, M. M., Silva, M. E., ... & Costa, D. C. (2010). Antioxidant properties of Baccharis trimera in the neutrophils of Fisher rats. Journal of Ethnopharmacology, 129(3), 381-386. https://doi.org/10.1016/j.jep.2010.04.018
Pecoraro, F., Rancic, Z., Lachat, M., Mayer, D., Amann-Vesti, B., Pfammatter, T., ... & Veith, F. J. (2013). Chronic mesenteric ischemia: critical review and guidelines for management. Annals of vascular surgery, 27(1), 113-122. https://doi.org/10.1016/j.avsg.2012.05.012
Phillips, R. J., Kieffer, E. J., & Powley, T. L. (2003). Aging of the myenteric plexus: neuronal loss is specific to cholinergic neurons. Autonomic Neuroscience, 106(2), 69-83. https://doi.org/10.1016/S1566-0702(03)00072-9
Qu, Z. D., Thacker, M., Castelucci, P., Bagyanszki, M., Epstein, M. L., & Furness, J. B. (2008). Immunohistochemical analysis of neuron types in the mouse small intestine. Cell and tissue research, 334(2), 147-161. https://doi.org/10.1007/s00441-008-0684-7
Rocha, F. D., Teixeira, V. L., Pereira, R. C., & Kaplan, M. A. C. (2006). Diabetes mellitus e estresse oxidativo: produtos naturais como alvo de novos modelos terapêuticos. Rev Bras Farm, 87(2), 49-54. Retrieved Oct 18, 2019, from http://www.rbfarma.org.br/files/pag_49a54_DIABETES_MELLITUS.pdf
Sant'Ana, D. M., Araújo, E. J., Ramos, D. H., Hermes-Uliana, C., & Natali, M. R. M. (2012). Characterization of the myenteric neuronal population and subpopulation of the duodenum of adult wistar rat fed with hypoproteic chow. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 84(3), 799-806. h ttps://doi.org/10.1590/S0001-37652012005000050
Scherer-Singler, U., Vincent, S. R., Kimura, H., & McGeer, E. G. (1983). Demonstration of a unique population of neurons with NADPH-diaphorase histochemistry. Journal of neuroscience methods, 9(3), 229-234. https://doi.org/10.1016/0165-0270(83)90085-7
Serenini, G. F., Beltrami, J. M., Gerônimo, E., Favetta, P. M., Legnani, N. G., Otutumi, L. K., ... & Germano, R. M. (2020). Quantification of the neurons of myenteric plexus of the bat molossus rufus. Pesquisa Veterinária Brasileira, 40(6), 493-500. https://doi.org/10.1590/1678-5150-pvb-6381
Shakeel, M. (2015). Recent advances in understanding the role of oxidative stress in diabetic neuropathy. Diabetes & Metabolic Syndrome: Clinical Research & Reviews, 9(4), 373-378. https://doi.org/10.1016/j.dsx.2014.04.029
Silva Porto, G., Pereira, J. N. B., Tiburcio, V. G., Stabille, S. R., de Faria, H. G., de Melo Germano, R., & de Britto Mari, R. (2012). Effect of caloric restriction on myenteric neuroplasticity in the rat duodenum during aging. Autonomic Neuroscience, 168(1-2), 43-47. https://doi.org/10.1016/j.autneu.2012.01.006
Silverio, S. M., Mari, R. D. B., Clebis, N. K., Scoz, J. R., Germano, R. D. M., Major, J. A., ... & Stabille, S. R. (2009). Effects of ascorbic acid supplementation in ileum myenteric neurons of streptozotocin-induced diabetic rats. Pesquisa Veterinária Brasileira, 29(4), 295-302. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-736X2009000400004
Souza, M. M. Q., Silva, G. R. D., Cola, I. M., Silva, A. O., Schaedler, M. I., Guarnier, L. P., ... & Auth, P. A. (2020). Baccharis trimera (Less.) DC: An Innovative Cardioprotective Herbal Medicine Against Multiple Risk Factors for Cardiovascular Disease. Journal of Medicinal Food, 23(6), 676-684. https://doi.org/10.1089/jmf.2019.0165
Wester, T., O’Briain, D. S., & Puri, P. (1999). Notable postnatal alterations in the myenteric plexus of normal human bowel. Gut, 44(5), 666-674. Retrieved Oct 11, 2019, from https://gut.bmj.com/content/44/5/666.abstract
Zanoni, J. N., Buttow, N. C., Bazotte, R. B., & Neto, M. M. (2003). Evaluation of the population of NADPH-diaphorase-stained and myosin-V myenteric neurons in the ileum of chronically streptozotocin-diabetic rats treated with ascorbic acid. Autonomic Neuroscience, 104(1), 32-38. https://doi.org/10.1016/S1566-0702(02)00266-7
Zhao, L., Zhang, F., Ding, X., Wu, G., Lam, Y. Y., Wang, X., ... & Yu, L. (2018). Gut bacteria selectively promoted by dietary fibers alleviate type 2 diabetes. Science, 359(6380), 1151-1156. https://doi.org/10.1126/science.aao5774
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2020 Paula Montanhini Favetta; Francislaine Aparecida dos Reis Lívero ; Gustavo Ratti da Silva ; Grazielli de Fátima Serenini ; Edson Geronimo; Wesley Alves Trindade ; Natalia Namie Mizuguchi; Flavio de Souza Júnyor ; Luciana Kazue Otutumi ; Andreia Assunção Soares; Ricardo de Melo Germano
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Autores que publicam nesta revista concordam com os seguintes termos:
1) Autores mantém os direitos autorais e concedem à revista o direito de primeira publicação, com o trabalho simultaneamente licenciado sob a Licença Creative Commons Attribution que permite o compartilhamento do trabalho com reconhecimento da autoria e publicação inicial nesta revista.
2) Autores têm autorização para assumir contratos adicionais separadamente, para distribuição não-exclusiva da versão do trabalho publicada nesta revista (ex.: publicar em repositório institucional ou como capítulo de livro), com reconhecimento de autoria e publicação inicial nesta revista.
3) Autores têm permissão e são estimulados a publicar e distribuir seu trabalho online (ex.: em repositórios institucionais ou na sua página pessoal) a qualquer ponto antes ou durante o processo editorial, já que isso pode gerar alterações produtivas, bem como aumentar o impacto e a citação do trabalho publicado.
