Use of analytical methodologies for the determination of phenolic compounds in food in Brazil: advances and weaknesses
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i2.25193Keywords:
Phenolic compounds; Antioxidant activity; Analytical methodologies.Abstract
The importance of food plants for human health transcends the nutritional aspect, and can contribute to the prevention of diseases, due to the presence of bioactive substances, among which some phenolic compounds stand out. Thus, the present work aims to carry out an integrative literature review on the main analytical methodologies used in Brazil for the extraction, identification, quantification and evaluation of the antioxidant activity (AA) of total phenolics (TF) in foods, addressing their advances and weaknesses. It was observed that a universal protocol for studies of TF and its AA has not yet been established, as factors such as the origin of the sample are still preponderant for the choice of methods. The high cost is the main limiting factor for the wide use of more modern techniques such as lyophilization, despite other unconventional methodologies such as ultrasound (US) and microwave extraction are not becoming more popular. Maceration, solvent extraction, percolation and cold extraction will remain the most common extraction methods in Brazil. Although the use of chromatographic techniques, such as HPLC, coupled with powerful detectors are more accurate for quantification and identification, the high cost has also restricted the popularization of its use, with the Folin-Ciocalteau spectrophotometric technique remaining as the most widespread, due to its simplicity, reproducibility and convenience. As for the measurement of AA, it is common to use more than one methodology for its determination, in order to overcome the weaknesses of each method.
References
Adelowo, F., & Oladeji, O. (2016). Gas chromatographic and antimicrobial analyses of phenolic compounds in Senna alata (L.) Roxb. (Fabales: Fabaceae). Revista Brasileira de Gestão Ambiental e Sustentabilidade 3(6), 355-365. [CrossRef]
Agostini, F., Michelon, F. M., Gomes, V. A. A., Bertolazzi, S., Schwambachi, & Moura, S. (2017). Otimização de um método por CLAE-UV para análise de compostos fenólicos em Myrcia oblongata DC., Passiflora caerulea L. e Equisetum giganteum L. Scientia Chromatographica, 9(3), 180-193. [CrossRef]
Alonso, L. F. T, & Park, K. J. (2005). Dryer selection methods. Food Science and Technology 25(2), 208-216. [CrossRef]
Alves, C. Q., David, J. M., David, J. P., Bahia, M. V., & Aguiar, R. M. (2010). Métodos para determinação de atividade antioxidante in vitro em substratos orgânicos. Química Nova, 33(10), 2202-2210. [CrossRef]
Amorim, A. F. V. (2019). Química - Métodos Cromatográficos. Fortaleza: Editora UECE, 2019. 84p.
Ângelo, P. M., & Jorge, N. (2007). Compostos fenólicos em alimentos - uma breve revisão. Revista Instituto Adolfo Lutz 2007, 66, 01-09. [Link]
Apak, R., Güçlü, K., Demirata, B., Özyürek, M., Çelik, S. E., Bektaşoğlu, B., Berker, K I., & Özyurt, D. (2007). Comparative evaluation of various total antioxidant capacity assays applied to phenolic compounds with the CUPRAC assay. Molecules, 12(7), 496-547. [CrossRef] [Pubmed]
Araújo, M., & Lima, M. (2019). O uso de plantas medicinais para fins terapêuticos: os conhecimentos etnobotânicos de alunos de escolas pública e privada em Floriano, Piauí, Brasil. Amazônia: Revista de Educação em Ciências e Matemática, 15(33), 235-250. [CrossRef]
Augusto, T. R., Salinas, E. S. S., Alencar, S. M., D’arce, M. A. B. R., Camargo, A. C., & Vieira, T. M. F. S. (2014). Phenolic compounds and antioxidant activity of hydroalcoholic extracts of wild and cultivated murtilla (Ugni molinae Turcz.). Food Science and Technology, 34(4), 667-679. [CrossRef]
Barbosa, K. B. F., Costa, N. M. B., Alfenas, R. C. G., Paula, S. O., Minim, V. P. R., & Bressan, J. (2010). Estresse oxidativo: conceito, implicações e fatores modulatórios. Revista de Nutrição, 23(4), 629-643. [CrossRef]
Barcelos, S. C., Silva, E. F., Batista, E. M., Souza, P. A., & Farias, V. L. (2019). Efeito do processamento na composição bioativa e na capacidade antioxidante de tomates. Brazilian Journal of Food Research, 10(2), 122-142. [CrossRef]
Bastola, K. P., Guragain, Y. N., Bhadriraju, V., Vadlani, P. V. (2017). Evaluation of Standards and Interfering Compounds in the Determination of Phenolics by Folin-Ciocalteu Assay Method for Effective Bioprocessing of Biomass. American Journal of Analytical Chemistry, 8(6), 77036.
Benelli, P., Riehi, C. A. S., Smânia Jr., E. F. A., & Ferreira, S. R. S. (2010). Bioactive extracts of orange Citrus sinensis L. Osbeck) pomace obtained by SFE and low pressure techniques: Mathematical modeling and extract composition. O Diário dos Fluidos Supercríticos, 55(1), 132-141. [CrossRef]
Benemann, G. D., Botelho, R. V., Torres, Y. R, Camargo, L. A., Khalil, N. M., Oldoni, T. L. C., & Silva, D. H. (2018). Compostos bioativos e atividade antirradicalar em farinhas de bagaço de uvas de diferentes cultivares desidratadas em liofilizador e em estufa. Brazilian Journal of Food Technology, 21, e2017205. [CrossRef]
Borges, K. C. (2015). Pitanga (Eugenia uniflora) desidratada por atomização e liofilização: Características físico-químicas, compostos bioativos e efeito sobre a longevidade, estresse oxidativo e neurotoxicidade induzida em modelos in vivos Caenorhabditis elegans (Tese Doutorado).
Brack, P., Köhler, M., Corrêa, C. A., Ardissone, R. E., Sobral, M. E. G., & Knupp, V. F. (2020). Native fruits of Rio Grande do Sul, Brazil: richness and potential as food. Rodriguésia, 71, e03102018. [CrossRef]
Brum, A. A. S., Arruda, L. F, & Regitano-d´Arce, M. A. B. (2009). Métodos de extração e qualidade da fração lipídica de matérias-primas de origem vegetal e animal. Química Nova, 32(4), 849-854. [CrossRef]
Caleja, C., Barros, L., Oliveira, M. B. P. P., Santos-Buelga, C., & Ferreira, I. C. F. R. (2017). Caracterização do perfil fenólico de extratos aquosos de Matricaria recutita L. obtidos por decocção. Revista de Ciências Agrárias, 40(1), 161-170. [CrossRef]
Campos, R. C., & Grinberg, P. (2001). Acoplamento cromatografia gasosa - espectrometria de absorção atômica em estudos de especiação: uma revisão. Química. Nova, 24(2), 220-227. [CrossRef]
Canepelle, E., Writzl, T. C., Steffler, A. D., Redin, M., Weber, F. H., & Scherer, G. C. R. S. (2020). Influência dos métodos de secagem e preparo das amostras no processo de desidratação e reidratação do Abacaxi Pérola Ananas comosus L. Revista brasileira de Tecnologia Agroindustrial, 14(2), 3267-3283. [CrossRef]
Cardoso, I. C., Pereira, H. M. G., Tappin, M. R. R., & Behrens, M. D. (2017). Influence of extraction technique and particle size of the plant material in the content of total phenolic compounds of tincture of Alpinia zerumbet leaves. Revista Fitos, 11,1-126. [CrossRef]
Carratu, E., & Sazini, E. (2005). Sostanze biologicamente attive presenti negli alimenti di origine vegetable. Annali dell'Istituto Superiore di Sanità, 41(1),7-16. [CrossRef]
Carvalho, J. C. T., Gosmann, G., & Schenkel, E. P. (2004). Compostos fenólicos simples e heterosídicos. In: SIMÕES, C. M. O. et al. Farmacognosia: da planta ao medicamento. 5. ed. Florianópolis: UFSC, 1102p.
Cecchi, H. M. (2003). Fundamentos teóricos e práticos em análise de alimentos. 2.ed. Campinas: Ed.UNICAMP, 207p.
Celestino, S. M. C. (2010). Princípios de Secagem de Alimentos. Planaltina, DF: Embrapa Cerrados, 33-46.
Cheng, Y., Xu, Q., Liu, J., Zhao, C., Xue, F., & Zhao, Y. (2014). Decomposition of five phenolic compounds in high temperature water. Journal of the Brazilian Chemical Society, 25, 2102-2107. [CrossRef]
Chiaradia, M. C., Collins, C. H., & Jardim, I. C. S. F. (2008). O estado da arte da cromatografia associada à espectrometria de massas acoplada à espectrometria de massas na análise de compostos tóxicos em alimentos. Química Nova, 31(3), 623–636. [CrossRef]
Collins, C. H., Braga, G. L., Bonato, P. S. (2006). Fundamentos de cromatografia. Campinas: Ed. da UNICAMP, 452p.
Cottica, S. M., Sawaya, A. C. H. F., Eberlin, M. N., Franco, S. L., Zeoula, L. M., & Visentainer, J. V. (2011). Antioxidant activity and composition of propolis obtained by different methods of extraction. Journal of Brazilian Chemical Society, 22(5), p.929-935. [CrossRef]
Croteau, R., Kutchan, T. M., & Lewis, N. G. (2000). Natural Products (Secondary Metabolites). Biochemistry and molecular biology of plants, 24, 1250-1319. [CrossRef]
Davoodi, M. G., Vijayanand, P., Kulkarni, S.G., & Ramana, K.V.R. (2007). Effect of different pre-treatments and dehydration methods on quality characteristics and storage stability of tomato powder. LWT - Food Science and Technology, 40(10), 1832–1840. [CrossRef]
Dajas, F., Rivera-Megret, F., Blasina, F., Arredondo, F., Abin-Carriquiry, J. A., Costa, G., Echeverry, C., Lafon, L., Heizen, H., Ferreira, M., & Morquio A. (2003). Neuroprotection by flavonoids. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 36(12), 1613-1620. [CrossRef] [Pubmed]
Dias, R., Oliveira H., Fernandes, I., Simal-Gandra, J., & Perez-Gregorio, R. (2020). Recent advances in extracting phenolic compounds from food and their use in disease prevention and as cosmetics. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 61(7), p. 1130-1151.
Diaz Napal, G. N., Defagó, M. T., Valladares, G.R., & Palacios, S. M. (2010). Response of Epilachna paenulata to Two Flavonoids, Pinocembrin and Quercetin, in a Comparative Study. Journal of Chemical Ecology,36(1), 898–904. [CrossRef]
Dutra, F. L. G., Hoffmann-Ribani, R., & Ribani, M. (2010). Determinação de compostos fenólicos por cromatografia líquida de alta eficiência isocrática durante estacionamento da erva-mate. Química Nova, 33(1), 119-123. [CrossRef]
El-Aneed, A., Cohen, A., & Banoub, J. (2009). Mass Spectrometry, Review of the Basics: Electrospray, MALDI, and Commonly Used Mass Analyzers. Applied Spectroscopy Reviews, 44(3), 210-230.
Emidio, N. B., Carpanez, A. G., Quellis, L. R, Farani, P. S., Vasconcelos, E. G., & Faria-Pinto, P. (2015). Proteômica: uma introdução aos métodos e aplicações. HU Revista, 41, 101-111. [CrossRef]
Espinosa, E. W., Garzon, L, C A., & Medina, O. J. (2017). Extração assistida por micro-ondas em frutas secas de espécies andinas Meridionale de Vaccinium: Condições experimentais na recuperação de polifenóis totais. Ciências e Agrotecnologia, 41(6), 701-712. [CrossRef]
Faller, A. L. K, & Fialho, E. (2009). Polyphenol availability in fruits and vegetables consumed in Brazil. Revista de Saúde Pública, 43(2), 211-8. [CrossRef]
Ferreira, R. Q., & Avaca, L. A. (2008). Determinação eletroquímica da atividade antioxidante de sucos de frutas industrializados usando o CRAC assay. Química Nova, 31(8), 2169-2173. [CrossRef]
Ferreira, E. A., Siqueira, H. E., Vilas Boas, E. V., Hermes, V. S., & Rios, A. O. (2016). Compostos bioativos e atividade antioxidante de frutos de cultivares de abacaxizeiros. Revista Brasileira de Fruticultura, 38(3), 146. [CrossRef]
Frias, C. F., Gramacho, S. A., & Pineiro, M. (2014). Cromatografia gasosa-espectrometria de massas e derivatização assistida por micro-ondas na identificação de isômeros de glicose: uma prática para o ensino avançado em análise e caracterização de compostos orgânicos. Química Nova, 37(1), 176-180. [CrossRef]
Garcia, L. P. (2009). Liofilização aplicada a alimentos. Monografia (Química em Alimentos). Universidade Federal de Pelotas. Pelotas, 46 f.
Garcia-Salas, P., Morales-Soto, A., Segura-Carretero, A., & Fernández-Gutiérrez, A. (2010). Phenolic-Compound-Extraction Systems for Fruit and Vegetable Samples. Molecules, 15, 8813-8826. [doi:10.3390/molecules15128813]
Glish, G. L., & Vachet, R. W. (2003). The basics of mass spectrometry in the twenty-first century. Nature Reviews Drug Discovery, 2(2), 140-150.
Gomes, D., C., L. (2003) Os fitonutrimentos: revisão bibliográfica. Tese de licenciatura em Ciências da Nutrição e Alimentação apresentada à Faculdade de Ciências da Nutrição e Alimentação da Universidade do Porto. Universidade do Porto, Porto, Portugal. [CrossRef]
Görüşük, E.M., Bekdeşer, B., Bener, M., & Apak, R. (2020). ABTS radical-based single reagent assay for simultaneous determination of biologically important thiols and disulfides. Talanta, 218, 121212.
Guerra, A. P., Garcia, V. A. S., & Silva, C. (2016). Otimização da extração de compostos fenólicos da casca de manga (Tommy Atkins) utilizando processo assistido por ultrassom. E-xacta, 09(1), 103-110. [CrossRef]
Habibi, F., & Ramezanian, A. (2017). Vacuum infiltration of putrescine enhances bioactive compounds and maintains quality of blood orange during cold storage. Food Chemistry, 227, 1-8. [CrossRef]
Hartanti, S. M. K. Yonas, J. J. Mustamu, S. Wijaya, H. K., Setiawan, L., & Soegianto L. (2019). Influence of extraction methods of bay leaves (Syzygium polyanthum) on antioxidant and HMG-CoA Reductase inhibitory activity. Heliyon, 5(4), 01485. [CrossRef]
Hayouni, E. A., Abedrabba, M., Bouix, M., Hamdi, M. (2007). The effects of solvents and extraction method on the phenolic contents and biological activities in vitro of Tunisian Quercus coccifera L. and Juniperus phoenicea L. fruit extracts. Food Chemistry, 105(3),1126–1134. [CrossRef]
Huie, C. W. (2002). A review of modern sample-preparation techniques for the extraction and analysis of medicinal plants. Analytical and Bioanalytical Chemistry,373, 23-30. [CrossRef] [Pubmed]
Ignat, I., Volf, I., & Popa, V. I. A (2011). critical review of methods for characterization of polyphenolic compounds in fruits and vegetables. Food Chemistry, 126(4), 1821–1835. [CrossRef]
Im, I., Park, K. R., Kim, S. M., Kim, C., Park, J. H., Nam, D., Jang, H. J., Shim, B. S., Ahn, K. S., Mosaddik, A., Sethi, G., Cho, S. K., & Ahn, K. S. (2012). The butanol fraction of guava (Psidium cattleianum Sabine) leaf extract suppresses MMP-2 and MMP-9 expression and activity through the suppression of the ERK1/2 MAPK. Nutrition and Cancer, 64(2), 255–266. [CrossRef]
Jensen, S., Meleiro, L. A. C., & Zaoelo, E. F. (2011). Soft-sensor model design for control of a virtual conveyor-belt dryer of mate leaves (Ilex paraguariensis). Biosystems Engineering, 108(1), 75-85. [CrossRef]
Jiao, Y., Kilmartin, P. A., Fan, M., & Quek, S. Y. (2018). Assessment of phenolic contributors to antioxidant activity of new kiwifruit cultivars using cyclic voltammetry combined with HPPLC. Food Chemistry, 268(1), 77-85. [CrossRef]
Kalili, K. M., & Villiers A. (2011). Recent developments in the HPLC separation of phenolic compounds. Journal of Separation Science, 34(8), 854-876.
Kaur, R., Kaur, K., & Ahluwalia, P. (2020). Effect of drying temperatures and storage on chemical and bioactive attributes of dried tomato and sweet pepper. LWT - Food Science and Technology, 117, 108604. [CrossRef]
Khoddami, A., Meredith, A. W., & Roberts T. H. (2013). Techniques for Analysis of Plant Phenolic Compounds. Molecules, 18, 2328-2375. [CrossRef]
Kivilompolo, M., & Hyotylainen, T. (2009). On-line coupled dynamic sonication-assisted extraction-liquid chromatography for the determination of phenolic acids in Lamiaceae herbs. Chromatography, 1216(6), 892-896. [CrossRef]
Lanças, F. M. A (2009). Cromatografia Líquida Moderna e a Espectrometria de Massas: finalmente “compatíveis”? Scientia Chromatographica, 01. [CrossRef]
Mann, M., Hendrickson, R. C., & Pandey, A. (2001). Analysis of proteins and proteomes by mass spectrometry. Annual Review of Biochemistry, 70(1) 437-473.
Mandal, V., Mohan, Y., & Hemalatha, S. (2007). Microwave assisted extraction – An innovative and promising extraction tool for medicinal plant research. Pharmacognosy Reviews,1(1), 7-18. [CrossRef]
Markon, M., Hasan, M., Daud, W. R. W., Singh H., Jahim, J. M. (2007). Extraction of hydrolysable tannins from Phyllanthus niruri Linn: Effects of solvents and extraction methods. Separation and Purification Technology, 52(3), 487-96. [CrossRef]
Marques, L. G., Silveira, A. M., & Freire, J. T. (2006). Freeze-Drying Characteristics of Tropical Fruits. Drying Technology, 24, 457-463. [CrossRef]
Marques, L. G. (2008). Liofilização de frutas tropicais. Tese (Doutorado em Ciências Exatas e da Terra) - Universidade Federal de São Carlos, São Carlos, 293 f.
Martillanes, S., Rocha-Pimienta, J., Cabrera-Bañegil, M., Martín-Vertedor, D., & Delgado-Adámez, J. (2017). Application of Phenolic Compounds for Food Preservation: Food Additive and Active Packaging. IntechOpen. doi: http://dx.doi.org/10.5772/66885
Medina, A. L., Chaves, F. C., Salvador, M., Zambiazi, R. C., Silva, W. P., Nora, L., & Rombaldi, C. V. (2011). Araçá (Psidium cattleianum Sabine) fruit extracts with antioxidant and antimicrobial activities and antiproliferative effect on human cancer cells. Food Chemistry, 128(4), 916–922. [CrossRef]
Melo, G. W., Rodighero, K., Freitas, R. F., Magro, Albarello, J. B., & Oliveira, P. D. (2013). Secagem Rápida de Tecidos de Plantas para Determinação da Matéria Seca. Congresso Brasileiro de Ciência do Solo.
Melo, I. L. P., & Almeida-Muradian, L. B. (2011). Comparison of methodologies for moisture determination on dried bee pollen samples. Food Science and Technology, 31(1), 194-197. [CrossRef]
Mendes, K. R., Dantas, M. V. C., Nogueira, A. B., Etchegaray, A., Filgueiras, P. R., & Poppi, R. J. (2018). Determinação simultânea de diferentes compostos fenólicos usando biossensor eletroquímico e calibração multivariada. Journal Brazilian Chemical Society, 29(3), 88-97. [CrossRef]
Mendes K. D. S., Silveira R. C. C. P., & GALVÃO C. M. (2008). Revisão integrativa: método de pesquisa para a incorporação de evidências na saúde e na enfermagem. Texto Contexto Enfermagem, 17(4), 758.
Mendonça, C. P., & Anjos, L.A. (2004). Aspectos das práticas alimentares e da atividade física como determinantes do crescimento do sobrepeso/obesidade no Brasil. Cadernos de Saúde Pública, 20(3), 698-709. [CrossRef]
Meregalli, M. B., Puton, B. M. S., Camera, F. D. M., Amaral, A. U., Zenia, J., Cansian, R. L., Mignoni, M. L., Backes, G. T. (2020). Conventional and ultrasound-assisted methods for extraction of bioactive compounds from red araçá peel (Psidium cattleianum Sabine). Arabian Journal of Chemistry, 12(6), 5800-5809. [CrossRef]
Milani, L. I. G., Terra, N. N., Fries, L. L. M., Cichoski, A. J, Rezer, A. P. S., Backes, A. M., & Parodia, C. G. (2012). Atividade antioxidante e antimicrobiana in vitro de extratos de caqui (Diospyros kaki L.) cultivar Rama Forte. Brazilian Journal of Food Technology, 15(2), 118-124. [CrossRef]
Nascimento, V. R. G., Biagi, J. D., & Oliveira, R. A. (2015). Modelagem matemática da secagem convectiva com radiação infravermelha de grãos de Moringa oleifera. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 19(7), 686-692. [CrossRef]
Nery, M. C., Carvalho, M. L. M., & Oliveira, L. M. (2004). Determinação do grau de umidade de sementes de Ipê-do Cerrado Tabebuia ochracea (Cham.) Standl. pelos métodos de estufa e forno de microondas. Ciência e Agrotecnologia, 28(6), 1299-1305. [CrossRef]
Neto, A. M. B., Lima, J. O., Marques, L. G., Prado, M. M. (2014). Secagem Infravermelho de caroços de açaí para a obtenção de biomassa. Universidade Estadual de Campinas, Faculdade de Engenharia Química. XX congresso brasileiro de engenharia química. Florianópolis, Santa Catarina.
Nollet, L. M. L., & Gutierrez-Uribe, J. A. (2018). Phenolic Compounds in Food: Characterization and Analysis. Routledge Taylor & Francis Group, 2018, 420p.
Oksana, S., Marian, B., Mahendra, R., & Bo, S. H. (2012). Plant phenolic compounds for food, pharmaceutical and cosmetiсs production. Journal of Medicinal Plants Research, 6(13), 2526-2539.
Oliveira, D. M., Bastos, D. H. M. (2011). Phenolic acids bioavailability. Química Nova, 34(6).
Oliveira, P. S., Muller, R. C. S.; Dantas, K. G. F., Alves, C. N., Vasconcelos, M. A. M., & Venturieri G.C. (2012). Ácidos fenólicos, flavonoides e atividade antioxidante em méis de Melipona fasciculata, M. flavolineata e Apis mellifera (Apidae, Apini) da Amazônia. Quimica Nova, 35(9), 1728-1732. [CrossRef]
Oliveira, V. B., Zuchetto, M., Oliveira, C. F., Paula, C. S., Duarte, A. S. F., Miguel, M. D., & Miguel, O. G. (2016). Efeito de diferentes técnicas extrativas no rendimento, atividade antioxidante, doseamentos totais e no perfil por CLAE-DAD de Dicksonia sellowiana (presl.). Hook, dicksoniaceae. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 18(1), 230-239. [CrossRef]
Pacheco, S., Borguini, R. G., Santiago, M. C. P. A., Nascimento, L. S. M., & Godoy, R. L. O (2014). História da Cromatografia Líquida. Revista Virtual de Química, 7(4), 1225-1271. [CrossRef]
Pereira, R. J.; Cardoso, M. G. (2012). Metabólitos secundários vegetais e benefícios antioxidantes. Journal of Biotechnology and Biodiversity. 3(4), 146-152
Peres, D. S. (2020). Butter oil with added vegetable extracts from oregano (Origanum vulgare L.) and basil (Ocimum basilium L.): development and physical, chemical and sensory characterization. Research, Society and Development, 9, e85953205. [CrossRef]
Peres, R. G. Aplicações de CE-DAD e HPLC-DAD-ESI/MS na determinação de compostos fenólicos, metilxantinas e ácidos orgânicos em bebidas. Tese em Ciência de Alimentos. Faculdade de Engenharia de Alimentos da Universidade Estadual de Campinas. Campinas, São Paulo, 2007.
Pinto, Â. C., Silva, D. H. S., Bolzani, V. S., Lopes, N. P., & Epifânio, R. A. (2002). Produtos naturais: Atualidades, desafios e perspectivas. Química Nova, 25(1), 45-61. [CrossRef]
Prior, R., Xianli, W.U., & Schaich, K. (2005). Standardized Methods for the determination of Antioxidant Capacity and Phenolics in Food and Dietary Supplements. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53(10), 4290-4306. [CrossRef]
Queiroz, V. A. V., Berbert, P. A., Molina, M. A. B, Gravina, G. A., Queiroz, L R., & Deliza, R. (2007). Desidratação por imersão-impregnação e secagem por convecção de goiaba. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, 42(10), 1479-1486. [CrossRef]
Reverchon, E., & Marco I. (2006). Supercritical fluid extraction and fractionation of natural matter. Journal of Supercritical Fluids, 38(2), 146-166. [CrossRef]
Ribeiro, L. G. (2018). Extração Assistida por Micro-ondas de Óleo Essencial de Folhas de Eucalipto (Eucalyptus urophylla x globulus). Dissertação de mestrado. Universidade Federal do Rio Grande do Sul, Porto Alegre, Brasil. [CrossRef]
Rufino, M. S. M., Alves, R. E., Brito, E. S., Filho, J. M., & Moreira, A. V. B. (2006). Metodologia científica: determinação da atividade antioxidante total em frutas no sistema b-caroteno/ácido linoleico. Fortaleza: EMBRAPA, 126, 1-4. [CrossRef]
Rufino, M. S. M., Alves, R. E., Brito, E. S., Morais, S. M., Sampaio, C. G., Pérez-Jiménez, J., & Saura-Calixto, F. D. (2007). Metodologia científica: determinação da atividade antioxidante total em frutas pela captura do radical livre DPPH. EMBRAPA, 127, 1-4. [CrossRef]
Santos, D. T., Veggi, P. C., & Meireles, M. A. A. (2010). Extraction of antioxidant compounds from Jabuticaba (Myrciaria cauliflora) skins: Yield, composition and economical evaluation. Journal of Food Engineering, 101(1), 23-31. [CrossRef]
Santos, M. A. I., Simão, A. A., Marques, T. R., Sackz, A. A., & Corrêa, A. D. (2016). Effect of different extraction methods on the antioxidant activity and phenolic compounds profile of cassava leaf. Brazilian Journal Food Technology, 19, e2015067. [CrossRef]
Santos, V. O., Soares, S. D., Dias, P. C.S., Duarte, S. P. A., Santos, M. P. L. & Nascimento, F. C. A. (2020). Chromatographic profile and bioactive compounds found in the composition of pupunha oil (Bactris gasipaes Kunth): implications for human health. Revista de Nutrição, 33, e190146, 190-146. [CrossRef]
Savi, A. (2015). Otimização do processo de extração de compostos bioativos de folhas de jambo (Syzygium malaccense). Trabalho de Conclusão de Curso (Bacharelado em Química Industrial) – Universidade Tecnológica Federal do Paraná. Pato Branco, 48 f.
Sequeiros, R. C. P. (2009). Aplicação de novas metodologias analíticas no estudo de compostos fenólicos em matrizes alimentares. Dissertação (Departamento de Química e Bioquímica). Universidade de Lisboa.
Schiassi, M. C. E. V., Souza, V. R., Lago, A. M. T., Campos, L. G., & Queiroz, F. (2018). Fruits from the Brazilian Cerrado region: Physico-chemical characterization, bioactive compounds, antioxidant activities, and sensory evaluation. Food Chemistry, 245, 305-311. [CrossRef] [Pubmed]
Seraglio, S. K. T. (2018). Determinação de compostos fenólicos por LC-MS/MS e capacidade antioxidante de acerola em três estágios de maturação comestíveis. Revista CSBEA, 4(1), 96-108. [CrossRef]
Silva, L. A., Raposo, J. D. A., Campos, L. P. G., Conceição, E. C., Oliveira, R. B., & Mourão, R. H. V. (2018). Atividade antioxidante do óleo essencial de Myrcia sylvatica (G. Mey.) DC. por diferentes métodos de análises antioxidantes (ABTS, DPPH, FRAP, βcaroteno/ácido linoleico). Revista Fitos, 12(2), 117-126. [CrossRef]
Silva, P. D. (2012). Determinação de compostos fenólicos por HPLC. Dissertação de mestrado. Universidade da Beira Inferior, Covilhã, Portugal. [CrossRef]
Skoog, D., West, D., Holler, J., e Crouch, S. (2006). Fundamentos de Química Analítica. (1ª ed.) São Paulo, SP.
Soares, S. E. (2002). Ácidos fenólicos como antioxidantes - Revisão. Revista de Nutrição, 15(1), 71-81. [CrossRef]
Soares, M., Welter, L., Gonzaga, L., Lima, A., Mancini-Filho, J., & Felt, R. (2008). Avaliação da atividade antioxidante e identificação dos ácidos fenólicos presentes no bagaço de maçã cv. Gala. Ciência e Tecnologia de Alimentos, 28(3), 727-732. [CrossRef]
Sobrinho, T. J. S. P., Gomes, T. L. B., Cardoso, K. C. M., Amorim, E. L. C., & Albuquerque, U. P. (2010). Otimização de metodologia analítica para o doseamento de flavonoides de Bauhinia cheilantha (Bongard) Steudel. Química Nova, 33(2), 288-291. [CrossRef]
Taiz, L., & Zeigert, E. (2004). Fisiologia Vegetal. 3° edição. Porto Alegre: Artmed, 719 p.
Tallini, L. R., Pedrazza, G P. R., Bordignon, S. A. L., Costa, A. C. O., Steppe, M., Fuentefria, A., & Zuanazzi, J. A. S. (2015). Analysis of flavonoids in Rubus erythrocladus and Morus nigra leaves extracts by liquid chromatography and capillary electrophoresis. Revista Brasileira de Farmacognosia, 25(3), 219-227. [CrossRef]
Texeira, L. N., Stringheta, P. C., & Oliveira, F.A. (2008). Comparação de métodos para quantificação de antocianinas. Revista Ceres, 55(4), 297-304. [CrossRef]
Tirzitis, G., & Bartosz, G. (2010). Determination of antiradical and antioxidant activity: basic principles and new insights. Acta Biochimica Polonica, 57(2), 139-142. [CrossRef]
Tyśkiewicz, K., Konkol, M., & Rój, E. (2018). The Application of Supercritical Fluid Extraction in Phenolic Compounds Isolation from Natural Plant Materials. Molecules, 23(10), 2625. https://doi.org/10.3390/molecules23102625
Tzia, C., & Liadakis, G. (2003). Extraction optimization in food engineering. New York: Marcel Dekker, Inc., p.70.
Veber, J., Petrini, L. A., Andrade, L. B., & Siviero, J. (2015). Determinação dos compostos fenólicos e da capacidade antioxidante de extratos aquosos e etanólicos de Jambolão (Syzygium cumini L.). Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 17(2), 267-273. [CrossRef]
Vinas, P., Lopez-Erroz, C., Marin-Hernandez, J. J., & Hernadez-Cordoba, M. (2000). Determination of phenols in wines by liquid chromatography with photodiode array and fluorescence detection. Journal of Chromatografy A, 871(1-2), 85-93. [CrossRef]
Vizzotto, M, & Pereira, M. C. (2009). Metodologia científica: otimização do processo de extração de compostos fenólicos antioxidantes de mirtilo (Vaccinium ashei Reade). EMBRAPA Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento, 101, 1-19. [CrossRef]
Wolff, S. M., Silveira, A, C., & Lazzarotto, M. (2019). Metodologia para extração de compostos fenólicos e antioxidantes da erva-mate. Revista de Iniciação Científica CESUMAR, 21(1), 45-54. [CrossRef]
Yamaguchi, S. K. F., Krebs, C. S., Bertolli, S. L., & Carvalho, L. F. (2017). Freeze-drying of dairy products: A review. Revista Espacios, 38(22), 2. [CrossRef]
Yang, Y. C., Yang, Z. W., Zhang, Z. H., Li, J., Zu, Y G., & Fu, Y. J. (2013). Effect of acid hydrolysis in the microwave-assisted extraction of phenolic compounds from Geranium sibiricum Linne with the guidance of antibacterial activity. Journal of Medicinal Plants Research, 7(14), 819-830. [CrossRef]
Zanoelo, E. F., di Celso, G. M., & Kaskantzis, G. (2007). Drying Kinetics of Mate Leaves in a Packed Bed Dryer. Biosystems Engineering, 96(4), 487–494.[CrossRef]
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2022 Alex Sander Lopes da Silva; Amanda de Jesus Silva; Abdon Luiz Ornelas Latif; Aníbal de Freitas Santos Júnior; Clícia Maria de Jesus Benevides
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Authors who publish with this journal agree to the following terms:
1) Authors retain copyright and grant the journal right of first publication with the work simultaneously licensed under a Creative Commons Attribution License that allows others to share the work with an acknowledgement of the work's authorship and initial publication in this journal.
2) Authors are able to enter into separate, additional contractual arrangements for the non-exclusive distribution of the journal's published version of the work (e.g., post it to an institutional repository or publish it in a book), with an acknowledgement of its initial publication in this journal.
3) Authors are permitted and encouraged to post their work online (e.g., in institutional repositories or on their website) prior to and during the submission process, as it can lead to productive exchanges, as well as earlier and greater citation of published work.