Protocolo de obtención de plantas de Cedrela odorata L. mediante cultivo de tejidos

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v9i12.10771

Palabras clave:

Crecimiento in vitro; Micropropagación; Citoquininas; Auxinas.

Resumen

El trabajo tuvo como objetivo desarrollar un protocolo básico para la micropropagación de plantas de Cedrela odorata L. a partir de plántulas germinadas in vitro. Los experimentos se realizaron en el laboratorio de Biotecnología y Recursos Genéticos de Embrapa Amazônia Oriental. Para la desinfestación de semillas, se probó la solución de hipoclorito de sodio a 0; 1,0; 1,5 y 2,0% durante 10, 15 y 20 minutos. Para la inducción de gemación en medio MS, se probaron 5 concentraciones de BAP y 2 tipos de segmentos y se utilizó enraizamiento 0; 1,0; 1,5; 2,0 y 2,5 mg. L-1 de ANA. El diseño utilizado fue completamente al azar o en arreglo factorial según los tratamientos analizados. Los datos obtenidos en los diferentes experimentos se sometieron a análisis de varianza y se compararon las medias mediante la prueba de Tukey al 5% de probabilidad. Los resultados mostraron que el uso de hipoclorito de sodio al 2.0% durante 15 minutos mostró el menor porcentaje de contaminación de las semillas. Tratamiento con 1 mg. L-1 de BAP promovió la mayor cantidad y longitud de brotes en segmentos apicales y con la adición de 2 g. L-1 de sacarosa indujo la aparición de brotes en segmentos de tallo. El mayor número y longitud de raíz / explante se obtuvo con 1 mg. ANA L-1. Es posible obtener una planta completa de Cedrella odorata a partir de semillas desinfectadas en solución de hipoclorito de sodio al 2,0% y el uso de 1 mg. L-1 de BAP y ANA para inducción de gemación y enraizamiento, respectivamente.     

Citas

Albino, B. É. S., Canatto, R. A., Cordeiro, A. T., Fukushima, C. H., Pilon, A. M. (2019). Propagação in vitro de jequitibá-branco (Cariniana estrellensis): uma alternativa para programas de reflorestamento. Brazilian Journal of Biosystems Engineering, 13(2), 88-99. doi: http://dx.doi.org/10.18011/bioeng2019v13n2p88-99.

Amaral, V. F. M. (2006). Multiplicação in vitro de Cedrella fissilis Vell. Dissertação Mestrado, Programa dre Pós Graduação em Engenharia Florestal, Universidade Federal de Santa Maria. Santa Maria, RS, Brasil.

Aragão, V. P. M., De Souza, R. Y. R., Reis, R. S., Macedo, A. F., Floh, E. I. S., Silveira, V. (2016). In vitro organogenesis of Cedrela fissilis Vell. (Meliaceae): the involvement of endogenous polyamines and carbohydrates on shoot development. Plant Cell Tissue and Organ Cult, 124, 611-620. doi.org/10.1007/s11240-015-0919-8.

Bianchetti, R. E., DE Resende, C. F., Pacheco, V. S., Dornellas, F. F., DE Oliveira, A. M. S., Freitas, J. C. E., Peixoto, P. H. P. (2017). An improved protocol for in vitro propagation of the medicinal plant Mimosa pudica L. African Journal of Biotechnology, 16(9), 418-428. Doi.org/10.5897/AJB2016.15831.

Botin, A. A., & Carvalho, A. De (2015). Reguladores de crescimento na produção de mudas florestais, Revista de Ciências Agroambientais, 13(1), 83-96.

Brondani, G. E., Dutra, L. F., Grossi, F., Wendling, I., Hornig, J. (2009). Estabelecimento, multiplicação e alongamento in vitro de Eucalyptus benthamii Maiden & Cambage x Eucalyptus dunnii Maiden. Revista Árvore, 33(1), 11-19. doi.org/10.1590/S0100-67622009000100002.

Carvalho, P. E. R. (2010) Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica; Colombo, PR: Embrapa Espécies arbóreas brasileiras. Florestas, 4, 644.

Carvalho, P. E. R. (1994). Espécies Florestais Brasileiras: Recomendações silviculturais, potencialidades e uso da madeira. Colombo, EMBRAPA-CNPF/SPI, 693.

Ferreira, D. F. (2011). Sisvar: A computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, 35(6), 1039-1042.

Ferreira, M. G. R., Cárdenas, F. E. N., Carvalho, C. H. S., Carneiro, A. A., Filho, C. F. D. (2002). Resposta de eixos embrionários de cupuaçu (Theobroma grandiflorum Schum.) à concentração de sais, doses de sacarose e renovação do meio de cultivo. Revista Brasileira de Fruticultura. Jaboticabal, 24(1), 246-248. doi.org/10.1590/S0100-29452002000100053.

Laudano, W. L. DE S. A. (2005). Cultura de calos e criopreservação de sementes de Cedrela fissilis Vellozo (Meliaceae). Dissertação de Mestrado, Programa de Pós-Graduação em Biotecnologia, Universidade Federal de Santa Catarina. Florianópolis, Brasil.

Lopes, S. C., Lameira, O. A., Fortes, G. R. L., Nogueira, R. C., Pinto, J. E. B. P. (2001). Enraizamento in vitro de Mogno (Swietenia macrophyla King). Cerne, Lavras, 7(1), 124-128.

Maestri, M. P., Cardoso, M. G. C. A., Rabelo, L. K. L. A. (2020). A praga do mogno brasileiro: Hypsipyla grandella Zeller. Biodiversidade, 19(3), 24.

Marchi, R. R. Y., & Fernandes, D. A. (2018). Doses de hipoclorito e tempos de contato no estabelecimento in vitro de sementes de rosa do deserto, (Adenium obesum Roem. & Schult. (Forssk.)), TCC-Agronomia, Centro Universitário de Várzea Grande – UNIVAG, Várzea Grande, Mato Grosso, Brasil.

Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15, 473-497. doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.

Nietsche, S., Marques, S. V., Pereira, M. C. T., Salles, B., Xavier, A. A., França, A. C., Lima, C., Silva, L. S. (2006). Estabelecimento in vitro de explantes de três cultivares de bananeira. Ciência Rural, 36(3), 989-991. doi.org/10.1590/S0103-84782006000300043.

Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. B. & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da pesquisa científica [recurso eletrônico [eBook]. Santa Maria. Ed. UAB / NTE / UFSM. Retrieved from https://repositorio.ufsm.br/bitstream/handle/1/15824/Lic_C omputacao_MetodologiaPesquisa-Cientifica.pdf?sequence=1.

Reis, I. N. R. de., Lameira, O. A., Cordeiro, I. M. C. C., Carneiro, A. G., Ferreira, S. F. (2008). Indução in vitro de brotos em paricá (Schizolobium parahyba var. amazonicum). Plant Cell Culture and Micropropagation. Lavras, 4(1), 21-27.

Roussos, P. A., Archimandriti, A., Beldekou, I. (2016). Improving in vitro multiplication of juvenile Europe anchestnut (Castanea sativa Mill) explants by the use of growthret ardants. Scientia Horticulturae, 198, 254-256. doi: 10.1016 / j.scienta.2015.11.039.

Souza, L. M. S., Silva, J. B., Gomes, N. S. B. (2013). Qualidade sanitária e germinação de sementes de copaíba. Bioscience Journal, Uberlândia, 29(1), 1524-1531.

Schottz, E. S., Filho, A. N. K., Tracz, A. L., Koehler, H., Ribas, L. L. F., Quoirin, M. (2007). Multiplicação in vitro de Swietenia macrophylla King (Meliaceae) a partir de material juvenil. Ciência Florestal, 17(2), 109-117. doi.org/10.5902/198050981942.

Sakuragui, C. M., Stefano, M. V., Calazans, L. S. B. (2012) Meliaceae in Lista de Espécies da Flora do Brasil, Jardim Botânico do Rio de Janeiro. 2012. Recuperado de < http:// floradobrasil.jbrj.gov.br/2012/FB009998>.

Taiz, L., & Zeiger, E. (2004). Fisiologia vegetal. Porto Alegre: Artmed, 3, 719.

Torres, A. C., Caldas, L. S., Buso, J. A. (1998) Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas, Brasília- DF: EMBRAPA/CBAB, 1, 509.

Vankova, R., Hsiao, K. C., Bornman, C. H., Gaudinova, A. (1991). Effects of synthetic cytokinins on levels of endogenous cytokinins and respiration patterns of Beta vulgaris cells suspension. Journal of Plant Growth Regulation, 10, 197-199. doi.org/10.1007/BF02279334.

Publicado

14/12/2020

Cómo citar

LAMEIRA, O. A. .; CORDEIRO, I. M. C. C. .; CAMPELO, M. F. Protocolo de obtención de plantas de Cedrela odorata L. mediante cultivo de tejidos. Research, Society and Development, [S. l.], v. 9, n. 12, p. e9491210771, 2020. DOI: 10.33448/rsd-v9i12.10771. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/10771. Acesso em: 7 jul. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas