Evaluación de las tasas de producción in vitro de embriones bovinos utilizando medio de cultivo suplementado con melatonina
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i6.15544Palabras clave:
Blastocistos; Bovino; Cultivo in vitro; Melatonina; Producción de embriones in vitro.Resumen
En este estudio, nuestro objetivo fue evaluar la tasa de producción de embriones bovinos mediante el uso de suplementos de melatonina 50 ng / mL en medio de cultivo in vitro. Para ello, se maduraron in vitro ovocitos de ovarios de matadero en medio TCM-199 con solución salina equilibrada de Earle + SFB, FSH y LH al 10% en una atmósfera de CO2 al 5%. Veinticuatro horas después de la MIV, los ovocitos se sometieron a fertilización in vitro en líquido tubárico humano en las mismas condiciones que antes, durante 18 h. El semen se fraccionó mediante centrifugación en gradiente de Percoll y la concentración de espermatozoides se ajustó a 1 x 106 / ml. Luego, los cigotos probables se dividieron en dos grupos: el grupo de control crecido en gotas de 90 μL de medio SOFaa + 0.6% BSA + 2.5% SFB, en una atmósfera de 5% CO2, 90% N2 y un grupo de melatonina (Mel), de manera similar cultivado en gotas de 90 μL de medio SOFaa + BSA al 0,6% + SFB al 2,5% + 50 ng / mL de melatonina. Las tasas de escisión se evaluaron el día 3 (D3). En D7, se evaluaron las tasas de formación de blastocistos. Se realizaron ocho rutinas (320 ovocitos por rutina). Los datos se analizaron con ANOVA, seguido de la prueba de rango de Tukey utilizando un modelo lineal general. El nivel de significación estadística se estableció en 5%. No hubo diferencias en las tasas de escisión o formación de blastocistos entre los grupos de control y melatonina (P> 0,05). Por lo tanto, en las condiciones utilizadas en este estudio, la suplementación con melatonina no produjo beneficios en el aumento de la tasa de producción de embriones bovinos in vitro.
Citas
Adona, P. R.; Pires, P. R. L.; Quetglas, M. D.; Schwarz, K. R. L.; & Leal, C. L. V. (2008). Nuclear maturation kinetics and in vitro embryo development of cattle oocytes prematured with butyrolactone. I. combined or not combined with roscovitine. Animal Reproduction Science 104: 389-397.
Asgari, Z.; Ghasemian, F.; Ramezani, M.; & Bahadori, M. H. (2012). The effect of melatonin on the developmental potential and implantation rate of mouse embryos. Cell Journal 14(3): 203-208.
Assis, P. M. (2014). Melatonina no meio de cultivo in vitro de embriões bovinos: dinâmica e ação antioxidante. Dissertação. Pós-Graduação em Reprodução Animal da Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia. Universidade de São Paulo. 2014.
Cebrian-Serrano, A.; Salvador, I.; Raga, E.; Dinnyes, A.; & Silvestre, A. (2013). Beneficial Effect of Melatonin on Blastocyst In Vitro Production from Heat-Stressed Bovine Oocytes. Reproduction in Domestic Animals 48:738-746.
Corrêa, G. A.; Rumpf, R.; Mundim, T. C. D.; Franco, M. M.; & Dode, M. A. N. (2008). Oxygen tension during in vitro culture of bovine embryos: effect in production and expression of genes related to oxidative stress. Animal Reproduction Science 104:132–142.
El-Raey, M.; Geshi, M.; Somfai, T.; Kaneda, M.; Hirako, M.; Abdel- Ghaffar, A. E.; Sosa, G. A.; El-Roos, M. E. A. A.; & Nagai, T. (2011). Evidence of melatonin synthesis in the cumulus oocyte complexes and its role in enhancing oocyte maturation in vitro in cattle. Molecular, Reproduction and Development 78(4):250–262.
Gonçalves, R. L. R. & Vianna, J. H. M. (2019). Situação atual da produção de embriões bovinos no Brasil e no mundo. Anais do XXIII Congresso Brasileiro de Reprodução Animal (CBRA-2019), Gramado, RS, 2019.
Guérin, P.; El, Mouatassim. S.; & Ménézo, Y. (2001). Oxidative stress and protection against reactive oxygen species in the preimplantation embryo and its surroundings. Human Reproduction Update 7:175-189.
Holm, P.; Booth, P. J.; Schimid, T. M. T.; Greve, T.; & Callesen, H. (1999). High bovine blastocyst development in a static in vitro production system using SOFaa medium supplemented with sodium citrate and myo-inositol with or without serum proteins. Theriogenology 52: 683-700.
Iwasaki, S.; Nakazawa, K.; Sakai, J.; Kometani, K.; Iwashita, M.; Yoshimura, Y.; & Maruyama, T. (2005). Melatonin as a local regulator of human placental function. Journal of Pineal Research 39:261–265.
Kang, J. T.; Koo, O. J.; Kwon, H. J.; Park, H. J.; Jang, G.; Kang, S. K.; & Lee, S. C. (2009). Effects of melatonin on in vitro maturation of porcine oocyte and expression of melatonin receptor RNA in cumulus and granulosa cells. Journal of Pineal Research 46: 22-28.
Lira, A. S.; Chaves, R. M.; Moraes Junior, F. J.; Costa Junior, S. H.; Amaral, B. K. L.; & Trovão, H. M. P. (2020). Use of melatonin in the in vitro production of bovine embryos. Revista Brasileira em Saúde e Produção Animal 21(1-9): e210322020.
Lonergan, P.; Fair, T.; Corcoran, D.; & Evans, A. C. O. (2006). Effect of culture environment on gene expression and developmental characteristics in IVF-derived embryos. Theriogenology 65:137-152.
Manjunatha, B. M.; Devaraj, M.; Gupta, P. S. P.; Ravindra, J. P.; & Nandi, S. (2009). Effect of taurine and melatonin in the culture medium on buffalo in vitro embryo development. Reproduction in Domestic Animal 44:12–16.
Mayo, J. C.; Aguado, A.; Cernuda-Cernuda, R.; Artime, A. A.; Cepas, V.; Quiros-González, I.; Hevia, D.; & Sáinz, R. M. (2018). Melatonin Uptake by Cells: An Answer to Its Relationship with Glucose? Molecules 23(8):1999.
Maziero, R. R. D.; Guaitolini, C. R. F.; Paschoal, D. M.; Crespilho, A. M.; Sestari, D. A. O.; Dode, M. A. N.; & Landim-Alvarenga, F. C. (2020). Effects of the addition of oocyte meiosis-inhibiting drugs on the expressionof maturation-promoting factor components and organization ofcytoplasmic organelles. Reproductive Biology 20:48-62.
Maziero, R. R. D.; Guaitolini, C. R. F.; Paschoal, D. M.; Kievitsbosch, T.; Guastali, M. D.; Moraes, C. N.; & Landim-Alvarenga, F. C. (2016). Effect of temporary meiotic attenuation of oocytes with butyrolactone-I and roscovitine in resistance to bovine embryos on vitrification. Reproduction in Domestic Animal 51: 204-2011.
Papis, K.; Poleszczuk, O.; Wenta-Muchalska, E.; & Mondlinski, J. A. (2007). Melatonin effect on bovine embryo development in vitro in relation to oxygen concentration. Journal of Pineal Research 43:321-326.
Parrish, J. J.; Krogenaes, A.; & Susko-Parrish, J. L. (1994). Effect of bovine sperm separation by either swim-up and percoll method on success of in vitro fertilization and early embryonic development. Theriogenology 44: 859-869.
Paula, F. A. P. (2017). Efeito da melatonina na maturação in vitro sobre a expressão gênica e a qualidade de oócitos bovinos sob choque térmico. Dissertação (Mestrado) apresentada à Universidade Federal de Lavras, 98p., 2017.
Pontes, J. H. F.; Nonato-Junior, I.; Sanches, B. V.; Ereno-Junior, J. C.; Uvo, S.; Barreiros, T. R. R.; Oliveira, J. A.; Hasler, J. F.; & Seneda, M. M. (2011). Comparison of embryo yield and pregnancy rate between in vivo and in vitro methods in the same Nelore (Bos indicus) donor cows. Theriogenology, 71(4):690–697.
Rizos, D.; Ward, F.; Duffy, P.; Boland, M. P.; & Lonergan, P. (2002). Consequences of bovine oocyte maturation, fertilization and early embryo development in vitro versus in vivo: implication for blastocyst yield and blastocyst quality. Molecular, Reproduction and Development 61:234-248.
Rocha-Frigoni, N. A. D. S.; Leão, B. C. D. S.; Nogueira, E.; Accorsi, M. F.; & Mingoti, G. Z. (2013). Effects of gaseous atmosphere and antioxidants on the development and cryotolerance of bovine embryos at different periods of in vitro culture. Zygote 41:1–10.
Rodriguez-Osorio, N.; Kim, I. J.; Wang, H.; Kaya, A.; & Memili, E. (2007). Melatonin increases cleavage rate of porcine preimplantation embryos in vitro. Journal of Pineal Research 43(3): 283–288.
Sagirkaya, H.; Misirlioglu, M.; Kaya, A.; First, N. L.; Parrish, J. J.; & Memili, E. (2007). Developmental potential of bovine oocytes cultured in different maturation and culture conditions. Animal Reproduction Science 101:225-240.
Sudano, M. J.; Paschoal, D. M.; Rascado, T. S.; Magalhães, L. C. O.; Crocomo, L. F.; Lima-Neto, J. F.; & Landim-Alvarenga, F. C. (2011). Lipid content and apoptosis of in vitro-produced bovine embryos. Theriogenology 5:1211-1220.
Takada, L.; Junior, A. M.; Mingoti, G. Z.; Balieiro, J. C.; Cipolla-Neto, J.; & Coelho, L. A. (2012). Effect of melatonin on DNA damage of bovine cumulus cells during in vitro maturation (IVM) and on in vitro embryo development. Research and Veterinary Science 92:124–127.
Takada, L.; Martins Junior, A.; Mingoti, G. Z.; Balieiro, J. C. J.; & Coelho, L. A. (2010). Melatonin in maturation media fails to improve oocyte maturation, embryo development rates and DNA damage of bovine embryos. Scientia Agricola 67(1): 393-398.
Tsantarioutou, M. P.; Altanasio, L.; De Rosa, A.; Boccia, L.; Pellerano, G.; & Gasparrini, B. (2007). The effect of melatonin on bovine in vitro embryo development. Italian Journal of Animal Science 6:488-489.
Viana, J. H. M. (2018). Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals: Is it a turning point? In 2017 more in vitro-produced than in vivo-derived embryos were transferred worldwide. Embryo Transfer Newsletters 36(4):8-25.
Zhao, X. M.; Min, J. T.; Du, W. H.; Hao, H. S.; Liu, Y.; Qin, T.; Wang, D.; & Zhu, H. B. (2015). Melatonin enhances the in vitro maturation and developmental potential of bovine oocytes denuded of the cumulus oophorus. Zygote 23(4): 1–12.
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