Efectos antioxidante y gastroprotector del extracto de acetato de etilo de Stemodia maritima L. en el modelo de úlcera gástrica inducida por etanol
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i15.22548Palabras clave:
Antiúlcera; Compuestos fenólicos; Citotoxicidad; Estrés oxidativo.Resumen
Stemodia maritima L., es un arbusto de la familia Plantaginaceae, con algunas actividades biológicas ya descritas, tales como: larvicidas, antimicrobianas y antiinflamatorias. Así que, el objetivo de este trabajo fue evaluar las actividades antioxidantes y gastroprotectoras del extracto de acetato de etilo de S. marítima. El perfil fitoquímico se investigó a través de la dosificación de compuestos fenólicos totales, flavonoides y análisis de CCD. La toxicidad del extracto se realizó a través de la viabilidad celular con L929 y toxicidad aguda utilizando la Guía 423 de la OCDE. La actividad antioxidante se analizó mediante los métodos de reducción del ion férrico (FRAP) y la actividad antioxidante total (AAT), y la actividad gastroprotectora por el modelo de úlcera gástrica inducida por etanol absoluto, con evaluación de niveles de NO, MDA, GSH y MPO de los tejidos estomacales. En el perfil fitoquímico fue posible identificar flavonoides, triterpenos, esteroides, mono y sesquiterpenos. El extracto no fue citotóxico contra el linaje L929, manteniendo la viabilidad celular por encima del 70% en las dosis probadas y en la toxicidad aguda no mostró cambios fisiológicos que indicaran toxicidad en comparación con el control. El extracto presentó una actividad antioxidante de 157,3 ± 9,74 mg equivalentes de Trolox/g de extracto en el método FRAP y 50,0 ± 1,1 % por AAT. El extracto de acetato de etilo de S. maritima, a las dosis probadas, redujo el índice de lesión ulcerosa en relación con el grupo control lesionado, aumentó los niveles de NO y GSH y fue capaz de disminuir las concentraciones de MDA y MPO, destacando su actividad gastroprotectora.
Citas
Abud, M. A., Molina, A., Wenedel, G., Juan Hikawczuk, V. E., Pelzer, L. E., & Maria, A. O. (2012). Gastroprotective effects of Plantago major and metabolites in rats. Latin American Journal of Pharmacy, 31(8), 1203-6.
Ali, S. S., Ahsan, H., Zia, M. K., Siddiqui, T., & Khan, F. H. (2020). Understanding oxidants and antioxidants: Classical team with new players. Journal of food biochemistry, 44(3), e13145. https://doi.org/10.1111/jfbc.13145
Antonisamy, P., Subash-Babu, P., Albert-Baskar, A., Alshatwi, A. A., Aravinthan, A., Ignacimuthu, S., Choi, K. C., Lee, S. C., & Kim, J. H. (2016). Experimental study on gastroprotective efficacy and mechanisms of luteolin-7-O-glucoside isolated from Ophiorrhiza mungos Linn. in different experimental models. Journal of functional foods, 25, 302-313. https://doi.org/10.1016/j.jff.2016.06.003
Ateufack, G., Mokam, E. C. D., Mbiantcha, M., Feudjio, R. B. D., David, N., & Kamanyi, A. (2015). Gastroprotective and ulcer healing effects of Piptadeniastrum africanum on experimentally induced gastric ulcers in rats. BMC complementary and alternative medicine, 15(1), 1-10. https://doi.org/10.1186/s12906-015-0713-5
Benzie, I. F. F., & Strain, J. J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1), 70-76. https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292
Beserra, A. M. S., Calegari, P. I., Souza, M. C., Santos, R. A. N., Lima, J. C., Silva, R. M., Balogun, S. O., & Martins, D. T. (2011). Gastroprotective and ulcer-healing mechanisms of ellagic acid in experimental rats. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(13), 6957-6965. https://doi.org/10.1021/jf2003267
Bradley, P. P., Priebat, D. A., Christensen, R. D., & Rothstein, G. (1982). Measurement of cutaneous inflammation: estimation of neutrophil content with an enzyme marker. Journal of Investigative Dermatology, 78(3), 206-209. https://doi.org/10.1111/1523-1747.ep12506462
Chen, B. L., Wang, Y. J., Guo, H., & Zeng, G. Y. (2016). Design, synthesis, and biological evaluation of crenatoside analogues as novel influenza neuraminidase inhibitors. European Journal of Medicinal Chemistry, 109, 199-205. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2015.12.031
Chinedu, O., & Ibrahim, G. K. (2017). International Journal of Current Research and Academic Review. Int. J. Curr. Res. Aca. Rev, 5(6), 113-118. https://doi.org/10.20546/ijcrar.2017.506.016
Choudhary, M. K., Bodakhe, S. H., & Gupta, S. K. (2013). Assessment of the antiulcer potential of Moringa oleifera root-bark extract in rats. Journal of acupuncture and meridian studies, 6(4), 214-220. https://doi.org/10.1016/j.jams.2013.07.003
Cook, D., & Guyatt, G. (2018). Prophylaxis against upper gastrointestinal bleeding in hospitalized patients. New England Journal of Medicine, 378(26), 2506-2516. https://doi.org/10.1056/NEJMra1605507
Czekaj, R., Majka, J., Magierowska, K., Sliwowski, Z., Magierowski, M., Pajdo, R., Ptak-Belowska, A., Surmiak, M., Kwiecien, S., & Brzozowski, T. (2018). Mechanisms of curcumin-induced gastroprotection against ethanol-induced gastric mucosal lesions. Journal of gastroenterology, 53(5), 618-630. https://doi.org/10.1007/s00535-017-1385-3
Draper, H. H., & Hadley, M. (1990). Malondialdehyde determination as index of lipid peroxidation. Methods Enzymol, 186, 31-421. https://doi.org/10.1016/0076-6879(90)86135-I
Dunkic, V., Kosalec, I., Joze Kosir, I., Potocnik, T., Cerenak, A., Zovko Koncic, M., Dubravka, V., Dragojevic Muller, I., Kopricanec, M., Bezic, N., Srecec, S., & Kremer, D. (2015). Antioxidant and antimicrobial properties of Veronica spicata L.(Plantaginaceae). Current drug targets, 16(14), 1660-1670.
Farrag, A. R. H., Abdallah, H. M. I., Khattab, A. R., Elshamy, A. I., Gendy, A. E. N. G. E., Mohamed, T. A., & Hegazy, M. E. F. (2019). Antiulcer activity of Cyperus alternifolius in relation to its UPLC-MS metabolite fingerprint: a mechanistic study. Phytomedicine, 62, 152970. https://doi.org/10.1016/j.phymed.2019.152970
Green, L. C., Tannembaun, S. R., & Goldman, P. (1981). Nitrate synthesis in the germfree and conventional rat. Science, 212(4490), 56-58. https://doi.org/10.1126/science.6451927
Gulcin, İ. (2020). Antioxidants and antioxidant methods: An updated overview. Archives of toxicology, 94(3), 651-715. https://doi.org/10.1007/s00204-020-02689-3
Hampshire, V. A., & Gilbert, S. H. (2019). Refinement, reduction, and replacement (3R) strategies in preclinical testing of medical devices. Toxicologic pathology, 47(3), 329-338. https://doi.org/10.1177/0192623318797289
Harput, U. S., Genc, Y., & Saracoglu, I. (2012). Cytotoxic and antioxidative activities of Plantago lagopus L. and characterization of its bioactive compounds. Food and chemical toxicology, 50(5), 1554-1559. https://doi.org/10.1016/j.fct.2012.01.019
Kavitt, R. T., Lipowska, A. M., Anyane-Yeboa, A., & Gralnek, I. M. (2019). Diagnosis and treatment of peptic ulcer disease. The American journal of medicine, 132(4), 447-456. https://doi.org/10.1016/j.amjmed.2018.12.009
Lanas, A., & Chan, K. L. (2017). Peptic ulcer disease. Lancet, 390(10094), 613-624. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(16)32404-7
Li, H. B., Wong, C. C., Cheng, K. W., & Chen, F. (2008). Antioxidant properties in vitro and total phenolic contents in methanol extracts from medicinal plants. LWT - Food Science and Technology, 41(3), 385-390. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2007.03.011
Li, W., Zhou, J., & Xu, Y. (2015) Study of the in vitro cytotoxicity testing of medical devices. Biomedical Reports, 3(5), 617–620. https://doi.org/10.3892/br.2015.481
Liu, Z., Liu, Y., Pu, Z., Wang, J., Zheng, Y., Li, Y., & Wei, Y. (2013). Regulation, evolution, and functionality of flavonoids in cereal crops. Biotechnology letters, 35(11), 1765-1780. https://doi.org/10.1007/s10529-013-1277-4
Moreira, H. J. C.; & BRAGANÇA, H. B. N. (2011). Manual de identificação de plantas infestantes: Hortifrúti. São Paulo: FMC Agricultural Products.
Morimoto, Y., Shimohara, K., Oshima, S., & Sukamoto, T. (1991). Effects of the new antiulcer agent KB-5492 on experimental gastric mucosal lesions and gastric mucosal defensive factors, as compared to those of teprenone and cimetidine. The Japanese Journal of Pharmacology, 57(4), 495-505. https://doi.org/10.1254/jjp.57.495
Mosmann, T. (1983). Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. Journal Immunological Methods, 65(1-2), 55-63. https://doi.org/10.1016/0022-1759(83)90303-4
Nicolau, L. A., Carvalho, N. S., Pacífico, D. M., Lucetti, L. T., Aragão, K. S., Véras, L. M., Souza, M. H., Leite, J. R., & Medeiros, J. V. R. (2017). Epiisopiloturine hydrochloride, an imidazole alkaloid isolated from Pilocarpus microphyllus leaves, protects against naproxen-induced gastrointestinal damage in rats. Biomedicine & Pharmacotherapy, 87, 188-195. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2016.12.101
OECD. Organization for Economic Cooperation and Development (2001). Acute oral toxicity - acute toxic class method. Guidelines for the testing of chemicals, OECD 423, Section 4, OECD Publishing, Paris.
Pekal, A., & Pyrzynska, K. (2014). Evaluation of aluminium complexation reaction for flavonoid content assay. Food Analytical Methods, 7(9), 1776-1782. https://doi.org/10.1007/s12161-014-9814-x
Prieto, P., Pineda, M., & Aguilar, M. (1999). Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin E. Analytical Biochemistry, 269(2): 337-341. https://doi.org/10.1006/abio.1999.4019
Rodrigues, F. E., Lima, J. Q., Oliveira, M. D. C. F. D., Vasconcelos, J. N., Santiago, G. M., Mafezoli, J., Braz-Filho, R., & Arriaga, A. (2010). Diterpene and other constituents from Stemodia maritima (Scrophulariaceae). Journal of the Brazilian Chemical Society, 21(8), 1581-1586.
Russell, F. A., Mulabagal, V., Thompson, D. R., Singh-Wilmot, M. A., Reynolds, W. F., Nair, M. G., Langer, V., & Reese, P. B. (2011). Stemodin-derived analogues with lipid peroxidation, cyclooxygenase enzymes and human tumour cell proliferation inhibitory activities. Phytochemistry, 72(18), 2361-2368. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2011.08.024
Safavi, M., Shams-Ardakani, M., & Foroumadi, A. (2015). Medicinal plants in the treatment of Helicobacter pylori infections. Pharmaceutical biology, 53(7), 939-960. https://doi.org/10.3109/13880209.2014.952837
Sánchez-Mendoza, M. E., López-Lorenzo, Y., Cruz-Antonio, L., Matus-Meza, A. S., Sánchez-Mendoza, Y., & Arrieta, J. (2019). Gastroprotection of calein d against ethanol-induced gastric lesions in mice: role of prostaglandins, nitric oxide and sulfhydryls. Molecules, 24(3), 622. https://doi.org/10.3390/molecules24030622
Sangeetha, M. K., Vallabi, D. E., Sali, V. K., Thanka, J., & Vasanthi, H. R. (2013). Sub-acute toxicity profile of a modified resveratrol supplement. Food and chemical toxicology, 59, 492-500. https://doi.org/10.1016/j.fct.2013.06.037
Sedlak, J., & Lindsay, R. H. (1968). Estimation of total, protein-bound, and nonprotein sulfhydryl groups in tissue with Ellman ́s reagent. Analytical Biochemistry, 25, 192-205. https://doi.org/10.1016/0003-2697(68)90092-4
Silva, F. R., Rodrigues, F. E., Gomes, A. R., Arriaga, A., Mafezoli, J., Lemos, T. L., Almeida, M. C., Santiago, G. P., Braz-Filho, R., Costa, J. G., Rodrigues, F. F. G., & Coutinho, H. D. (2014). Phytochemical study, antioxidant and antibacterial activities of Stemodia maritima. Química Nova, 37(9), 1474-1478. https://doi.org/10.5935/0100-4042.20140255
Simões, S., Lopes, R., Campos, M. C. D., Marruz, M. J., da Cruz, M. E. M., & Corvo, L. (2019). Animal models of acute gastric mucosal injury: Macroscopic and microscopic evaluation. Animal models and experimental medicine, 2(2), 121-126. https://doi.org/10.1002/ame2.12060
Song, S. H., Kim, J. E., Sung, J. E., Lee, H. A., Yun, W. B., Lee, Y. H., Song, H., & Hwang, D. (2019). Anti-ulcer effect of Gallarhois extract with anti-oxidant activity in an ICR model of ethanol/hydrochloride acid-induced gastric injury. Journal of traditional and complementary medicine, 9(4), 372-382. https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2017.07.001
Sousa, R. S., Silva, J. A. G., Borba, E. F. O., Sousa, M. G. O., Silva, S. J. L., & da Silva, T. G. (2021). Análise fitoquímica e efeito gastroprotetor do extrato hexânico de Stemodia maritima L. Journal of Biology & Pharmacy and Agricultural Management, 17(2).
Teixeira, A. H., Freire, J. M., de Sousa, L. H., Parente, A. T., de Sousa, N. A., Arriaga, A., Silva, F. R., Melo, I. M., Silva, I. I., Pereira, K. M., Goes, P., Costa, J. J., Cristino Filho, G., Pinto, V. P., Chaves, H. V., & Bezerra, M. M. (2017). Stemodia maritima L. extract decreases inflammation, oxidative stress, and alveolar bone loss in an experimental periodontitis rat model. Frontiers in physiology, 8, 988. https://doi.org/10.3389/fphys.2017.00988
Vaghasiya, Y. K., Shukla, V. J., & Chanda, S. V. (2011). Acute oral toxicity study of Pluchea arguta boiss extract in mice. J Pharmacol Toxicol, 6(2), 113-23. https://doi.org/10.3923/jpt.2011.113.123
Zakaria, Z. A., Balan, T., Azemi, A. K., Omar, M. H., Mohtarrudin, N., Ahmad, Z., & Salleh, M. Z. (2016). Mechanism (s) of action underlying the gastroprotective effect of ethyl acetate fraction obtained from the crude methanolic leaves extract of Muntingia calabura. BMC complementary and alternative medicine, 16(1), 1-17. https://doi.org/10.1186/s12906-016-1041-0
Zhang, C., Gao, F., Gan, S., He, Y., Chen, Z., Liu, X., Fu, C., Qu, Y., & Zhang, J. (2019). Chemical characterization and gastroprotective effect of an isolated polysaccharide fraction from Bletilla striata against ethanol-induced acute gastric ulcer. Food and chemical toxicology, 131, 110539. https://doi.org/10.1016/j.fct.2019.05.047
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