Multiplicación in vitro de bambú leñoso en la Amazonía Sudoccidental, Acre, Brasil
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i9.31099Palabras clave:
Guadua latifolia; Micropropagación; 6-bencilaminopurina; Citoquinina.Resumen
Los bambús del género Guadua de la Amazonía Sudoccidental son difíciles de propagar debido a sus características recalcitrantes. El objetivo de este estudio fue evaluar la acción de la 6-bencilaminopurina (BAP) sobre la multiplicación de bambú leñoso G. latifolia en el laboratorio con vistas a la producción de plántulas clonales. La multiplicación in vitro se realizó con 6-bencilaminopurina a concentraciones de 0, 2, 4, 6 y 8 mg L-1 en probetas con medio líquido durante 38 días de incubación. Las variables analizadas fueron número y altura de brotes, tasa de multiplicación, presencia de callo y raíz en dos subcultivos consecutivos. El uso de 6-bencilaminopurina fue eficiente durante la multiplicación in vitro para aumentar el número de brotes durante el primer y segundo subcultivo. La altura de los brotes no fue influenciada por la adición de citoquinina en el cultivo y la tasa de multiplicación fue de 4.44 brotes. Por lo tanto, se recomienda utilizar 6 mg L-1 de BAP durante la multiplicación in vitro y también para lograr una alta tasa de multiplicación.
Citas
Araújo, C. H. P.; Carneiro, L. L.; Araújo, C. L. P. & Sibov, S. T. (2015). Estabelecimento in vitro de duas espécies de bambu: Dendrocalamus asper (Schultes f.) Backer ex Heyne e Bambusa oldhamii Munro. Enciclopédia Biosfera, 11(22), 1172-1182. http://dx.doi.org/10.18677/Enciclopedia_Biosfera_2015_151.
Okbarbosa, A. C. & Diniz H. N. (2010). Controle de processo erosivo provocado por rompimento de adutora na Serra da Mantiqueira, SP, Brasil, Ciência Florestal, 20 (4), 691-702. https://doi.org/10.5902/198050982428.
Carvalho, A. L. de; Nelson, B. W.; Bianchini, M. C.; Plagnol, D.; Kuplich, T. M. & Daly, D. C. (2013). Bamboo-dominated forests of the Southwest Amazon: detection, spatial extent, life cycle length and flowering waves. Plos One, 8(1), 1-13. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0054852.
Castaño Nieto, F. & Orjuela, R. D. M. (2004). Guadua para todos: cultivo y aprovechamiento. Panamericana Formas e Impresos.
Drumond, P. M. & Wiedman, G. (2017). Bambus do Brasil: da biologia à tecnologia. ICH.
Gantait, S.; Pramanika, B. R. & Banerjeea, M. (2018). Optimization of planting materials for large scale plantation of Bambusa balcooa Roxb.: influence of propagation methods. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 17(1), 79-87. https://doi.org/10.1016/j.jssas.2015.11.008.
Gradaille, M. D.; Rodríguez, D. P.; Más, Y. L. & Torrijo, F. S. (2010). Propagación in vitro de Bambú Chino (Dracaena sanderiana L.). Ciencia y Tecnología, 3(1), 7-13. https://doi.org/10.18779/cyt.v3i1.40.
Goyal, A. K.; Pradhan, S.; Basistha, B. C. & Sen, A. (2015). Micropropagation and assessment of genetic fidelity of Dendrocalamus strictus (Roxb.) nees using RAPD and ISSR markers. 3Biotech, 5(4), 473-482. https://doi.org/10.1007/s13205-014-0244-7.
Gutiérrez, L. G.; Franco, R. L. & Pinzón, T. M. (2016). Micropropagation of Guadua angustifolia Kunth (Poaceae) using a temporary immersion system RITA. African Journal of Biotechnology, 15(28), 1503-1510. https://doi.org/10.5897/AJB2016.15390.
Jiménez, V. M.; Castillo, J.; Tavares, E.; Guevara, E. & Montiel, M. (2006). In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation. Plant Cell Tissue Organ Culture, 86(3), 389-395. https://doi.org/10.1007/s11240-006-9120-4.
Kalaiarasi, K.; Palanivel, S. & Subramaniam, S. (2014). Development of an efficient protocol for plant regeneration from nodal explants of recalcitrant bamboo (Bambusa arundinacea Retz. Willd) and assessment of genetic fidelity by DNA markers. Agroforest Systems, 88(3), 527-537. https://doi.org/10.1007/s10457-014-9716-3.
Leão, J. R. A.; Raposo, A.; Silva, A. C. L. da & Sampaio, P. de T. B. (2020). Control of contaminants in the in vitro establishment of Guadua latifolia. Pesquisa Agropecuária Tropical, Goiânia, 50(e63541), 1-7. https://doi.org/10.1590/1983-40632020v5063541.
Mehta, R.; Sood, A. & Sharma, R. K. (2011). Induction of somatic embryogenesis and analysis of genetic fidelity of in vitro-derived plantlets of Bambusa nutans Wall. Using AFLP markers. European Journal of Forest Research, 130(5), 729-736. https://doi.org/10.1007/s10342-010-0462-4.
Mendoza, M. R.; Tamayo, A. C. & Pacheco, A. (2010). Establecimiento de un protocolo para la multiplicación in vitro de bambú (Guadua angustifolia): fase 1. Tierra Tropical. Costa Rica, 6(2), 191-199.
Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.
Muthukumaran, P.; Saraswathy, N.; Abarna, S.; Kanthimathi, R.; Monisha, V.; Devi, N. N. & Nivetha, M. R. (2018). Protocol for induction of multiple shoot through nodal explants culture of Bambusa bambos for biomass production. International Journal of Life Sciences for Scientific Research, 4(2), 1634-1638. https://doi.org/10.21276/ijlssr.2018.4.2.2.
Nadha, H. K.; Salwan, R. & Kasana, R. C. (2012). Identification and elimination of bacterial contamination during in vitro propagation of Guadua angustifolia Kunth. Pharmacognosy Magazine, 8(30), 93-97. https://doi.org/10.4103/0973-1296.96547.
Nogueira, J. S.; Gomes, H. T. & Scherwinski-Pereira, J. E. (2019). Micropropagação, estimativa da produção de mudas e análise da fidelidade genética baseada em marcadores ISSR de Guadua magna e G. angustifolia. Pesquisa Agropecuária Tropical, 49(e53743), 1-9. https://doi.org/10.1590/1983-40632019v4953743.
Ornellas, T. S.; Marchetti, C. K.; Oliveira, G. H. de; Fritsche, Y. & Guerra, M. P. (2019) Micropropagação de Guadua chacoensis (Rojas) Londoño & P. M. Peterson. Pesquisa Agropecuária Tropical, Goiânia, 49(e55450), 1-8. https://doi.org/10.1590/1983-40632019v4955450.
Osse, V. C. & Meirelles, C. R. M. (2011). O potencial do bambu na minimização dos problemas climáticos nos espaços urbanos. Revista LABVERDE, 1(3), 36-53. https://doi.org/10.11606/issn.2179-2275.v0i3p36-53.
Ray, S. S. & Ali, M. D. N. (2016). Factors influencing micropropagation of bamboo species using nodal explants: a review. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 7(5), 2878-2889.
Pereira, M. A. R. & Beraldo, A. L. (2010). Bambu de corpo e alma. Bauru, SP: Canal 6 Editora. 240 p.
Raju, R. I. & Roy, S. K. (2016). Mass propagation of Bambusa bambos (L.) Voss through in vitro culture. Jahangirnagar University Journal of Biological Sciences, 5(2), 15-26. https://doi.org/10.3329/jujbs.v5i2.32514.
Ribeiro, A. dos S.; Brondani, G. E.; Tormen, G. C. R. & Figueiredo, A. J. R. de. (2016). Cultivo in vitro de bambu em diferentes sistemas de propagação. Nativa, 4(1), 15-18. https://doi.org/10.14583/2318-7670.v04n01a04.
Richa, S. M. L. & Nerru, B. (2006). Endogenous levels of plant growth substances in seeds of five bamboo species in relation to seed viability. Indian Journal of Plant Physiology, 11(4), 358-363.
Saini, H.; Arya, I. D.; Arya, S. & Sharma, R. (2016). In vitro micropropagation of Himalayan weeping bamboo, Drepanostachyum falcatum. American Journal of Plant Sciences, 7(9), 1317-1324. https://doi.org/10.4236/ajps.2016.79126.
Singh, S. R.; Dalal, S.; Singh, R.; Dhawan, A. K. & Kalia, R. K. (2013). Evaluation of genetic fidelity of in vitro raised plants of Dendrocalamus asper (Schult. & Schult. F.) Backer ex K. Heyne using DNA – based markers. Acta Physiologiae Plantarum, 35(2), 419-430. https://doi.org/10.1007/s11738-012-1084-x.
Silva, F. A. S. & Azevedo, C. A. V. (2016). The Assistat software version 7.7 and its use in the analysis of experimental data. African Journal of Agricultural Research, 11(39), 3733-3740. https://doi.org/10.5897/AJAR2016.11522.
Silva, A. C. L. da; Manfio, C. E.; Leão, J. R. A.; Carvalho, J. C. de; Gonçalves, J. F. de C. & Raposo, A. (2021). Induction of calogenesis in leaf segment of rubber (Hevea spp.) in the South-Western Amazon. Research, Society and Development, 10(9), 1-10. https://doi.org/10.33448/rsd-v10i9.17639.
Waikhom, S. D. & Louis, B. (2014). An effective protocol for micropropagation of edible bamboo species (Bambusa tulda and Melocanna baccifera) through nodal culture. The Scientific World Journal, 1(1), 1-8. https://doi.org/10.1155/2014/345794.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2022 João Ricardo Avelino Leão; Ana Claudia Lopes da Silva; Paulo de Tarso Barbosa Sampaio; Andréa Raposo
![Creative Commons License](http://i.creativecommons.org/l/by/4.0/88x31.png)
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.