Registro de saprolegniose en peces cultivados en el mundo: una compilación de datos
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v9i11.9556Palabras clave:
Patología; Peces; Piscicultura; Saprolegnia sp.; Saprolegniosis.Resumen
La saprolegniosis es una enfermedad micológica que causa importantes pérdidas económicas en la piscicultura y puede considerarse un obstáculo para el desarrollo de la piscicultura mundial. Así, nuestro objetivo fue identificar qué especies de peces cultivadas en el mundo se han asociado con hongos del género Saprolegnia. La investigación trata de un relevamiento bibliográfico que contempla artículos publicados entre 2007 y julio de 2017. Encontramos relación de la saprolegniosis con especies de peces: Oncorhynchus mykiss, Salmo trutta, Oncorhynchus tshawytscha, Labeo rohita, Pterophyllum scalare, Ctenopharyngodon idella, Sander luciogrperusca, fulvidraco, Oreochromis niloticus, Odonthestes bonariensis, Odonthestes humensi y Catla catla. Os oomicetos encontrados foram: Saprolegnia ferax, Saprolegnia parasitica, Saprolegnia australis, Saprolegnia diclina, Saprolegnia delica, Saprolegnia glomerata, Saprolegnia terrestres, Saprolegnia uliginosa, Saprolegnia unprolegnia, Saprolegnia hypogyna long y Saulispora. Las especies S. ferax y S. parasitica fueron los hongos que presentaron mayor registro de infección, principalmente en salmónidos. O. mykiss, S. salar y S. trucha fueron los peces con más estudios relacionados con la saprolegniosis, por ser especies de gran importancia comercial en el escenario piscícola mundial. A pesar de la gran importancia de la especie O. niloticus en la piscicultura mundial, solo observamos la especie en un solo artículo de esta investigación, lo que puede estar relacionado con la alta resistencia de la especie a las enfermedades y con la falta de financiamiento para la investigación para identificar este tipo de infección. No fue posible comparar el hospedador - agente etiológico entre los peces, ya que muchos de los estudios considerados en la investigación no tenían el propósito de identificar el patógeno.
Citas
Peixe, B. R. (2019). Anuário Peixe BR da piscicultura 2018. Associação Brasileira de Piscicultura, São Paulo.
Ben Khemis, I., Besbes Aridh, N., Hamza, N., M’Hetli, M., & Sadok, S. (2016). Antifungal efficacy of the cactaceae Opuntia stricta (Haworth) prickly pear ethanolic extract in controlling pikeperch Sander lucioperca (Linnaeus) egg saprolegniasis. J. Fish Dis., 39, 377-383. https://doi.org/10.1111/jfd.12356
Burr, A. W., & Beakes, G. W. (1994). Characterization of zoospore and cyst surface structure in saprophytic and fish pathogenic Saprolegnia species (oomycete fungal protists). In The Protistan Cell Surface (pp. 142-163). Springer, Vienna. https://doi.org/10.1007/BF01666393
Cao, H., Ou, R., Li, G., Yang, X., Zheng, W., & Lu, L. (2014). S aprolegnia australis RF Elliott 1968 infection in Prussian carp C arassius gibelio (Bloch, 1782) eggs and its control with herb extracts. Journal of Applied Ichthyology, 30 (1), 145-150.https://doi.org/10.1111/jai.12316
Cao, H., Zheng, W., Xu, J., Ou, R., He, S., & Yang, X. (2012). Identification of an isolate of Saprolegnia ferax as the causal agent of saprolegniosis of Yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco) eggs. Veterinary research communications, 36 (4), 239-244.. https://doi.org/10.1007/s11259-012-9536-8
Corrêa, B. F., Stohl, F. E., Robaldo, R. B., & Pereira, D. I. B. (2013). Efeito in vitro de químicos no crescimento micelial de Saprolegnia spp. Ciência Rural, 43(6), 1021-1024. https://doi.org/10.1590/S0103-84782013005000074
Silva, R. D. D., Rocha, L. O., Fortes, B. D. A., Vieira, D., & Fioravanti, M. C. S. (2012). Parâmetros hematológicos e bioquímicos da tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus L.) sob estresse por exposição ao ar. Pesquisa Veterinária Brasileira, 32, 99-107. https://doi.org/10.1590/S0100-736X2012001300017
de Bruijn, I., Belmonte, R., Anderson, V. L., Saraiva, M., Wang, T., van West, P., & Secombes, C. J. (2012). Immune gene expression in trout cell lines infected with the fish pathogenic oomycete Saprolegnia parasitica. Developmental & Comparative Immunology, 38 (1), 44-54. https://doi.org/10.1016/j.dci.2012.03.018
Eissa, A. E., Abdelsalam, M., Tharwat, N., & Zaki, M. (2013). Detection of Saprolegnia parasitica in eggs of angelfish Pterophyllum scalare (Cuvier–Valenciennes) with a history of decreased hatchability. International Journal of Veterinary Science and Medicine, 1 (1), 7-14. https://doi.org/10.1016/j.ijvsm.2013.04.001
FAO, (2018). The State of World Fisheries and Aquaculture.
Fregeneda-Grandes, J. M., Rodríguez-Cadenas, F., Carbajal-González, M. T., & Aller-Gancedo, J. M. (2007). Detection of ‘long-haired’Saprolegnia (S. parasitica) isolates using monoclonal antibodies. Mycological research, 111 (6), 726-733. https://doi.org/10.1016/j.mycres.2007.04.005
Fuangsawat, W., Abking, N., & Lawhavinit, O. A. (2011). Sensitivity comparison of pathogenic aquatic fungal hyphae to sodium chloride, hydrogen peroxide, acetic acid and povidone iodine. Agriculture and Natural Resources, 45 (1), 84-89. https://li01.tci-thaijo.org/index.php/anres/article/view/245136/167580
Heikkinen, J., Tiirola, M., Mustonen, S. M., Eskelinen, P., Navia‐Paldanius, D., & von Wright, A. (2016). Suppression of S aprolegnia infections in rainbow trout (O ncorhynchus mykiss) eggs using protective bacteria and ultraviolet irradiation of the hatchery water. Aquaculture Research, 47 (3), 925-939. https://doi.org/10.1111/are.12551
Hussein, M. M., & Hatai, K. (2002). Pathogenicity of Saprolegnia species associated with outbreaks of salmonid saprolegniosis in Japan. Fisheries science, 68 (5), 1067-1072. https://doi.org/10.1046/j.1444-2906.2002.00533.x
IBGE, 2014. Produção da pecuária municipal. Inst. Bras. Geogr. e Estatística. https://doi.org/ISSN 0101-4234
Johari, S. A., Kalbassi, M. R., Soltani, M., & Yu, I. J. (2016). Application of nanosilver-coated zeolite as water filter media for fungal disinfection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs. Aquaculture international, 24 (1), 23-38. https://doi.org/10.1007/s10499-015-9906-7
Kauark, F. D. S., Manhães, F. C., & Medeiros, C. H. (2010). Metodologia da pesquisa: um guia prático.
Khodabandeh, S., & Abtahi, B. (2006). Effects of sodium chloride, formalin and iodine on the hatching success of common carp, Cyprinus carpio, eggs. Journal of Applied Ichthyology, 22 (1), 54-56. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00662.x
Hatai, K., & Hoshiai, G. I. (1992). Saprolengniasis in Cultured Coho Salmon (Oncorhynchus kisutch). Fish Pathology, 27 (4), 233-234. https://www.jstage.jst.go.jp/article/jsfp1966/27/4/27_4_233/_pdf
Korzelecka‐Orkisz, A., Formicki, K., Szulc, J., Tański, A., Mazurkiewicz‐Zapałowicz, K., Twarużek, M., ... & Kurzydłowski, K. J. (2016). Modulating effect of a magnetic field on Saprolegnia parasitica, Coker, 1923 infecting trout (Salmo trutta, L.) eggs. Journal of Applied Ichthyology, 32 (5), 913-922. https://doi.org/10.1111/jai.13099
Martins, M. L., Onaka, E. M., Moraes, F. R., Bozzo, F. R., Paiva, A. M. F. C., & Gonçalves, A. (2002). Recent studies on parasitic infections of freshwater cultivated fish in the state of São Paulo, Brazil. Acta Scientiarum, 24 (4), 981-985.http://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/download?doi=10.1.1.869.550&rep=rep1&type=pdf
Mastan, S. A. (2015). Fungal infection in freshwater fishes of Andhra Pradesh, India. African Journal of Biotechnology, 14 (6), 530-534. https://doi.org/10.5897/AJB12.558
Meyer, F. P. (1991). Aquaculture disease and health management. Journal of animal science, 69 (10), 4201-4208.https://doi.org/10.2527/1991.69104201x
Minor, K. L., Anderson, V. L., Davis, K. S., Van Den Berg, A. H., Christie, J. S., Löbach, L., ... & Van West, P. (2014). A putative serine protease, SpSsp1, from Saprolegnia parasitica is recognised by sera of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fungal biology, 118 (7), 630-639. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2014.04.008
Pacheco-Marino, S. G., & Salibian, A. (2010). Acute toxicity of three antifungal chemicals on silverside Odontesthes bonariensis (Valenciennes 1835) eggs. International Journal of Environment and Health, 4 (4), 333-341. https://doi.org/10.1504/IJENVH.2010.037498
Paiva, M.J.T.R. de, (1997). Fungos parasitos de peixes. Panor. da Aquicultura, 41 (1) https://panoramadaaquicultura.com.br/fungos-parasitos-de-peixes/.
Pavanelli, G. C., Eiras, J. D. C., & Takemoto, R. M. (2002). Doenças de peixes: profilaxia, diagnóstico e tratamento. In Doenças de peixes: profilaxia, diagnóstico e tratamento (pp. 305-305).
Pereira-Torres, D., Gonçalves, A. T., Ulloa, V., Martínez, R., Carrasco, H., Olea, A. F., ... & Astuya, A. (2016). In vitro modulation of Drimys winteri bark extract and the active compound polygodial on Salmo salar immune genes after exposure to Saprolegnia parasitica. Fish & shellfish immunology, 59, 103-108. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.10.035
Phillips, A. J., Anderson, V. L., Robertson, E. J., Secombes, C. J., & Van West, P. (2008). New insights into animal pathogenic oomycetes. Trends in microbiology, 16 (1), 13-19. https://doi.org/10.1016/j.tim.2007.10.013
Pinheiro, C. A. M., Pinheiro, R. S., dos Santos, W. H. L., de Souza Serra, I. M. R., & Santos, D. M. S. (2015). Qualidade da água e incidência de fungos em peixes oriundos de pisciculturas do município de São Luís–Maranhão. Pesquisa em Foco, 20 (1). https://doi.org/10.18817/pef.v20i1.918
Pottinger, T. A., & Day, J. G. (1999). A Saprolegnia parasitica challenge system for rainbow trout: assessment of Pyceze as an anti-fungal agent for both fish and ova. Diseases of aquatic organisms, 36 (2), 129-141. https://doi.org/10.3354/dao036129
Rasowo, J., Okoth, O. E., & Ngugi, C. C. (2007). Effects of formaldehyde, sodium chloride, potassium permanganate and hydrogen peroxide on hatch rate of African catfish Clarias gariepinus eggs. Aquaculture, 269 (1-4), 271-277. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.04.087
Rezinciuc, S., Sandoval-Sierra, J. V., & Diéguez-Uribeondo, J. (2014). Molecular identification of a bronopol tolerant strain of Saprolegnia australis causing egg and fry mortality in farmed brown trout, Salmo trutta. Fungal biology, 118 (7), 591-600. https://doi.org/10.1016/j.funbio.2013.11.011
Roberge, C., Páez, D. J., Rossignol, O., Guderley, H., Dodson, J., & Bernatchez, L. (2007). Genome-wide survey of the gene expression response to saprolegniasis in Atlantic salmon. Molecular immunology, 44 (6), 1374-1383. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2006.05.005
Saha, H., Pal, A. K., Sahu, N. P., & Saha, R. K. (2016). Feeding pyridoxine prevents Saprolegnia parasitica infection in fish Labeo rohita. Fish & shellfish immunology, 59, 382-388. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2016.09.045
Sandoval-Sierra, J. V., Latif-Eugenin, F., Martín, M. P., Zaror, L., & Diéguez-Uribeondo, J. (2014). Saprolegnia species affecting the salmonid aquaculture in Chile and their associations with fish developmental stage. Aquaculture, 434, 462-469. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2014.09.005
Serviço Brasileiro de Apoio às Micro e Pequenas Empresas. (2015). Aquicultura no Brasil: série de estudos mercadológicos.
Songe, M. M., Willems, A., Sarowar, M. N., Rajan, K., Evensen, Ø., Drynan, K., ... & Van West, P. (2016). A thicker chorion gives ova of Atlantic salmon (Salmo salar L.) the upper hand against Saprolegnia infections. Journal of Fish Diseases, 39 (7), 879-888. https://doi.org/10.1111/jfd.12421
Soon, J. M., & Baines, R. N. (2012). Aquaculture farm food safety and diseases risk assessment (AquaFRAM): development of a spreadsheet tool for salmon farms. Aquacultural Engineering, 49, 35-45. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2012.02.002
Stammati, A., Nebbia, C., De Angelis, I., Albo, A. G., Carletti, M., Rebecchi, C., ... & Dacasto, M. (2005). Effects of malachite green (MG) and its major metabolite, leucomalachite green (LMG), in two human cell lines. Toxicology in vitro, 19 (7), 853-858. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2005.06.021
Stueland, S., Hatai, K., & Skaar, I. (2005). Morphological and physiological characteristics of Saprolegnia spp. strains pathogenic to Atlantic salmon, Salmo salar L. Journal of Fish Diseases, 28 (8), 445-453. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2005.00635.x
Tampieri, M.P., Galuppi, R., Carelle, M.S., Macchioni, F., Cioni, P.L., & Morelli, I. (2003). Effect of selected essential oils and pure compounds on Saprolegnia parasitica. Pharm. Biol., 41 (8) 584-591. https://doi.org/10.1080/13880200390501839
Tampieri, M. P., Galuppi, R., Carelle, M. S., Macchioni, F. A. B. I. O., Cioni, P. L., & Morelli, I. V. A. N. O. (2003). Effect of selected essential oils and pure compounds on Saprolegnia parasitica. Pharmaceutical biology, 41 (8), 584-591. https://doi.org/10.3354/dao02863
Valenzuela, A., Campos, V., Yañez, F., Alveal, K., Gutiérrez, P., Rivas, M., ... & Oyarzun, C. (2012). Application of artificial photoperiod in fish: a factor that increases susceptibility to infectious diseases?. Fish physiology and biochemistry, 38 (4), 943-950.https://doi.org/10.1007/s10695-011-9580-2
Van Den Berg, A. H., McLaggan, D., Diéguez-Uribeondo, J., & Van West, P. (2013). The impact of the water moulds Saprolegnia diclina and Saprolegnia parasitica on natural ecosystems and the aquaculture industry. Fungal Biology Reviews, 27 (2), 33-42. https://doi.org/10.1016/j.fbr.2013.05.001
Van West, P. (2006). Saprolegnia parasitica, an oomycete pathogen with a fishy appetite: new challenges for an old problem. Mycologist, 20 (3), 99-104. https://doi.org/10.1016/j.mycol.2006.06.004
Vega-Ramírez, M. T., Moreno-Lafont, M. C., Valenzuela, R., Cervantes-Olivares, R., Aller-Gancedo, J. M., Fregeneda-Grandes, J. M., ... & López-Santiago, R. (2013). New records of Saprolegniaceae isolated from rainbow trout, from their eggs, and water in a fish farm from the State of México. Revista Mexicana de Biodiversidad, 84 (2), 637-649. https://doi.org/10.7550/rmb.28627
Yao, J. Y., Lin, L. Y., Yuan, X. M., Ying, W. L., Xu, Y., Pan, X. Y., ... & Ge, P. H. (2017). Antifungal Activity of Rhein and Aloe‐Emodin from Rheum palmatum on Fish Pathogenic Saprolegnia sp. Journal of the World Aquaculture Society, 48 (1), 137-144. https://doi.org/10.1111/jwas.12325
Zahran, E., & Risha, E. (2013). Protective role of adjuvant and potassium permanganate on oxidative stress response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged with Saprolegnia ferax. SpringerPlus, 2 (1), 94. https://doi.org/10.1186/2193-1801-2-94 [doi]n223 [pii]
Zaror, L., Collado, L., Bohle, H., Landskron, E., Montaña, J., & Avendaño, F. (2004). Saprolegnia parasitica en salmones y truchas del sur de Chile. Archivos de medicina veterinaria, 36 (1), 71-78. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2004000100008
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2020 Ingrid Tayane Vieira da Silva do Nascimento; Josielma dos Santos Silva; Thiago Anchieta de Melo; Débora Martins Silva Santos; Ilka Márcia Ribeiro de Souza Serra
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.