Rizogênese in vitro de Ananas comosus var. erectifolius sob influência de auxinas sintéticas
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i5.28055Palavras-chave:
Bromeliaceae; Fibras naturais; Enraizamento in vitro; Ácido naftaleno acético; Ácido indolbutírico.Resumo
Ananas comosus var. erectifolius é uma bromélia nativa do Complexo Amazônico que tem despertado grande interesse das indústrias devido a maciez, resistência e baixa densidade das fibras extraídas de suas folhas. A frequente demanda por protocolos eficazes para o estabelecimento e regeneração in vitro de espécies de interesse comercial e ambiental, estimulam estudos de organogênese induzida por reguladores de crescimento. A rizogênese ou enraizamento in vitro consiste na última etapa do processo de regeneração e, muitas vezes, é considerada o maior desafio a ser superado. A rizogênese de Ananas comosus var. erectifolius foi avaliada sob influência dos reguladores de crescimento ácido naftaleno acético (ANA) e ácido indolbutírico (AIB). Sete experimentos foram realizados utilizando diferentes concentrações de reguladores de crescimento adicionados em meio MS sólido, sob condições ambientais controladas. Os resultados obtidos irão otimizar os protocolos laboratoriais de indução, multiplicação, alongamento e produção de biomassa radicular para A. comosus var. erectifolius. O enraizamento in vitro foi viável e os melhores resultados foram observados com 1,0 mg L-1 ANA + 1,0 mg L-1 AIB.
Referências
Adeoye, B. A., Lawyer, E. F., Hassan, K. O., Ilesanmi, A. O., Richard-Olebe, T. C., Oyedeji, T. T., Aderemi, T. A., Ajongbolo, F. B., & Adedeji, A. A. (2020). Optimization of Plant Growth Regulator (PGR) on in vitro propagation of pineapple (Ananas comosus (L.) var. Smooth Cayenne. International Journal of Recent Research in Life Sciences, 7(1), 13-20.
Asim, M., Abdan, K., Jawaid, M., Nasir, M., Dashtizadeh, Z., Ishak, M. R., & Hoque, M. E. (2015). A review on pineapple leaves fiber and its composites. International Journal of Polymer Science, 2015(1), 1-16. doi.org/10.1155/2015/950567
Bollmark, M. & Eliasson, L. (1986). Effects of exogenous cytokinins on root formation in pea cuttings. Physiology Plants, 68(1), 662–666.
Cacaï, G. H. T., Ahokpossi, B. A. M., Houédjissin, S. S., Houngue, J. A., Badou, B. T., Ahanhanzo, C. (2021). Plant regeneration through somatic embryogenesis in two cultigroups of pineapple (Ananas comosus L.). Research Square, 1-18. DOI: 10.21203/rs.3.rs-244247/v1
Dhurve, L., Kumar, K. A., Bhaskar, J., Sobhana, A., Francies, R. M., & Mathew, D. (2021). Wide variability among the ‘Mauritius’ somaclones demonstrates somaclonal variation as a promising improvement strategy in pineapple (Ananas comosus L.). Plant Cell Tissue Organ Culture, 145(1), 701-705. doi.org/10.1007/s11240-021-02022-5
Fernando, Y., Harahap, F., Diky S., & Rosmayati, D. (2020). In Vitro Propagation of Pineapple (Ananas comosus L.) Shoots from Sipahutar North Sumatera Indonesia. The International Conference on Sciences and Technology Applications Journal of Physics, 1485, 1-9. doi:10.1088/1742-6596/1485/1/012042
Gato, A. M. G., Silva, D., Ferreira, F. F., Pinheiro, E. N., Rodrigues, D. C., Assunção, L. M., Silva, E. L., & Marinho, V. R. P. (2019). Efeitos de diferentes reguladores de crescimento na produção de mudas micropropagadas de Ananas erectifolius L.B. Sm. Scientia Amazonia, 8(3), 1-7.
Garcia, C. W., Machado, I. S., Almeida, B. O., & Arcalá, L. F. L. (2010). Balanços de fontes nitrogenadas amoniacais e nítricas na micropropagação de curauá. Revista Brasileira de Oleaginosas e Fibrosas, 14(1), 125-133.
Grattapaglia, D. & Machado, M. A. Micropropagação. In: Torres, A. C., Caldas, L. S., Buso, J. A. (1998). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília: Embrapa.
Hinojosa, G. F. Auxinas. In: Barrueto Cid, L. P. (2000). Introdução dos hormônios vegetais. Brasília: Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia.
Kornatskiy, S. A. (2020). Pineapple micropropagation (Ananas comosus L. Smooth Cayenne) and plant growth features in the process of adaptation in hydroponics. Journal of Critical Reviews, 7(8), 3228-3234.
Kuroha, T., Kato, H., Asami, T., Yoshida, S., Kamada, H., & Satoh, S. (2002). A trans-zeatin riboside in root xylem sap negatively regulates adventitious root formation on cucumber hypocotyls. Journal Experimental Botany, 53(1), 2193–2200.
Kuroha, T., Ueguchi, C., Sakakibara, H., & Satoh, S. (2006). Cytokinin Receptors are required for normal development of auxin-transporting vascular tissues in the hypocotyl but not in adventitious roots. Plant and Cell Physiology, 47(2), 234-243.
Leão, A. L., Caraschi, J. C., & Tan, I. H. Curaua fiber - a tropical natural fibers from Amazon potential and applications in composites. In: Mattoso, L.H.C., Leão, A.L., & Frollini, E. (2000). Natural Polymers and Agrofibers Bases Composites. São Carlos: Embrapa Instrumentação Agropecuária.
Leão, A. L., Machado, I. S., Souza, S., & Soriano, L. (2009). Production of curaua (Ananas erectifolius LB Smith) fibers for industrial applications: characterization and micropropagation. Acta Horticulturae, 822(1), 227-238.
Liu, C., Zhang, W., & He, Y. (2022). The complete chloroplast genome of Ananas comosus var. erectifolius (L.B. Smith) Coppens & Leal. Resources. Mitochondrial DNA B Resources, 7(3), 431-433.
Macedo, C. E. C., Silva, M. G., Nobrega, F. S., Martins, P. M., Barroso, P. A. V., & Alloufa, M. A. I. (2003). Concentrações de ANA e BAP na micropropagação de abacaxizeiro L. Merrill (Ananas comosus) e no cultivo hidropônico das plântulas obtidas in vitro. Revista Brasileira de Fruticultura, 25(1), 501-504.
Machado, I. S., Gomes, A. C., Bertozzo, F., Soriano, L., & Arcala, L. F. L. (2009). Induction of callus formation in in vitro curaua meristems. Revista Brasileira de Oleaginosas e Fibrosas, 13(1), 83-90.
Martins, J. P. R., Rodrigues, L. C. A., Silva, T. S., Gontijo, A. B. P,L., & Falqueto, A. R. (2020). Modulation of the anatomical and physiological responses of in vitro grown Alcantarea imperialis induced by NAA and residual effects of BAP. Ornamental Horticulture, 26(2), 283-297.
Martins, J. P. R., Schimildt, E. R., Alexandre, R. S., Santos, B. R., & Magevski, G. C. (2013). Effect of synthetic auxins on in vitro and ex vitro bromeliad rooting. Pesquisa Agropecuária Tropical, 43(2),138-146.
Mendes, G. C., Soares, C. Q. G., Braga, V. F., Pinto, L. C., Santana, R., Viccini, L. F., & Peixoto, P. H. P. (2007). Enraizamento in vitro de Vriesea cacuminis L. B. Smith (Bromeliaceae) do Parque Estadual do Ibitipoca, Minas Gerais, Brasil. Revista Brasileira de Biociências, 5(2), 969-971.
Moraes, A. M., Almeida, F. A. C., Bruno, R. L. A., Cazé Filho, J., Nunes, S.T., & Gomes, J.P. (2010). Micropropagação de abacaxizeiro cv. Emepa 1. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental, 14(9), 932-936.
Mothé, C. G. & Araújo, C. R. (2004). Caracterização térmica e mecânica de compósitos de poliuretano com fibras de curauá. Polímeros: Ciência e Tecnologia, 14(4), 274-278.
Murashige, T. S. & Skoog, F. A. (1962). Revised medium for rapid growth bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(1), 473-497.
Pasqual, M. (2001). Cultura de tecidos. Lavras: UFLA/FAEPE.
Pierik, R. L. M., Steegmans, H. H. M., & Hendriks, J. (1984). The influence of naphthaleneacetic acid on the growth of in vitro cultivated seedling of Bromeliaceae. Scientia Horticulturae, 24(1), 193-199.
Pineda, A., Vargas, T. E., Escala, M., & García, E. (2012). Organogenesis in vitro in pineapple ‘Red Spanish’ and foliar morpho-anatomy of plants obtained in the process. Bioagro, 24(3), 175-186.
Oliveira, Y., Anselmini, J. I., Cuquel, F. L., Pinto, F., & Quoirin, M. (2010). Pré-aclimatização in vitro de abacaxi ornamental. Ciência e Agrotecnologia, 34(1), 1647-1653.
Sani, L. A., Usman, I. S., Nasir, A. U. & Abdulmalik, M. M. (2019). Micropropagation of pineapple (Ananas comosus L. var. Smooth Cayenne) in temporary immersion bioreactor system (TIPS). Bayero Journal of Pure and Applied Sciences, 12(2), 207-209.
Sena Neto, A. R. S., Claro, P. I. C., Souza, F. V. D., Mattoso, L. H. C., & Marconcini, J. M. (2017). Poly (lactic acid) composites reinforced with leaf fibers from ornamental variety of hybrid pineapple (Potyra). Polymer Composites, 38(1), 1228-1235.
Sena Neto, A. R., Araujo, M. A. M., Barboza, R. M. P., Fonseca, A. S., Tonoli, G. H. D., Souza, F. V. D., Mattoso, L. H. C., & Marconcini, J. M. (2015). Comparative study of 12 pineapple leaf fiber varieties for use as mechanical reinforcement in polymer composites. Industrial Crops and Products, 64(1), 68-78.
Souza, C. P. F., Ferreira, C. F., Souza, E. H., Sena Neto, A. R., Marconcini, J. M., Ledo, C. A. S., & Souza, F. V. D. (2017). Genetic diversity and ISSR marker association with the quality of pineapple fiber for use in industry. Industrial Crops and Products, 104(1), 263-268.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2022 Leonardo Soriano; Carolina Rossi de Oliveira; Fabiana Rezende Muniz; Isaac Stringueta Machado
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Autores que publicam nesta revista concordam com os seguintes termos:
1) Autores mantém os direitos autorais e concedem à revista o direito de primeira publicação, com o trabalho simultaneamente licenciado sob a Licença Creative Commons Attribution que permite o compartilhamento do trabalho com reconhecimento da autoria e publicação inicial nesta revista.
2) Autores têm autorização para assumir contratos adicionais separadamente, para distribuição não-exclusiva da versão do trabalho publicada nesta revista (ex.: publicar em repositório institucional ou como capítulo de livro), com reconhecimento de autoria e publicação inicial nesta revista.
3) Autores têm permissão e são estimulados a publicar e distribuir seu trabalho online (ex.: em repositórios institucionais ou na sua página pessoal) a qualquer ponto antes ou durante o processo editorial, já que isso pode gerar alterações produtivas, bem como aumentar o impacto e a citação do trabalho publicado.
