Protocolo para desenvolvimento de embriões zigóticos in vitro e aclimatização de plantas de Sangue-de-dragão
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v9i9.7031Palavras-chave:
Planta medicinal; Meio de cultura; Carvão ativado; Croton lechleri.Resumo
Sangue-de-dragão, espécie nativa da América do Sul, possui propriedades terapêuticas comprovadas cientificamente. Este estudo teve como objetivo desenvolver um protocolo para estabelecimento in vitro e aclimatização de plantas a partir de embriões zigóticos, uma vez que pesquisas com a espécie são incipientes. Foram avaliados meios de cultura (MS, WPM, QL e N6), na ausência e presença de carvão ativado (2 g L-1). Observou-se percentagem de embriões desenvolvidos entre 83% a 100% e influência da composição do meio para altura de plantas e número de folhas in vitro. As plantas foram aclimatizadas com 100% de sobrevivência, e para os tratamentos no cultivo in vitro apenas o meio de cultura influenciou o diâmetro e altura das plantas. As formulações WPM e QL sem carvão ativado são indicadas para o cultivo in vitro de embriões e aclimatização de Sangue-de-dragão. A metodologia proposta representa uma estratégia para reprodução, estudos fisiológicos e preservação da espécie.
Referências
Adelberg, J., Driesse, T., Halloran, S., & Bridges, W. C. (2013). Relationships between nutrients and plant density in liquid media during micropropagation and acclimatization of turmeric. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 49(6), 724-736.
Alonso-Castro, A. J., Ortiz-Sánchez, E., Domínguez, F., López-Toledo, G., Chávez, M., de Jesús Ortiz-Tello, A., & García-Carrancá, A. (2012). Antitumor effect of Croton lechleri mull. arg.(euphorbiaceae). Journal of Ethnopharmacology, 140(2), 438-442.
Aranda-Peres, A. N., Peres, L. E. P., Higashi, E. N., & Martinelli, A. P. (2009). Adjustment of mineral elements in the culture medium for the micropropagation of three Vriesea bromeliads from the Brazilian Atlantic Forest: the importance of calcium. HortScience, 44(1), 106-112.
Chu, C. C., Wang, C. C., Sun, C. S., Hsu, C., Yin, K. C., & Bi, F. Y. (1975). Establishment of an efficient medium for anther culture of rice through comparative experiments on the nitrogen sources. Scientia sinica, 18(5), 659-668.
Ebert, A., Contini, A. Z., Brondani, G. E., & da Costa, R. B. (2014) Germinação in vitro de embriões zigóticos de Mauritia flexuosa sob diferentes temperaturas. Advances in Forestry Science, 1(1) 39-43.
Economou, A. S. (2013). From microcutting rooting to microplant establishment: key points to consider for maximum success in woody plants. In V International Symposium on Acclimatization and Establishment of Micropropagated Plants, 988, 43-56.
El-Hawaz, R., Park, D., Bridges, W. C., & Adelberg, J. (2016). Optimizing in vitro mineral nutrition and plant density increases greenhouse growth of Curcuma longa L. during acclimatization. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 126(1), 33-42.
Galdiano Júnior, R. F., Mantovani, C., Pivetta, K. F. L., & Lemos, E. G. D. M. (2012). Crescimento in vitro e aclimatização de Cattleya loddigesii Lindley (Orchidaceae) com carvão ativado sob dois espectros luminosos. Ciência Rural, 42(5), 801-807.
George, E. F., Hall, M. A., & De Klerk, G. J. (2008). Plant propagation by tissue culture. Dordrecht: Springer.
Haslam, T. M., & Yeung, E. C. (2011). Zygotic embryo culture: an overview. In: Plant Embryo Culture. Humana Press, 3-15.
Hu, C. Y., & Ferreira, A. G. Cultura de embriões. (1998). In: Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília: Embrapa-SPI/ Embrapa-CNPH, 371-393.
Lopes, T. V., Félix, S. R., de Vargas Schons, S., & de Oliveira Nobre, M. (2013). Dragon's blood (Croton lechleri Mull., Arg.): an update on the chemical composition and medical applications of this natural plant extract. A review. Revista Brasileira de Higiene e Sanidade Animal, 7(2), 167-191.
Lloyd, G. B., & Mccown, Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. (1980). Proceedings of the International Plant Propagator's Society, 30(1), 421-426.
Machado, M. P. (2013). Application of IBA on in vitro and ex vitro rooting microcutting of Lavandula angustifolia Miller. Journal of Biotechnology and Biodiversity, 4(2), 153-161.
Mafia, R. G., Marchesi, H. P., & Aun, C. P. (2012). Avaliação de clones de eucalipto para resistência à ferrugem em condições de micropropagação. Revista Árvore, 36(5), 843-850.
Montopoli, M., Bertin, R., Chen, Z., Bolcato, J., Caparrotta, L., & Froldi, G. (2012). Croton lechleri sap and isolated alkaloid taspine exhibit inhibition against human melanoma SK23 and colon cancer HT29 cell lines. Journal of Ethnopharmacology, 144(3), 747-753.
Morais, T. P., Luz, J. M. Q., Silva, S. M., Resende, R. F., & Silva, A. S. (2012). Aplicações da cultura de tecidos em plantas medicinais. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, 14(1), 110-121.
Murashige, T., & Skoog, F. (1962) A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 15(3), 473-497.
Oliveira, L. S., Dias, P. C., & Brondani, G. E. (2013). Micropropagação de espécies florestais brasileiras. Pesquisa florestal brasileira, 33(76), 439-453.
Oliveira, T. G. D., Pina, P. S. S.; Bertoni, B. W., França, S. D. C., & Pereira, A. M. S. (2011). Micropropagação de Croton antisyphiliticus Mart. Ciência Rural, 41(10), 1712-1718.
Pedroso-de-Moraes, C., Souza-Leal, T. D., Panosso, A. R., & Souza, M. C. D. (2012). Efeitos da escarificação química e da concentração de nitrogênio sobre a germinação e o desenvolvimento in vitro de Vanilla planifolia Jack ex Andr.(Orchidaceae: Vanilloideae). Acta Botanica Brasilica, 26(3), 714-719.
Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. J., & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da pesquisa científica. Santa Maria: Universidade Federal de Santa Maria.
Poothong, S., & Reed, B. M. (2014). Modeling the effects of mineral nutrition for improving growth and development of micropropagated red raspberries. Scientia Horticulture, 165, 132-141.
Quoirin, M., & Lepoivre, P. (1977). Etude de milieux adaptes aux cultures in vitro de Prunus. Acta Horticulturae, 78(57), 437-442.
Sachs, R. M., Bretz, C., & Lang, A. (1959). Cell division and gibberellic acid. Experimental cell research, 18(2), 230-244.
Sanputawong, S., Raknim, T., & Benchasri, S. (2015). Influence of Different Type of Culture Media and Activated Charcoal on Callus Induction and Shoot Multiplication of Cadaminelyrata. Journal of Agricultural Technology, 11(8), 1697-1704.
Soares, J. D. R., Rodrigues, F. A., Pasqual, M., Nunes, C. F., & de Araujo, A. G. (2011). Germinação de embriões e crescimento inicial in vitro de macaúba. Ciência Rural, 41(5), 773-778.
Sodek, L. (2004) Metabolismo do Nitrogênio. In: Fisiologia Vegetal. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 94-113.
Thomas, T. D. (2008). The role of activated charcoal in plant tissue culture. Biotechnology advances, 26(6), 618-631.
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