Dry biomass of Aspergillus niger in commercial diets for juveniles of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in the intermediate growth phase (15 to 70g)

Authors

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v11i3.26362

Keywords:

Aspergillus niger; Animal nutrition; Productive performance; Yeast.

Abstract

The objective of the present study was to evaluate different inclusion levels of drymass of the yeast Aspergillus niger (0; 0.125; 0.250; 0.500; 1.00; 2.00; 4.00 and 8.00%) in commercial diets for juveniles of Nile tilapia (16.11 ± 1.74g) in a water recirculation system. The productive performance, organosomatic indexes and carcass composition of these animals were evaluated after 58 days of experiment. A total of 192 juveniles were distributed among 32 tanks made up of eight treatments with four repetitions. A significant difference was observed for the hepatosomatic index at 2.00% of inclusion, which was similar to the other treatments except for the 0.125% inclusion level. The inclusion of A. niger  had no negative impacts on performance when compared with the control diet. Since it is a by-product, the use of A. niger can be an alternative in the formulation of diets for tilapia in the initial stages (15-70g).

References

Arana, L. V. (2004). Qualidade da água em Aquicultura: princípios e práticas. (3ed.) Ed. UFSC. 237p.

Association of Official Analytical Chemists – AOAC. (1999). Official methods of analysis, AOAC. Washington, DC.

Baccarin, A. E., & Pezzato. L. E. (2001). Efeito da utilização da levedura desidratada de álcool em dietas para tilápia-do-Nilo. Pesq. Agropec. Bras., 36, 549–556. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2001000300021.

Bailey, J. E., & Ollis, D. F. (1986). Biochemical engineering fundamental. McGraw-Hill:, 928 p.

Baldissera, M. D., Souza, C. F., Baldisserotto, B., Zimmer, F., Paiano, D., Petrolli, T. G., & Da Silva, A.S. (2019). Vegetable choline improves growth performance, energetic metabolism, and antioxidant capacity of fingerling Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 501, 224-229. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.11.021

Barton, B.A ., Morgan, J. D., & Vijayan, M. M. (2002). Physiological and condition-related indicators of environmental stress in fish. Chapter 4. In: Adams SM, editor. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. Bethesda, Maryland: American Fisheries Society.

Bligh, E., & Dyer, W. (1959). A rapid method of total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol., 37, 8, 911-917. https://doi.org/10.1139/o59-099

Carvalho, J. V., Lira, A. D., Costa, D. S. P., Moreira, E .L. T., Pinto, L. F. B., Abreu, R. D., & Albinati, R. C. B. (2011). Desempenho zootécnico e morfometria intestinal de alevinos de tilápia-do-Nilo alimentados com Bacillus subtilis ou mananoligossacarídeo. Rev. bras. saúde prod. anim., 12, 176-187. http://dx.doi.org/10.1590/1809-6891v20e-37348.

Contreras-Guzmán, E. S. (2002). Bioquímica de pescados e invertebrados. Santiago: Universidad de Santiago de Chile, 309p.

Costa, D.V D. (2015). Partição e destino metabólico do 14C-glicerol dietético em tecidos-alvo de juvenis de tilápia. Tese (Programa de Pós-Graduação em Zootecnia) – Universidade Federal de Lavras, Lavras.

Couto, S. R., & Sanroman. M. A. (2006). Application of solid state fermentation to food industry: a review. J. Food Eng., 76, 3, 291-302. https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2005.05.022

Deminicis, B.B., & Martins, C. B. (2013). Tópicos especiais em Ciência Animal II. Caufes, 321 p.

Durigon. E. G., Emerenciano, M.G.C., Sousa, A.A., Honorato, L., Coutinho, C.R., & Mello, G.L. (2018). Aspergillus niger inclusion in extruded commercial diets for Nile tilapia (Oreochormis niloticus) juveniles. Arq. Ciên. Mar, 51, 1, 57-64. https://doi.org/10.32360/acmar.v51i1.31302

El-Sayed, E. M. (2020). Tilapia Culture. (2ª ed.). London: Elsevier.

Freccia, A., Picoli, F., Ghizzo, J. B., Faust, M., Sanches, E .A. & Emerencisno, M. G. C. (2021). Effects of different stocking densities and supplementation with Saccharomyces cerevisiae in juvenile Nile tilapia cultivated in a recirculating water system (RAS). Research, Society and Development, 10, 16, 1-15. https://doi.org/ 10.33448/rsd-v10i16.23385.

Furuya, W.. M., Seron, S., Vargas, L., Hayashi, C., Furuya, V. R .B., & Soares, C .M. (2000). Níveis de levedura desidratada spray dried na dieta de alevinos revertidos de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus). Cienc. Rural, 30, 4, 699-704. https://doi.org/10.1590/S0103-84782000000400024.

Gaiotto, J. R. (2005). Utilização de levedura de cana-de-açúcar (Saccharomyces cerevisiae) e seus subprodutos na alimentação de juvenis de pintado (Pseudoplatystoma corruscans). 287f. Dissertação (Mestrado em Zootecnia) - Universidade de São Paulo, SP.

Gonçalves, L. U., Carvalho, M., Viegas, E .M. M. (2010). Utilization of sugar cane yeast and its by-products in Nile tilapia diets. Cienc. Rural, 40, 5, 1173-1179. https://doi.org/10.1590/S0103-84782010000500027

Guimaraes, I. G., Miranda, E .C., Martins, G. P., Louro, V. R., & Miranda, C. C. (2008). Shrimp meal in diets for Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Rev. Bras. Saúde Prod. An. 9, 1, 140–149. ISSN 1519 9940.

Hisano, H., Narvaez-Solarte, W. V., Barros, M. M., & Pezzato, L. E. (2007). Desempenho produtivo de alevinos de tilápia-do-Nilo alimentados com levedura e derivados. Pesqui. Agropecu. Bras., 42, 7, 1035-1042. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2007000700017.

Hisano, H., Sampaio, F. G., Barros, M .M., & Pezzato, L. E. (2008). Composição nutricional e digestibilidade aparente da levedura íntegra, da levedura autolisada e da parede celular pela tilápia-do-Nilo. Ci. Anim. Bras., 9, 1, 43-49. ISSN 1089-6891.

Kozakiewicz, K., Frisvad, J.C., Hawksworth, D.L., Pitt, J.I., Samson, R.A., & Stolk, A.C. (1992). Proposals for nomina specifica conservanda and rejicienda in Aspergillus and Penicillium (Fungi) Taxon, 41, 109-113.

Kubitza, F. (2004). Reprodução, larvicultura e produção de alevinos de peixes nativos. Jundiai - SP, p.73.

Li, P., & Gatlin III, D.M. (2003). Evaluation of brewers yeast (Saccharomyces cerevisiae) as feed supplement for hybrid striped bass (Morone chrysops x M. saxatilis). Aquaculture, 219, 681-692. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00653-1.

Li, P., & Gatlin III, D.M. (2004). Dietary brewers yeast and the prebiotic Grobiotic™AE influence growth performance, immune responses and resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops x M. saxatilis) to Streptococcus iniae infection. Aquaculture, 231, 445- 456. doi: 10.1016/ j.aquaculture.2003.08.021

Lima, F.W. (2014). Colonização e morfometria intestinal de Lambaris-do-rabo-amarelo (Astyanax altiparanae) alimentados com dietas contendo levedura (Saccharomyces cerevisiae) como probiótico. Tese de Mestrado em Biologia Animal. Universidade Federal de Viçosa, Viçosa – Minas Gerais. 50p.

Meurer, F., Hayashi, C., Martins, C., & Rogéri,o W. (2000). Utilização de levedura spray dried na alimentação de alevinos de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus L). Acta Sci., 22, 2, 479–484. https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v22i0.2995

Meurer, F., Silva, M. S., Costa, M .M., Colpini, L. M. S., & Mascioli, A. S. (2009). Probiótico com levedura na alimentação da tilápia do Nilo, durante o período de reversão sexual, cultivada em água de tanque de cultivo. Rev. bras. saúde prod. anim., 10, 2, 406-416.

Nascimento, J. C. S., Fonseca Filho, L. B., Silva, R. L A., Albuquerque, P. V., Pereira, L. B. S .B., Costa, C. A., Melo, F. P., Nascimento, J .S ., Amorim, M .J. A. A. L., & Porto, A. F. (2018). Seleção de fungos do gênero Aspergillus produtores de fitase para inclusão na alimentação animal. Pubvet. 12, 3, 56, 1-7. https://doi.org/10.22256/pubvet.v12n3a56.1-7

Ortuño, J., Cuesta, A., Rodríguez, A., Esteban, M. A., & Meseguer, J. (2002). Oral administration of yeast, Saccharomyces cerevisiae, enhances the cellular inate immune response of gilthead seabream (Spaurus auratus L.). Vet. immunol. immunopathol., 85, 41-50. https://doi.org /10.1016/s0165-2427(01)00406-8.

Peres, H., & Oliva-Teles, A. (2003). The effect of dietary ribonucleic acid incorporation in performance of European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Aquaculture, 215, 245-253. https://doi.org /S0044- 8486(02)00130-8.

Pezzato, L. E., Menezes, A., Marros, M. M., Guimarães, I. G., & Schich, D. (2006). Levedura em dietas para alevinos de tilápia do Nilo. Vet. Zootec., 13, 1, 84-94.

Picoli, F., Lopes, D. L. de A., Zampar, A., Serafini, S., Freccia, A., Veronezi, L. O., Kowalski, M. W., Ghizzo, J. B., & Emerenciano, M G C (2019). Dietary bee pollen affects hepatic–intestinal histomorphometry of Nile tilapia fingerlings. Aquaculture Research. 50, 1–10. https://doi.org/10.1111/are.14287

Portz, L., Cyrino, J. E .P., & Martino, R .C. (2001). Growth and body composition of juvenile largemouth bass Micropterus salmoides in response to dietary protein and energy levels. Aquacult. Nutr., 7, 247–254. https://doi.org/10.1046/j.1365-2095.2001.00182.x

Raper, K. B., & Fennell, D .I. (1965). The Genus Aspergillus. 686p.

Ribeiro, P. A. P., Melo, D. C., Costa, L. S., & Teixeira, E. A. (2012). Manejo nutricional e alimentar de peixes de água doce. UFMG: Belo Horizonte – MG, 92p.

Rodrigues, C. (2006). Desenvolvimento de bioprocesso para produção de ácido cítrico por fermentação no estado sólido utilizando polpa cítrica. Dissertação (Mestrado em Processos Biotecnológicos) - Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 107p.

Rumsey, G. L., Kinsella, J. E., Shetty, K .J., & Hughesa, S. G. (1991). Effect of high dietary concentration of brewers dried yeast on growth performance and liver uricase in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Anim feed sci tech., 33, 177-183. https://doi.org/10.1016/0377-8401(91)90058-Z

Sakai, M., Taniguchi, K., Mamoto, K., Ogawa, H., & Tabata, M. (2001). Immunoestimulant effects of nucleotide isolated from yeast RNA on carp, Cyprinus carpio L. J. Fish Dis., 24, 433-438. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2001.00314.x

Santos, E. L., Ludke, M. C. M. M., Barbosa, J. M., Rabello, C. B. V., Ludke, J.V ., Winterle, W. M. C., & Sinva, E. G. (2009). Níveis de farelo de coco em rações para alevinos de tilápia do Nilo. Rev. bras. saúde prod. anim., 10, 2, 390-397.

Sampaio, I. B. M. (1998). Estatística aplicada à experimentação animal. Belo Horizonte: Universidade Federal de Minas Gerais, p.221.

Schulz, E., & Oslage, H. J . (1976). Composition and nutritive value of single-cell protein (SCP). Anim feed sci tech., 1, 1, 9-24.

Schwarz, K. K., Furuya, W. M., Natali, M. R. M., Michelato, M., & Gaudezi, M. C. (2010). Mananoligossacarídeo em dietas para juvenis de tilápias do Nilo. Acta Sci. Anim. Sci., 32, 2, 197-203. https://doi.org/10.4025/actascianimsci.v32i2.7724

Schwarz, K. K., Furuya, W. M., Natali, M. R. M., Gaudezi, M. C., & Lima, P. A. G. (2011). Mananoligossacarídeo em dietas para larvas de tilápia. R. Bras. Zootec., 40, 12, p. 2634-2640. https://doi.org/10.1590/S1516-35982011001200003

Schwarz, K .K., Nascimento, J. C., & Silva, C. H., & Salvador, J. G. (2016). Desempenho zootécnico de alevinos de tilápias do nilo (Oreochromis niloticus) alimentados com levedura de Saccharomyces cerevisiae. Holos, 3, 104–113. https://doi.org/10.15628/holos.2016.1869

Downloads

Published

22/02/2022

How to Cite

PICOLI, F.; MICHIELIN, T. .; SGNAULIN, T.; COSTA, A. P. de O.; NORA, L.; MARCELINO, A. H.; ZAMPAR, A.; LOPES, D. L. de A.; EMERENCIANO, M. G. C. Dry biomass of Aspergillus niger in commercial diets for juveniles of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in the intermediate growth phase (15 to 70g). Research, Society and Development, [S. l.], v. 11, n. 3, p. e28311326362, 2022. DOI: 10.33448/rsd-v11i3.26362. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/26362. Acesso em: 27 nov. 2024.

Issue

Section

Agrarian and Biological Sciences