Biomassa seca de Aspergillus niger em dietas comerciais para juvenis de tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus) na fase de pré-engorda (15 a 70g)

Autores

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v11i3.26362

Palavras-chave:

Aspergillus niger; Nutrição animal; Desempenho produtivo; Levedura.

Resumo

O objetivo do presente trabalho foi avaliar diferentes níveis de inclusão de massa seca da levedura Aspergillus niger (0; 0,125; 0,250; 0,500; 1,00; 2,00; 4,00 e 8,00%) em dietas comerciais para juvenis de tilápia do Nilo (16,11 ± 1,74g) em um sistema de recirculação de água. O desempenho produtivo, índices organossomáticos e composição de carcaça desses animais foram avaliados após 58 dias de experimento. Um total de 192 juvenis foram distribuídos em 32 tanques compostos por oito tratamentos com quatro repetições. Foi observada diferença significativa para o índice hepatossomático a 2,00% de inclusão, que foi semelhante aos demais tratamentos, exceto pelo nível de inclusão de 0,125%. A inclusão de A. niger não teve impactos negativos no desempenho quando comparada com a dieta controle. Por ser um subproduto, o uso de A. niger pode ser uma alternativa na formulação de dietas para tilápias em estágios iniciais (15-70g).

Referências

Arana, L. V. (2004). Qualidade da água em Aquicultura: princípios e práticas. (3ed.) Ed. UFSC. 237p.

Association of Official Analytical Chemists – AOAC. (1999). Official methods of analysis, AOAC. Washington, DC.

Baccarin, A. E., & Pezzato. L. E. (2001). Efeito da utilização da levedura desidratada de álcool em dietas para tilápia-do-Nilo. Pesq. Agropec. Bras., 36, 549–556. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2001000300021.

Bailey, J. E., & Ollis, D. F. (1986). Biochemical engineering fundamental. McGraw-Hill:, 928 p.

Baldissera, M. D., Souza, C. F., Baldisserotto, B., Zimmer, F., Paiano, D., Petrolli, T. G., & Da Silva, A.S. (2019). Vegetable choline improves growth performance, energetic metabolism, and antioxidant capacity of fingerling Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 501, 224-229. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.11.021

Barton, B.A ., Morgan, J. D., & Vijayan, M. M. (2002). Physiological and condition-related indicators of environmental stress in fish. Chapter 4. In: Adams SM, editor. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. Bethesda, Maryland: American Fisheries Society.

Bligh, E., & Dyer, W. (1959). A rapid method of total lipid extraction and purification. Can. J. Biochem. Physiol., 37, 8, 911-917. https://doi.org/10.1139/o59-099

Carvalho, J. V., Lira, A. D., Costa, D. S. P., Moreira, E .L. T., Pinto, L. F. B., Abreu, R. D., & Albinati, R. C. B. (2011). Desempenho zootécnico e morfometria intestinal de alevinos de tilápia-do-Nilo alimentados com Bacillus subtilis ou mananoligossacarídeo. Rev. bras. saúde prod. anim., 12, 176-187. http://dx.doi.org/10.1590/1809-6891v20e-37348.

Contreras-Guzmán, E. S. (2002). Bioquímica de pescados e invertebrados. Santiago: Universidad de Santiago de Chile, 309p.

Costa, D.V D. (2015). Partição e destino metabólico do 14C-glicerol dietético em tecidos-alvo de juvenis de tilápia. Tese (Programa de Pós-Graduação em Zootecnia) – Universidade Federal de Lavras, Lavras.

Couto, S. R., & Sanroman. M. A. (2006). Application of solid state fermentation to food industry: a review. J. Food Eng., 76, 3, 291-302. https://doi.org/10.1016/j.jfoodeng.2005.05.022

Deminicis, B.B., & Martins, C. B. (2013). Tópicos especiais em Ciência Animal II. Caufes, 321 p.

Durigon. E. G., Emerenciano, M.G.C., Sousa, A.A., Honorato, L., Coutinho, C.R., & Mello, G.L. (2018). Aspergillus niger inclusion in extruded commercial diets for Nile tilapia (Oreochormis niloticus) juveniles. Arq. Ciên. Mar, 51, 1, 57-64. https://doi.org/10.32360/acmar.v51i1.31302

El-Sayed, E. M. (2020). Tilapia Culture. (2ª ed.). London: Elsevier.

Freccia, A., Picoli, F., Ghizzo, J. B., Faust, M., Sanches, E .A. & Emerencisno, M. G. C. (2021). Effects of different stocking densities and supplementation with Saccharomyces cerevisiae in juvenile Nile tilapia cultivated in a recirculating water system (RAS). Research, Society and Development, 10, 16, 1-15. https://doi.org/ 10.33448/rsd-v10i16.23385.

Furuya, W.. M., Seron, S., Vargas, L., Hayashi, C., Furuya, V. R .B., & Soares, C .M. (2000). Níveis de levedura desidratada spray dried na dieta de alevinos revertidos de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus). Cienc. Rural, 30, 4, 699-704. https://doi.org/10.1590/S0103-84782000000400024.

Gaiotto, J. R. (2005). Utilização de levedura de cana-de-açúcar (Saccharomyces cerevisiae) e seus subprodutos na alimentação de juvenis de pintado (Pseudoplatystoma corruscans). 287f. Dissertação (Mestrado em Zootecnia) - Universidade de São Paulo, SP.

Gonçalves, L. U., Carvalho, M., Viegas, E .M. M. (2010). Utilization of sugar cane yeast and its by-products in Nile tilapia diets. Cienc. Rural, 40, 5, 1173-1179. https://doi.org/10.1590/S0103-84782010000500027

Guimaraes, I. G., Miranda, E .C., Martins, G. P., Louro, V. R., & Miranda, C. C. (2008). Shrimp meal in diets for Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Rev. Bras. Saúde Prod. An. 9, 1, 140–149. ISSN 1519 9940.

Hisano, H., Narvaez-Solarte, W. V., Barros, M. M., & Pezzato, L. E. (2007). Desempenho produtivo de alevinos de tilápia-do-Nilo alimentados com levedura e derivados. Pesqui. Agropecu. Bras., 42, 7, 1035-1042. https://doi.org/10.1590/S0100-204X2007000700017.

Hisano, H., Sampaio, F. G., Barros, M .M., & Pezzato, L. E. (2008). Composição nutricional e digestibilidade aparente da levedura íntegra, da levedura autolisada e da parede celular pela tilápia-do-Nilo. Ci. Anim. Bras., 9, 1, 43-49. ISSN 1089-6891.

Kozakiewicz, K., Frisvad, J.C., Hawksworth, D.L., Pitt, J.I., Samson, R.A., & Stolk, A.C. (1992). Proposals for nomina specifica conservanda and rejicienda in Aspergillus and Penicillium (Fungi) Taxon, 41, 109-113.

Kubitza, F. (2004). Reprodução, larvicultura e produção de alevinos de peixes nativos. Jundiai - SP, p.73.

Li, P., & Gatlin III, D.M. (2003). Evaluation of brewers yeast (Saccharomyces cerevisiae) as feed supplement for hybrid striped bass (Morone chrysops x M. saxatilis). Aquaculture, 219, 681-692. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(02)00653-1.

Li, P., & Gatlin III, D.M. (2004). Dietary brewers yeast and the prebiotic Grobiotic™AE influence growth performance, immune responses and resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops x M. saxatilis) to Streptococcus iniae infection. Aquaculture, 231, 445- 456. doi: 10.1016/ j.aquaculture.2003.08.021

Lima, F.W. (2014). Colonização e morfometria intestinal de Lambaris-do-rabo-amarelo (Astyanax altiparanae) alimentados com dietas contendo levedura (Saccharomyces cerevisiae) como probiótico. Tese de Mestrado em Biologia Animal. Universidade Federal de Viçosa, Viçosa – Minas Gerais. 50p.

Meurer, F., Hayashi, C., Martins, C., & Rogéri,o W. (2000). Utilização de levedura spray dried na alimentação de alevinos de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus L). Acta Sci., 22, 2, 479–484. https://doi.org/10.4025/actascibiolsci.v22i0.2995

Meurer, F., Silva, M. S., Costa, M .M., Colpini, L. M. S., & Mascioli, A. S. (2009). Probiótico com levedura na alimentação da tilápia do Nilo, durante o período de reversão sexual, cultivada em água de tanque de cultivo. Rev. bras. saúde prod. anim., 10, 2, 406-416.

Nascimento, J. C. S., Fonseca Filho, L. B., Silva, R. L A., Albuquerque, P. V., Pereira, L. B. S .B., Costa, C. A., Melo, F. P., Nascimento, J .S ., Amorim, M .J. A. A. L., & Porto, A. F. (2018). Seleção de fungos do gênero Aspergillus produtores de fitase para inclusão na alimentação animal. Pubvet. 12, 3, 56, 1-7. https://doi.org/10.22256/pubvet.v12n3a56.1-7

Ortuño, J., Cuesta, A., Rodríguez, A., Esteban, M. A., & Meseguer, J. (2002). Oral administration of yeast, Saccharomyces cerevisiae, enhances the cellular inate immune response of gilthead seabream (Spaurus auratus L.). Vet. immunol. immunopathol., 85, 41-50. https://doi.org /10.1016/s0165-2427(01)00406-8.

Peres, H., & Oliva-Teles, A. (2003). The effect of dietary ribonucleic acid incorporation in performance of European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Aquaculture, 215, 245-253. https://doi.org /S0044- 8486(02)00130-8.

Pezzato, L. E., Menezes, A., Marros, M. M., Guimarães, I. G., & Schich, D. (2006). Levedura em dietas para alevinos de tilápia do Nilo. Vet. Zootec., 13, 1, 84-94.

Picoli, F., Lopes, D. L. de A., Zampar, A., Serafini, S., Freccia, A., Veronezi, L. O., Kowalski, M. W., Ghizzo, J. B., & Emerenciano, M G C (2019). Dietary bee pollen affects hepatic–intestinal histomorphometry of Nile tilapia fingerlings. Aquaculture Research. 50, 1–10. https://doi.org/10.1111/are.14287

Portz, L., Cyrino, J. E .P., & Martino, R .C. (2001). Growth and body composition of juvenile largemouth bass Micropterus salmoides in response to dietary protein and energy levels. Aquacult. Nutr., 7, 247–254. https://doi.org/10.1046/j.1365-2095.2001.00182.x

Raper, K. B., & Fennell, D .I. (1965). The Genus Aspergillus. 686p.

Ribeiro, P. A. P., Melo, D. C., Costa, L. S., & Teixeira, E. A. (2012). Manejo nutricional e alimentar de peixes de água doce. UFMG: Belo Horizonte – MG, 92p.

Rodrigues, C. (2006). Desenvolvimento de bioprocesso para produção de ácido cítrico por fermentação no estado sólido utilizando polpa cítrica. Dissertação (Mestrado em Processos Biotecnológicos) - Universidade Federal do Paraná, Curitiba, 107p.

Rumsey, G. L., Kinsella, J. E., Shetty, K .J., & Hughesa, S. G. (1991). Effect of high dietary concentration of brewers dried yeast on growth performance and liver uricase in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Anim feed sci tech., 33, 177-183. https://doi.org/10.1016/0377-8401(91)90058-Z

Sakai, M., Taniguchi, K., Mamoto, K., Ogawa, H., & Tabata, M. (2001). Immunoestimulant effects of nucleotide isolated from yeast RNA on carp, Cyprinus carpio L. J. Fish Dis., 24, 433-438. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2001.00314.x

Santos, E. L., Ludke, M. C. M. M., Barbosa, J. M., Rabello, C. B. V., Ludke, J.V ., Winterle, W. M. C., & Sinva, E. G. (2009). Níveis de farelo de coco em rações para alevinos de tilápia do Nilo. Rev. bras. saúde prod. anim., 10, 2, 390-397.

Sampaio, I. B. M. (1998). Estatística aplicada à experimentação animal. Belo Horizonte: Universidade Federal de Minas Gerais, p.221.

Schulz, E., & Oslage, H. J . (1976). Composition and nutritive value of single-cell protein (SCP). Anim feed sci tech., 1, 1, 9-24.

Schwarz, K. K., Furuya, W. M., Natali, M. R. M., Michelato, M., & Gaudezi, M. C. (2010). Mananoligossacarídeo em dietas para juvenis de tilápias do Nilo. Acta Sci. Anim. Sci., 32, 2, 197-203. https://doi.org/10.4025/actascianimsci.v32i2.7724

Schwarz, K. K., Furuya, W. M., Natali, M. R. M., Gaudezi, M. C., & Lima, P. A. G. (2011). Mananoligossacarídeo em dietas para larvas de tilápia. R. Bras. Zootec., 40, 12, p. 2634-2640. https://doi.org/10.1590/S1516-35982011001200003

Schwarz, K .K., Nascimento, J. C., & Silva, C. H., & Salvador, J. G. (2016). Desempenho zootécnico de alevinos de tilápias do nilo (Oreochromis niloticus) alimentados com levedura de Saccharomyces cerevisiae. Holos, 3, 104–113. https://doi.org/10.15628/holos.2016.1869

Downloads

Publicado

22/02/2022

Como Citar

PICOLI, F.; MICHIELIN, T. .; SGNAULIN, T.; COSTA, A. P. de O.; NORA, L.; MARCELINO, A. H.; ZAMPAR, A.; LOPES, D. L. de A.; EMERENCIANO, M. G. C. Biomassa seca de Aspergillus niger em dietas comerciais para juvenis de tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus) na fase de pré-engorda (15 a 70g). Research, Society and Development, [S. l.], v. 11, n. 3, p. e28311326362, 2022. DOI: 10.33448/rsd-v11i3.26362. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/26362. Acesso em: 27 nov. 2024.

Edição

Seção

Ciências Agrárias e Biológicas