El uso de biomateriales y rosuvastatina tópica aumenta la angiogénesis de heridas quirúrgicas en conejos

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v10i1.11327

Palabras clave:

Plasma rico en plaquetas; Fibrina rica en plaquetas; Estatinas; Cicatrización; Neovascularización.

Resumen

Se han realizado estudios para verificar los efectos de biomateriales como el plasma rico en plaquetas (PRP) y la fibrina rica en plaquetas (FRP) y su contribución al proceso de cicatrización de heridas al liberar factores de crecimiento que tienen propiedades de regeneración tisular. Muchas evidencias también son favorables al uso tópico de rosuvastatina (RSV) en lesiones cutáneas, al modificar positivamente el flujo sanguíneo del tejido basal. Sin embargo, no está claro si este efecto está involucrado en un aumento del flujo sanguíneo y, en consecuencia, en una mejora en el proceso de curación. En este sentido, el presente estudio analizó la cantidad de fibroblastos y el número de vasos en heridas inducidas experimentalmente en conejos tras el tratamiento con y sin asociación de biomateriales y RSV. La hipótesis es que el uso tópico de un fármaco hipolipemiante asociado con un biomaterial puede aumentar la cantidad de fibroblastos y la angiogénesis después de una lesión inducida experimentalmente, aumentando así la colagenización para producir una cicatriz más homogénea. Se encontró que la asociación de FRP y RSV promovió un efecto aditivo al aumentar significativamente la angiogénesis. Se encontró que la asociación de FRP y RSV promovió un efecto aditivo, aumentando la angiogénesis en un 135%. El uso de RSV solo también proporcionó un aumento del 77% en la cantidad de fibroblastos. Se concluyó que tanto el FRP como el RSV tienen buenos efectos curativos, por lo que la asociación entre ellos fue beneficiosa y demostró un posible efecto aditivo.

Citas

Abegão, K. G. B., Bracale, B. N., Delfim, I. G., Santos, E. S., Laposy, C. B., Nai, G. A., Giuffrida, R., & Nogueira, R. M. B. (2015). Effects of heterologous platelet-rich plasma gel on standardized dermal wound healing in rabbits. Acta Cirúrgica Brasileira, 30(3), 209-215.

Azevedo, M. C. M. P. S. Aplicação do PRF em medicina dentária. 2014. 29 f. Dissertação (Mestrado integrado em Medicina Dentária) – Faculdade de Medicina Dentária, Universidade do Porto, Porto – Portugal.

Barrionuevo, D. V., Laposy, C. B., Abegão, K. G. B., Nogueira, R. M. B., Nai, G. A., Bracale, B. N., & Delfim, I. G. (2015). Comparison of experimentally-induced wounds in rabbits treated with different sources of platelet-rich plasma. Laboratory Animals, 49(3), 209-214.

Bochaton-Piallat, M-L., Gabbiani, G., & Hinz, B. (2016). The myofibroblast in wound healing and fibrosis: answered and unanswered questions. F1000Research, 5, F1000 Faculty Rev-752.

Carmona, J. U., Lopez, C., & Giraldo, C. E. (2011). Uso do concentrado de plaquetas autólogo como terapia regenerativa de enfermidades crónicas del aparato músculo-esquelética equina. Archivos de Medicina Veterinária, 43(1), 1-10.

Chiaravalloti, A. J., Zubkov, B., & Zubkov, A. (2018). Treatment of a Chronic Cutaneous Surgical Wound With Platelet-Rich Fibrin. Dermatologic Surgery, 44(3), 449-452.

Cieslik-Bielecka, A., Choukroun, J., Odin, G., & Ehrenfest, D. M. D. (2012). L-PRP/L-PRF in esthetic plastic surgery, regenerative medicine of the skin and chronic wounds. Current Pharmaceutical Biotechnology,13(7), 1266-1277.

Darby, I. A., Laverdet, B., Bonté, F., & Desmoulière, A. (2014). Fibroblasts and myofibroblasts in wound healing. Clinical Cosmetic and Investigational Dermatology, 7, 301-311.

Dohle, E., Bagdadi, K. E., & Sader, R. (2018). Platelet-rich fibrin-based matrices to improve angiogenesis in an in vitro co-culture model for bone tissue engineering. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine, 12(3), 598-610.

Ehrenfest, D. M. D., Andia, I., Zumstein, M. A., Zhang, C-Q., Pinto, N. R., & Bielecki, T. (2014). Classification of platelet concentrates (Platelet-Rich Plasma-PRP, Platelet-Rich Fibrin-PRF) for topical and infiltrative use in orthopedic and sports medicine: current consensus, clinical implications and perspectives. Muscles, Ligaments Tendons Journal, 4(1), 3-9.

Ehrenfest, D. M. D., Pinto, N. R., Pereda, A., Jiménez, P., Del Corso M., Kang, B-S., Nally, M., Lanata, N., Wang, H-L., & Quirynen, M. (2017). The impact of the centrifuge characteristics and centrifugation protocols on the cells, growth factors, and fibrin architecture of a leukocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF) clot and membrane. Platelets, 29(2), 171-184.

Fernández-Sarmiento, A., Dominguez, J. M., Granados, M. M., Morgaz, J., Navarrete, R., Carrillo, J. M., Gómez-Villamantos, R. J., Muñoz-Rascón, P., Martin de Las Mulas, J., Millán, Y., García-Balletbó, M., &Cugat, R. (2013). Histological study of the influence of plasma rich in growth factors (PRGF) on the healing of divided achilles tendons in sheep. Journal of Bone &Joint Surgery, 95 (3), 246-255.

Grover, H. S., Kapoor, S., &Singh, A. (2016). Effect of topical simvastatin (1,2 mg) on gingival crevicular fluid interleukin-6, interleukin-8 and interleukin-10 levels in chronic periodontitis- a clinic biochemical study. Journal of Oral and Biology Craniofacial Research., 6(2), 85-92.

Kubesch, A., Barbeck, M., Al-Maawi, S., Orlowska, A., Booms, P. F., Sader, R. A., Miron R. J., Kirkpatrick, C. J., Choukroun, J., & Ghanaati, S. (2019). A low-speed centrifugation concept leads to cell accumulation and vascularization of solid platelet-rich fibrin: an experimental study in vivo. Platelets, 30(3),329-340.

Lee, C. H., Chang, S. H., Lin, Y. H., Liu, S-J., Wang, C-J., Hsu, M-Y., Hung, K-C., Yeh, Y-H., Chen, W-J., Hsieh, I-C., &Wen, M-S. (2014). Acceleration of re-endothelialization and inhibition of neointimal formation using hybrid biodegradable nanofibrous rosuvastatin-loaded stents. Biomaterials, 35 (15), 4417-4427.

Lin, L.-L., Huang, C.-C., Chen, J.-S., Wu T.-C., Leu, H-B., Huang, P.-H., Chang,T.-T., Lin, S.-J., &Chenet, J.-W. (2014). Effects of pitavastatin versus atorvastatin on the peripheral endothelial progenitor cells and vascular endothelial growth factor in high-risk patients : a pilot prospective, double-blind, randomized study. Cardiovascular. Diabetology, 13, 111.

Miron, R. J., & Zhang, Y. (2018). Autologous Liquid Platelet Rich Fibrin: a novel drug delivery system. Acta Biomaterialia, 75, 35-51.

Moraes, L. A., Vaiyapuri, S., Sasikumar, P., Ali, M. S., Kriek, N., Sage, T., & Gibbins J. M. (2013). Antithrombotic actions of statins involve PECAM-1 signaling. Blood, 122 (18), p.3188-3196.

Pazzini, J. M. (2014). Plasma rico em plaquetas empregado na cirurgia reconstrutiva em coelhos (Oryctolagus cuniculus): Avaliação da exequibilidade da técnica, achados macroscópicos e histopatológicos. Dissertação 88f. Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias, Jaboticabal.

Pietrovski, E. F., Mascarenhas, L., Scheeren, E., & Neves, E. B. (2012). Úlceras do pé diabético podem ser tratadas com estatinas? Revista Brasileira de Farmácia, 93 (3), 279-282.

Pradeep, A. R., Karvekar, S., Nagpal, K., Patnaik, K., Guruprasad, C. N., & Kumaraswamy, K. M. (2015). Efficacy of Locally Delivered 1.2% Rosuvastatin gel to non-surgical treatment of patients with chronic periodontitis: a randomized, placebo controlled clinical trial. Journal of Periodontology, 86 (6), 738-745.

Pradeep, A. R., Karvekar, S., Nagpal, K., Patnaik, K., Raju, A., &Singh, P. (2016). Rosuvastatin 1,2 mg in situ gel combined with 1:1 mixture of autologous platelet-rich fibrin and porous hydroxyapatite bone graft in surgical treatment of mandibular class II furcation defects: a randomized clinical control trial. Journal of Periodontology, 87(1), 5-13.

Raposio, E., Libondi, G., Bertozzi, N., Grignaffini, E., & Grieco, M. (2015). Effects of topic simvastatin for the treatment of chronic vascular cutaneous ulcers: a pilot study. Journal of the American College of Clinical Wound Specialists, 7(1-3), 13-18.

Roy, S., Driggs, J., Elgharably, H., Biswas, S., Findley, M., Khanna, S., Gnyawali U., Bergdall, V. K., &Sem, C. K. (2011).Platelet-rich fibrin matrix improves wound angiogenesis via inducing endothelial cell proliferation. Wound Repair Regeneration., 19(6), 753-766.

Santos, F. N., Watanabe, M., Ferreira Vasco, C., Dezoti da Fonseca, C., & Fernandes Vattimo, M. F. (2014). Proteção antioxidante da estatina na lesão renal aguda induzida pela sepse. Revista da Escola de Enfermagem da USP, 48(5), 820-826.

Taniguchi, B. A. L., Breda, M. R. S., Nogueira, R. M. B., Nai, G. A., & Laposy, C. B. (2018). Fractal features of rabbit dermal wounds treated with platelet-rich plasma and topical rosuvastatin. International Journal of Clínical and Experimental Pathology, 11(11), 5241-5248.

Vendramin, F. S., Franco, D., & Franco, T. R. (2009). Método de obtenção do gel de plasma rico em plaquetas autólogo. Revista Brasileira de Cirugia Plástica, 24(2), 212-218.

Vendramin, F. S., Franco, D., & Franco, T. R. (2010). Utilização do plasma rico em plaquetas (PRP) autólogo em enxertos cutâneos em coelhos. Revista Brasileira de Cirugia Plastica, 25(4), 4-10.

Zhang, S., Luo, L., Wang, Y., Rahman, M., Lepsenyi, M., Syk, I., Jeppsson, B., & Thorlacius, H. (2012). Simvastatin Protects Against T Cell Immune Dysfunction in Abdominal Sepsis. Shock, 38 (5), 524-531.

Publicado

17/01/2021

Cómo citar

FERREIRA, N. G. de O.; VICENTINI, Y. F. .; BREDA, M. R. S. .; NOGUEIRA, R. M. B. .; NAI, G. A. .; SANTARÉM, C. L. El uso de biomateriales y rosuvastatina tópica aumenta la angiogénesis de heridas quirúrgicas en conejos. Research, Society and Development, [S. l.], v. 10, n. 1, p. e32510111327, 2021. DOI: 10.33448/rsd-v10i1.11327. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/11327. Acesso em: 25 nov. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas