Influencia de la iluminación constante, melatonina y geldanamicina bajo el testículo de ratones durante 60 días
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i2.12731Palabras clave:
Testículo; Melatonina; Iluminación Constante; Geldanamicina; Leydig.Resumen
La melatonina (N-acetil-5-metoxitriptamina) es una hormona secretada por la glándula pineal. En los hombres, la melatonina afecta la regulación reproductiva de tres formas principales. Primero, regula la secreción de GnRH y LH. En segundo lugar, regula la síntesis de testosterona y la maduración testicular. En tercer lugar, como un potente deputare de radicales libres que es tanto lipofílico como hidrofílico. El testículo de mamífero es un órgano susceptible a agentes tóxicos ambientales y terapéuticos que comprometen la espermatogénesis, el presente estudio tuvo como objetivo analizar la influencia de la iluminación constante, melatonina y geldanamicina debajo de los testículos de ratas tratadas durante 60 días. Los machos se dividieron aleatoriamente en 4 grupos, cada uno de los cuales constaba de 5 animales, que son: Grupo I - ratas de control (sin tratar); Grupo II: ratas sometidas a iluminación constante durante 60 días; Grupo III: ratas sometidas a iluminación constante durante 60 días y tratadas con melatonina durante 60 días; Grupo IV: ratas sometidas a iluminación constante durante 60 días, tratadas con melatonina y geldanamicina durante 60 días. La exposición a una iluminación constante afecta el desarrollo del epitelio germinal, así como la disminución del peso de los testículos, las células de Leydig, Sertoli y de testosterona. El tratamiento con melatonina y geldanamicina tiene un efecto protector contra la iluminación constante, reduciendo el daño testicular cuando se toman juntas.
Citas
Abercrombie, M. (1946). Estimation of nuclear population from microtome sections. The anatomical record, 94(2): 239-247.
Amann, R. P., & Almquist, J. O. (1962). Reproductive Capacity of Dairy Bulls. VIII. Direct and Indirect Measurement of Testicular Sperm Production1, 2, 3. Journal of Dairy Science, 45(6), 774-781.
Bahrami, N. et al. (2018). Evaluating the protective effects of melatonin on di (2-ethylhexyl) phthalate-induced testicular injury in adult mice. Biomedicine & Pharmacotherapy, v. 108, p. 515-523.
Brainard, G. C., et al. (1983). The suppression of pineal melatonin content and N-acetyltransferase activity by different light irradiances in the Syrian hamster: a dose-response relationship. Endocrinology, 113(1):293-6.
Cajochen, C., et al. (2003). Role of Melatonin in the Regulation of Human Circadian Rhythms and Sleep. Journal of Neuroendocrinology, 15(4): 432–437.
Deng, S. L., et al. (2018). Melatonin promotes sheep Leydig cell testosterone secretion in a co-culture with Sertoli cells. Theriogenology, 106: 170-177.
França, L. R., & RusselL, L. D. (1998). The testis of domestic mammals. In: Martínez-Garcia, F., & Regadera, J., (Ed.). Male reproduction: a multidisciplinary overview. España: Churchill Communications Europe España, 197- 219.
Frungieri, M., et al. (2017). Local actions of melatonin in somatic cells of the testis. International journal of molecular sciences, 18(6): 1170.
Heindel, J. J., et al. (1984). Role of the pineal in the alteration of hamster Sertoli cell responsiveness to FSH during testicular regression. J Androl, 5:211–5
Hinzpeter, A., et al. (2006). Association between Hsp90 and the ClC-2 chloride channel upregulates channel function. American Journal of Physiology-Cell Physiology, 290(1): C45-C56.
Ji, Y. L., Wang, H., Meng, C., et al. (2012). Melatonin alleviates cadmium-induced cellular stress and germ cell apoptosis in testes. J Pineal Res, 52:71–9.
Khaki, A., Fathiazad, F., Nouri, M., Khaki, A. A., Ozanci, C. C., et al (2009). The effects of ginger on spermatogenesis and sperm parameters of rat. Iran J Reprod Med., 7(1):7–12.
Kilarkaje, N. (2008). An aminoglycoside antibiotic gentamycin induces oxidative stress, reduces antioxidant reserve and impairs spermatogenesis in rats. J Toxicol Sci., 33(1):85–96
Kim, S. H., et al. (2014). Melatonin prevents gentamicin‐induced testicular toxicity and oxidative stress in rats. Andrologia, v. 46, n. 9, p. 1032-1040.
Koeberle, A, Shindou, H, Harayama, T, Yuki, K, & Shimizu, T. (2012). Polyunsaturated fatty acids are incorporated into maturating male mouse germ cells by lysophosphatidic acid acyltransferase 3. FASEB J, 26:169–80.
Legates, T. A., Fernandez, D. C., & Hattar, S. (2014). Light as a central modulator of circadian rhythms, sleep and affect. Nat Rev Neurosci. 15(7):443–54.
Li, C., & Zhou, X. (2015). Melatonin and male reproduction. Clinica Chimica Acta, 446: 175-180.
Li, C., & Zhou, X. (2015). Melatonin and male reproduction. Clinica Chimica Acta, 446, 175-180.
Lima, E. N., et al. (2013). Aspectos morfológicos, morfométricos e histoquímicos das gônadas de ratos com 30 e 60 dias de vida, nascidos de matrizes mantidas em iluminação constante. XIII JORNADA DE ENSINO, PESQUISA E EXTENSÃO – JEPEX 2013 – UFRPE, v. 52171, p. 900.
Maitra, S. K., & Ray, A. K. (2000). Role of light in the mediation of acute effects of a single afternoon melatonin injection on steroidogenic activity of testis in the rat. Journal of biosciences, 25(3): 253-256.
Moore, R. Y. (2013). The suprachiasmatic nucleus and the circadian timing system. Prog Mol Biol Transl Sci. 119:1–28.
Mylonas, C., & Kouretas, D. (1999). Lipid peroxidation and tissue damage. In Vivo,13: 295–309.
Pannocchia, M., et al. (2008). Estratégia efetiva de fixação do testículo de ratos Wistar para avaliar os parâmetros morfológicos e morfométricos do epitélio seminífero. ConScientiae Saúde, 7 (2): 227-233.
Pelletier M. R., & Vitale, L. M. (2003). Las uniones oclusivas de las barreras hematotisulares del testículo, epidídimo y conducto deferente. Sociedad Agentina de Andrologia. Dec., Buenos Aires, 12(4): 53-72.
Pereira A. S., Shitsuka D. M., Parreira F. J., & Shitsuka R. (2018). Metodologia da pesquisa científica). UAB/NTE/UFSM.
Prata Lima, M. F., et al. (2004). Effects of melatonin on the ovarian response to pinealectomy or continuous light in female rats: Similarity with polycystic ovary syndrome. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 37: 987–995.
Rao, M. V., & Bhatt, R. N. (2012). Protective effect of melatonin on fluoride-induced oxidative stress and testicular dysfunction in rats. Fluoride, 45:116–24. 585
Rashed, R. A., et al. (2010). Effects of two different doses of melatonin on 541 the spermatogenic cells of rat testes: a light and electron microscopic study. Egypt 542 J Histol, 33:819–35.
Reiter, R. J. (1991). Melatonin: the chemical expression of darkness. Mol Cell Endocrinol. 79(1-3):C153-8. Review.
Rocha, C. S., et al. (2015). Melatonin and male reproductive health: relevance of darkness and antioxidant properties. Current molecular medicine, 15(4): 299-31.
Semercioz, A., et al. (2018). Effects of melatonin on testicular tissue nitric oxide level and antioxidant enzyme activities in experimentally induced left varicocele. Neuro Endocrinol Lett 24:86–90.
Silva, G. A. (2018). Efeito da geldanamicina na infertilidade testicular: uma revisão de literatura. International Journal of Sex Research, 1:3
Vásquez-Ruiz, S., Maya-Barrios, J. A., Torres-Narváez, P., Vega-Martínez, B. R., Rojas-Granados, A., Escobar, C., & Angeles-Castellanos, M. (2014). A light/dark cycle in the NICU accelerates body weight gain and shortens time to discharge in preterm infants. Early Hum Dev. 90(9):535- 40.
Woodruff, D. Y., Horwitz, G., Weigel, J., & Nangia, A. K. (2010). Fertility preservation following torsion and severe ischemic injury of a solitary testis. Fertil Steril, 94, e4–5.
Wu, Y. H., & Swaab, D. F. (2005). The human pineal gland and melatonin in aging and alzheimer's disease. J Pineal Res., 38 (3), p. 145-152.
Yang, Y., et al. (2014). A review of melatonin as a suitable antioxidant against myocardial ischemia–reperfusion injury and clinical heart diseases. J Pineal Res., 57:357–66.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2021 Marcos Aurélio Santos da Costa; Anna Carolina Lopes de Lira; Geovanna Hachyra Facundo Guedes; José Anderson da Silva Gomes; Jennyfer Martins de Carvalho; Maria Luísa Figueira de Oliveira; Maria Eduarda da Silva; Bárbara Silva Gonzaga; Pedro Vinícius Silva Novis; Diana Babini Lapa de Albuquerque Britto; Bruno Mendes Tenório; Carina Scanoni Maia; Juliana Pinto de Medeiros; Fernanda das Chagas Angelo Mendes Tenorio
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.