Influência de constante iluminação, melatonina e geldanamicina sob o testículo de rato por mais de 60 dias
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i2.12731Palavras-chave:
Testículo; Melatonina; Iluminação constante; Geldanamicina; Leydig.Resumo
A melatonina (N-acetil-5-metoxitriptamina) é um hormônio secretado pela glândula pineal. Nos homens, a melatonina afeta a regulação reprodutiva de três maneiras principais. Primeiro, ele regula a secreção de GnRH e LH. Em segundo lugar, regula a síntese de testosterona e a maturação testicular. Terceiro, como um potente representante do radical livre que é tanto lipofílico quanto hidrofílico. O testículo de mamíferos é um órgão suscetível a agentes tóxicos ambientais e terapêuticos que comprometem a espermatogênese, o presente estudo teve como objetivo analisar a influência da iluminação constante, melatonina e geldanamicina sob o testículo de ratos tratados por 60 dias. Os machos foram divididos aleatoriamente em 4 grupos, cada um composto por 5 animais, sendo eles: Grupo I - ratos controle (não tratados); Grupo II - ratos submetidos à iluminação constante por 60 dias; Grupo III - ratos submetidos à iluminação constante por 60 dias e tratados com melatonina por 60 dias; Grupo IV - ratos submetidos à iluminação constante por 60 dias, tratados com melatonina e geldanamicina por 60 dias. A exposição à iluminação constante afeta o desenvolvimento do epitélio germinativo, bem como a diminuição do peso dos testículos, células de Leydig, Sertoli e testosterona. O tratamento com melatonina e geldanamicina tem um efeito protetor contra a iluminação constante, reduzindo os danos testiculares quando tomados em conjunto.
Referências
Abercrombie, M. (1946). Estimation of nuclear population from microtome sections. The anatomical record, 94(2): 239-247.
Amann, R. P., & Almquist, J. O. (1962). Reproductive Capacity of Dairy Bulls. VIII. Direct and Indirect Measurement of Testicular Sperm Production1, 2, 3. Journal of Dairy Science, 45(6), 774-781.
Bahrami, N. et al. (2018). Evaluating the protective effects of melatonin on di (2-ethylhexyl) phthalate-induced testicular injury in adult mice. Biomedicine & Pharmacotherapy, v. 108, p. 515-523.
Brainard, G. C., et al. (1983). The suppression of pineal melatonin content and N-acetyltransferase activity by different light irradiances in the Syrian hamster: a dose-response relationship. Endocrinology, 113(1):293-6.
Cajochen, C., et al. (2003). Role of Melatonin in the Regulation of Human Circadian Rhythms and Sleep. Journal of Neuroendocrinology, 15(4): 432–437.
Deng, S. L., et al. (2018). Melatonin promotes sheep Leydig cell testosterone secretion in a co-culture with Sertoli cells. Theriogenology, 106: 170-177.
França, L. R., & RusselL, L. D. (1998). The testis of domestic mammals. In: Martínez-Garcia, F., & Regadera, J., (Ed.). Male reproduction: a multidisciplinary overview. España: Churchill Communications Europe España, 197- 219.
Frungieri, M., et al. (2017). Local actions of melatonin in somatic cells of the testis. International journal of molecular sciences, 18(6): 1170.
Heindel, J. J., et al. (1984). Role of the pineal in the alteration of hamster Sertoli cell responsiveness to FSH during testicular regression. J Androl, 5:211–5
Hinzpeter, A., et al. (2006). Association between Hsp90 and the ClC-2 chloride channel upregulates channel function. American Journal of Physiology-Cell Physiology, 290(1): C45-C56.
Ji, Y. L., Wang, H., Meng, C., et al. (2012). Melatonin alleviates cadmium-induced cellular stress and germ cell apoptosis in testes. J Pineal Res, 52:71–9.
Khaki, A., Fathiazad, F., Nouri, M., Khaki, A. A., Ozanci, C. C., et al (2009). The effects of ginger on spermatogenesis and sperm parameters of rat. Iran J Reprod Med., 7(1):7–12.
Kilarkaje, N. (2008). An aminoglycoside antibiotic gentamycin induces oxidative stress, reduces antioxidant reserve and impairs spermatogenesis in rats. J Toxicol Sci., 33(1):85–96
Kim, S. H., et al. (2014). Melatonin prevents gentamicin‐induced testicular toxicity and oxidative stress in rats. Andrologia, v. 46, n. 9, p. 1032-1040.
Koeberle, A, Shindou, H, Harayama, T, Yuki, K, & Shimizu, T. (2012). Polyunsaturated fatty acids are incorporated into maturating male mouse germ cells by lysophosphatidic acid acyltransferase 3. FASEB J, 26:169–80.
Legates, T. A., Fernandez, D. C., & Hattar, S. (2014). Light as a central modulator of circadian rhythms, sleep and affect. Nat Rev Neurosci. 15(7):443–54.
Li, C., & Zhou, X. (2015). Melatonin and male reproduction. Clinica Chimica Acta, 446: 175-180.
Li, C., & Zhou, X. (2015). Melatonin and male reproduction. Clinica Chimica Acta, 446, 175-180.
Lima, E. N., et al. (2013). Aspectos morfológicos, morfométricos e histoquímicos das gônadas de ratos com 30 e 60 dias de vida, nascidos de matrizes mantidas em iluminação constante. XIII JORNADA DE ENSINO, PESQUISA E EXTENSÃO – JEPEX 2013 – UFRPE, v. 52171, p. 900.
Maitra, S. K., & Ray, A. K. (2000). Role of light in the mediation of acute effects of a single afternoon melatonin injection on steroidogenic activity of testis in the rat. Journal of biosciences, 25(3): 253-256.
Moore, R. Y. (2013). The suprachiasmatic nucleus and the circadian timing system. Prog Mol Biol Transl Sci. 119:1–28.
Mylonas, C., & Kouretas, D. (1999). Lipid peroxidation and tissue damage. In Vivo,13: 295–309.
Pannocchia, M., et al. (2008). Estratégia efetiva de fixação do testículo de ratos Wistar para avaliar os parâmetros morfológicos e morfométricos do epitélio seminífero. ConScientiae Saúde, 7 (2): 227-233.
Pelletier M. R., & Vitale, L. M. (2003). Las uniones oclusivas de las barreras hematotisulares del testículo, epidídimo y conducto deferente. Sociedad Agentina de Andrologia. Dec., Buenos Aires, 12(4): 53-72.
Pereira A. S., Shitsuka D. M., Parreira F. J., & Shitsuka R. (2018). Metodologia da pesquisa científica). UAB/NTE/UFSM.
Prata Lima, M. F., et al. (2004). Effects of melatonin on the ovarian response to pinealectomy or continuous light in female rats: Similarity with polycystic ovary syndrome. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 37: 987–995.
Rao, M. V., & Bhatt, R. N. (2012). Protective effect of melatonin on fluoride-induced oxidative stress and testicular dysfunction in rats. Fluoride, 45:116–24. 585
Rashed, R. A., et al. (2010). Effects of two different doses of melatonin on 541 the spermatogenic cells of rat testes: a light and electron microscopic study. Egypt 542 J Histol, 33:819–35.
Reiter, R. J. (1991). Melatonin: the chemical expression of darkness. Mol Cell Endocrinol. 79(1-3):C153-8. Review.
Rocha, C. S., et al. (2015). Melatonin and male reproductive health: relevance of darkness and antioxidant properties. Current molecular medicine, 15(4): 299-31.
Semercioz, A., et al. (2018). Effects of melatonin on testicular tissue nitric oxide level and antioxidant enzyme activities in experimentally induced left varicocele. Neuro Endocrinol Lett 24:86–90.
Silva, G. A. (2018). Efeito da geldanamicina na infertilidade testicular: uma revisão de literatura. International Journal of Sex Research, 1:3
Vásquez-Ruiz, S., Maya-Barrios, J. A., Torres-Narváez, P., Vega-Martínez, B. R., Rojas-Granados, A., Escobar, C., & Angeles-Castellanos, M. (2014). A light/dark cycle in the NICU accelerates body weight gain and shortens time to discharge in preterm infants. Early Hum Dev. 90(9):535- 40.
Woodruff, D. Y., Horwitz, G., Weigel, J., & Nangia, A. K. (2010). Fertility preservation following torsion and severe ischemic injury of a solitary testis. Fertil Steril, 94, e4–5.
Wu, Y. H., & Swaab, D. F. (2005). The human pineal gland and melatonin in aging and alzheimer's disease. J Pineal Res., 38 (3), p. 145-152.
Yang, Y., et al. (2014). A review of melatonin as a suitable antioxidant against myocardial ischemia–reperfusion injury and clinical heart diseases. J Pineal Res., 57:357–66.
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