Evaluación in vitro de la actividad antimicrobiana y la capacidad de difusión de las soluciones utilizadas para la limpieza de oídos caninos
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i10.19285Palabras clave:
Actividad antimicrobiana; Limpiador de oídos canino; Agentes ceruminolíticos; Otitis externa.Resumen
La otitis es una afección común entre los perros y requiere un tratamiento adecuado. Dada la importancia de la otitis externa y el uso de productos para combatir esta condición, este estudio evaluó las capacidades antimicrobianas in vitro de seis soluciones comerciales de limpiadores de oídos (EC1 a EC6) y soluciones de ácido bórico 3%, ácido láctico 3%, 0.11 % de ácido salicílico, 0,5% de clorhexidina y 3% de propilenglicol contra Staphylococcus spp., Pseudomonas spp., Proteus spp. y Malassezia spp. También se evaluó la capacidad de difusión in vitro en cerumen sintético. Se seleccionaron perros con signos clínicos de otitis externa y se recolectaron muestras de los conductos auditivos externos. El estudio microbiológico se realizó para identificar los microorganismos que se utilizaron en el estudio. Se seleccionaron un ceruminolítico para uso humano y cinco soluciones comerciales utilizadas para la limpieza de oídos caninos en función de la diversidad de los componentes. Los resultados muestran una variación de la actividad antimicrobiana y la capacidad de difusión. El ácido láctico, la clorhexidina, EC1, EC2, EC4 y EC5 mostraron los mejores resultados para la inhibición del crecimiento microbiológico; El ácido bórico, el ácido salicílico, el propilenglicol y el EC6 tuvieron poco o ningún efecto sobre el crecimiento de microorganismos. Las CE probadas demostraron capacidad de difusión utilizando el SSC. EC1 fue la solución con las respuestas más significativas, tanto como agente antimicrobiano como en cuanto a capacidad de difusión. Entre los productos veterinarios comerciales probados, se encontró que EC4 tenía los mejores resultados.
Citas
Bannoehr, J., & Guardabassi, L. (2012). Staphylococcus pseudintermedius in the dog: Taxonomy, diagnostics, ecology, epidemiology and pathogenicity. Veterinary Dermatology, 23 (4), 1–16. doi:10.1111/j.1365-3164.2012.01046.x
Banovic, F., Bozic, F., & Lemo, N. (2013). In vitro comparison of the effectiveness of polihexanide and chlorhexidine against canine isolates of Staphylococcus pseudintermedius, Pseudomonas aeruginosa and Malassezia pachydermatis. Veterinary Dermatology, 24(4). doi:10.1111/vde.12048
Borio, S., Colombo, S., La Rosa, G., De Lucia, M., Damborg, P., & Guardabassi, L. (2015). Effectiveness of a combined (4% chlorhexidine digluconate shampoo and solution) protocol in MRS and non-MRS canine superficial pyoderma: A randomized, blinded, antibiotic-controlled study. Veterinary Dermatology, 26(5), 339-e72. doi:10.1111/vde.12233
Bugden, D. L. (2013). Identification and antibiotic susceptibility of bacterial isolates from dogs with otitis externa in Australia. Australian Veterinary Journal, 91 (1–2), 43–46. doi:10.1111/avj.12007
CLSI. (2009). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeasts. Clinical and Laboratory Standards Institute, M44-A2(Second Ed), 29(17).
CLSI. (2012). Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically ; Approved Standard — Ninth Edition. In Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standar- Ninth Edition (Vol. 32, Issue 2).
CLSI. (2017). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Clinical and Laboratory Standards Institute, Suplement(27th ed.), 282.
Grether-Beck, S., Felsner, I., Brenden, H., Kohne, Z., Majora, M., Marini, A., Jaenicke, T., Rodriguez-Martin, M., Trullas, C., & Hupe, M. (2012). Urea uptake enhances barrier function and antimicrobial defense in humans by regulating epidermal gene expression. Journal of Investigative Dermatology, 132 (6), 1561–1572.
Guardabassi, L., Loeber, M. E., & Jacobson, A. (2004). Transmission of multiple antimicrobial-resistant Staphylococcus intermedius between dogs affected by deep pyoderma and their owners. Veterinary Microbiology, 98 (1), 23–27. doi:10.1016/j.vetmic.2003.09.021
Guardabassi, Luca, Ghibaudo, G., & Damborg, P. (2010). In vitro antimicrobial activity of a commercial ear antiseptic containing chlorhexidine and Tris-EDTA. Veterinary Dermatology, 21 (3), 282–286. doi:10.1111/j.1365-3164.2009.00812.x
Humphries, R. M., Wu, M. T., Westblade, L. F., Robertson, A. E., Burnham, C.-A. D., Wallace, M. A., Burd, E. M., Lawhon, S., & Hindler, J. A. (2016). In vitro antimicrobial susceptibility of Staphylococcus pseudintermedius isolates of human and animal origin. Journal of Clinical Microbiology, 54 (5), 1391–1394.
Lloyd, D. H., Bond, R., & Lamport, I. (1998). Antimicrobial activity in vitro and in vivo of a canine ear cleanser. Veterinary Record, 25 (4), 111-2. doi: 10.1136/vr.143.4.111.
Lyskova, P., Vydrzalova, M., & Mazurova, J. (2007). Identification and antimicrobial susceptibility of bacteria and yeasts isolated from healthy dogs and dogs with otitis externa. Journal of Veterinary Medicine Series A: Physiology Pathology Clinical Medicine, 54 (10), 559–563. doi:10.1111/j.1439-0442.2007.00996.x
Marignac, G., Petit, J. Y., Jamet, J. F., Desquilbet, L., Petit, J. L., Woehrlé, F., Trouchon, T., Fantini, O., & Perrot, S. (2019). Double Blinded, Randomized and Controlled Comparative Study Evaluating the Cleaning Activity of Two Ear Cleaners in Client-Owned Dogs with Spontaneous Otitis Externa. Open Journal of Veterinary Medicine, 09 (06), 67–78. doi:0.4236/ojvm.2019.96006
Marrero, E. J., Silva, F. A., Rosario, I., Déniz, S., Real, F., Padilla, D., Díaz, E. L., & Acosta-Hernández, B. (2017). Assessment of in vitro inhibitory activity of hydrogen peroxide on the growth of Malassezia pachydermatis and to compare its efficacy with commercial ear cleaners. Mycoses, 60(10), 645–650. https://doi.org/10.1111/myc.12637
Mason, C. L., Steen, S. I., Paterson, S., & Cripps, P. J. (2013). Study to assess in vitro antimicrobial activity of nine ear cleaners against 50 Malassezia pachydermatis isolates. Veterinary Dermatology, 24 (3). doi:10.1111/vde.12024
Mehrotra, M., Wang, G., & Johnson, W. M. (2000). Multiplex PCR for detection of genes for Staphylococcus aureus enterotoxins, exfoliative toxins, toxic shock syndrome toxin 1, and methicillin resistance. Journal of Clinical Microbiology, 38 (3), 1032–1035.
Nalawade, T. M., Bhat, K., & Sogi, S. H. P. (2015). Bactericidal activity of propylene glycol, glycerine, polyethylene glycol 400, and polyethylene glycol 1000 against selected microorganisms. Journal of International Society of Preventive & Community Dentistry, 5 (2), 114–119. doi:10.4103/2231-0762.155736
Nuttall, T., & Cole, L. K. (2004). Ear cleaning: The UK and US perspective. Veterinary Dermatology, 15(2), 127–136. https://doi.org/10.1111/j.1365-3164.2004.00375.x
Oplustil, C. P., Zoccoli, C. M., Tobouti, N. R., & Sinto, S. I. (2000). Procedimentos básicos em microbiologia clínica. Sarvier, São Paulo.
Paterson, S. (2016). Topical ear treatment – options, indications and limitations of current therapy. Journal of Small Animal Practice, 57 (12), 668–678. doi:10.1111/jsap.12583
Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. J., & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da Pesquisa Científica. Santa Maria, Rio Grande do Sul: UFSM.
Quinn, P. J., Markey, B. K., Leonard, F. C., Hartigan, P., Fanning, S., & FitzPatrick, E. S. (2011). Veterinary microbiology and microbial disease. Chichester, West Sussex, UK : Wiley-Blackwell.
Rafferty, R., Robinson, V. H., Harris, J., Argyle, S. A., & Nuttall, T. J. (2019). A pilot study of the in vitro antimicrobial activity and in vivo residual activity of chlorhexidine and acetic acid/boric acid impregnated cleansing wipes. BMC Veterinary Research, 15 (1), 382. doi:10.1186/s12917-019-2098-z
Rojas, F. D., Córdoba, S. B., Ángeles, M. S., Zalazar, L. C., Fernández, M. S., Cattana, M. E., Alegre, L. R., Carrillo-Muñoz, A. J., & Giusiano, G. E. (2016). Antifungal susceptibility testing of Malassezia yeast: comparison of two different methodologies. Mycoses, 60 (2), 104–111. doi:10.1111/myc.12556
Sánchez-Leal, J., Mayós, I., Homedes, J., & Ferrer, L. (2006). In vitro investigation of ceruminolytic activity of various otic cleansers for veterinary use. Veterinary Dermatology, 17(2), 121–127. doi:10.1111/j.1365-3164.2006.00504.x
Sant’Anna Addor, F. A., Schalka, S., Cardoso Pereira, V. M., & Brandão Folino, B. (2009). Correlação entre o efeito hidratante da ureia em diferentes concentrações de aplicação: estudo clínico e corneométrico. Surgical & Cosmetic Dermatology, 1 (1), 5-9.
Sasaki, T., Tsubakishita, S., Tanaka, Y., Sakusabe, A., Ohtsuka, M., Hirotaki, S., Kawakami, T., Fukata, T., & Hiramatsu, K. (2010). Multiplex-PCR method for species identification of coagulase-positive staphylococci. Journal of Clinical Microbiology, 48 (3), 765–769. doi:10.1128/JCM.01232-09
Stahl, J., Mielke, S., Pankow, W. R., & Kietzmann, M. (2013). Ceruminal diffusion activities and ceruminolytic characteristics of otic preparations - an in-vitro study. BMC Veterinary Research, 9, 70. doi:10.1186/1746-6148-9-70
Steen, S. I., & Paterson, S. (2012). The susceptibility of Pseudomonas spp. isolated from dogs with otitis to topical ear cleaners. Journal of Small Animal Practice, 53 (10), 599–603. doi:10.1111/j.1748-5827.2012.01262.x
Swinney, A., Fazakerley, J., McEwan, N., & Nuttall, T. (2008). Comparative in vitro antimicrobial efficacy of commercial ear cleaners. Veterinary Dermatology, 19 (6), 373–379. doi:10.1111/j.1365-3164.2008.00713.x
Thickett, E., & Cobourne, M. T. (2009). New developments in tooth whitening. The current status of external bleaching in orthodontics. Journal of Orthodontics, 36 (3), 194–201.
Vassalli, L., Harris, D. M., Gradini, R., & Applebaum, E. L. (1988). Inflammatory effects of topical antibiotic suspensions containing propylene glycol in chinchilla middle ears. American Journal of Otolaryngology, 9 (1), 1–5.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2021 Carolina Boesel Scherer; Larissa Silveira Botoni; Kelly Moura Keller; Fernanda Morcatti Coura; Antônio Último de Carvalho; Adriane Pimenta da Costa-Val
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.
