Avaliação in vitro da atividade antimicrobiana e capacidade de difusão de soluções utilizadas para limpeza de ouvido em cães
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v10i10.19285Palavras-chave:
Atividade antimicrobiana; Agentes ceruminolíticos; Limpador de ouvido canino; Otite externa.Resumo
A otite é uma condição comum entre os cães e requer tratamento adequado. Dada a importância da otite externa e do uso de produtos para combater essa condição, este estudo avaliou a atividade antimicrobiana in vitro de seis soluções de limpeza de ouvido comerciais (EC1 a EC6) e soluções de ácido bórico 3%, ácido lático 3%, 0,11 % de ácido salicílico, 0,5% de clorexidina e 3% de propilenoglicol contra Staphylococcus spp., Pseudomonas spp., Proteus spp. e Malassezia spp. A capacidade de difusão in vitro em cerúmen sintético também foi avaliada. Cães com sinais clínicos de otite externa foram selecionados e amostras foram coletadas dos canais auditivos externos. O estudo microbiológico foi realizado para identificar os microrganismos das amostras coletadas e os microrganismos isolados foram utilizados no estudo. Um ceruminolítico para uso humano e cinco soluções comerciais para limpeza auricular canina foram selecionadas com base na diversidade dos componentes utilizados em cada fórmula. Os resultados mostram uma variação na atividade antimicrobiana e na capacidade de difusão dos limpadores de ouvido e seus compostos. Ácido láctico, clorexidina, EC1, EC2, EC4 e EC5 mostraram os melhores resultados para inibição do crescimento microbiano; ácido bórico, ácido salicílico, propilenoglicol e EC6 tiveram pouco ou nenhum efeito no crescimento do microrganismo. As soluções testadas demonstraram capacidade de difusão usando o SSC. EC1 foi a solução com as respostas mais significativas, tanto como agente antimicrobiano quanto em relação à capacidade de difusão. Entre os produtos veterinários comerciais testados, o EC4 apresentou os melhores resultados.
Referências
Bannoehr, J., & Guardabassi, L. (2012). Staphylococcus pseudintermedius in the dog: Taxonomy, diagnostics, ecology, epidemiology and pathogenicity. Veterinary Dermatology, 23 (4), 1–16. doi:10.1111/j.1365-3164.2012.01046.x
Banovic, F., Bozic, F., & Lemo, N. (2013). In vitro comparison of the effectiveness of polihexanide and chlorhexidine against canine isolates of Staphylococcus pseudintermedius, Pseudomonas aeruginosa and Malassezia pachydermatis. Veterinary Dermatology, 24(4). doi:10.1111/vde.12048
Borio, S., Colombo, S., La Rosa, G., De Lucia, M., Damborg, P., & Guardabassi, L. (2015). Effectiveness of a combined (4% chlorhexidine digluconate shampoo and solution) protocol in MRS and non-MRS canine superficial pyoderma: A randomized, blinded, antibiotic-controlled study. Veterinary Dermatology, 26(5), 339-e72. doi:10.1111/vde.12233
Bugden, D. L. (2013). Identification and antibiotic susceptibility of bacterial isolates from dogs with otitis externa in Australia. Australian Veterinary Journal, 91 (1–2), 43–46. doi:10.1111/avj.12007
CLSI. (2009). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeasts. Clinical and Laboratory Standards Institute, M44-A2(Second Ed), 29(17).
CLSI. (2012). Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically ; Approved Standard — Ninth Edition. In Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standar- Ninth Edition (Vol. 32, Issue 2).
CLSI. (2017). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. Clinical and Laboratory Standards Institute, Suplement(27th ed.), 282.
Grether-Beck, S., Felsner, I., Brenden, H., Kohne, Z., Majora, M., Marini, A., Jaenicke, T., Rodriguez-Martin, M., Trullas, C., & Hupe, M. (2012). Urea uptake enhances barrier function and antimicrobial defense in humans by regulating epidermal gene expression. Journal of Investigative Dermatology, 132 (6), 1561–1572.
Guardabassi, L., Loeber, M. E., & Jacobson, A. (2004). Transmission of multiple antimicrobial-resistant Staphylococcus intermedius between dogs affected by deep pyoderma and their owners. Veterinary Microbiology, 98 (1), 23–27. doi:10.1016/j.vetmic.2003.09.021
Guardabassi, Luca, Ghibaudo, G., & Damborg, P. (2010). In vitro antimicrobial activity of a commercial ear antiseptic containing chlorhexidine and Tris-EDTA. Veterinary Dermatology, 21 (3), 282–286. doi:10.1111/j.1365-3164.2009.00812.x
Humphries, R. M., Wu, M. T., Westblade, L. F., Robertson, A. E., Burnham, C.-A. D., Wallace, M. A., Burd, E. M., Lawhon, S., & Hindler, J. A. (2016). In vitro antimicrobial susceptibility of Staphylococcus pseudintermedius isolates of human and animal origin. Journal of Clinical Microbiology, 54 (5), 1391–1394.
Lloyd, D. H., Bond, R., & Lamport, I. (1998). Antimicrobial activity in vitro and in vivo of a canine ear cleanser. Veterinary Record, 25 (4), 111-2. doi: 10.1136/vr.143.4.111.
Lyskova, P., Vydrzalova, M., & Mazurova, J. (2007). Identification and antimicrobial susceptibility of bacteria and yeasts isolated from healthy dogs and dogs with otitis externa. Journal of Veterinary Medicine Series A: Physiology Pathology Clinical Medicine, 54 (10), 559–563. doi:10.1111/j.1439-0442.2007.00996.x
Marignac, G., Petit, J. Y., Jamet, J. F., Desquilbet, L., Petit, J. L., Woehrlé, F., Trouchon, T., Fantini, O., & Perrot, S. (2019). Double Blinded, Randomized and Controlled Comparative Study Evaluating the Cleaning Activity of Two Ear Cleaners in Client-Owned Dogs with Spontaneous Otitis Externa. Open Journal of Veterinary Medicine, 09 (06), 67–78. doi:0.4236/ojvm.2019.96006
Marrero, E. J., Silva, F. A., Rosario, I., Déniz, S., Real, F., Padilla, D., Díaz, E. L., & Acosta-Hernández, B. (2017). Assessment of in vitro inhibitory activity of hydrogen peroxide on the growth of Malassezia pachydermatis and to compare its efficacy with commercial ear cleaners. Mycoses, 60(10), 645–650. https://doi.org/10.1111/myc.12637
Mason, C. L., Steen, S. I., Paterson, S., & Cripps, P. J. (2013). Study to assess in vitro antimicrobial activity of nine ear cleaners against 50 Malassezia pachydermatis isolates. Veterinary Dermatology, 24 (3). doi:10.1111/vde.12024
Mehrotra, M., Wang, G., & Johnson, W. M. (2000). Multiplex PCR for detection of genes for Staphylococcus aureus enterotoxins, exfoliative toxins, toxic shock syndrome toxin 1, and methicillin resistance. Journal of Clinical Microbiology, 38 (3), 1032–1035.
Nalawade, T. M., Bhat, K., & Sogi, S. H. P. (2015). Bactericidal activity of propylene glycol, glycerine, polyethylene glycol 400, and polyethylene glycol 1000 against selected microorganisms. Journal of International Society of Preventive & Community Dentistry, 5 (2), 114–119. doi:10.4103/2231-0762.155736
Nuttall, T., & Cole, L. K. (2004). Ear cleaning: The UK and US perspective. Veterinary Dermatology, 15(2), 127–136. https://doi.org/10.1111/j.1365-3164.2004.00375.x
Oplustil, C. P., Zoccoli, C. M., Tobouti, N. R., & Sinto, S. I. (2000). Procedimentos básicos em microbiologia clínica. Sarvier, São Paulo.
Paterson, S. (2016). Topical ear treatment – options, indications and limitations of current therapy. Journal of Small Animal Practice, 57 (12), 668–678. doi:10.1111/jsap.12583
Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. J., & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da Pesquisa Científica. Santa Maria, Rio Grande do Sul: UFSM.
Quinn, P. J., Markey, B. K., Leonard, F. C., Hartigan, P., Fanning, S., & FitzPatrick, E. S. (2011). Veterinary microbiology and microbial disease. Chichester, West Sussex, UK : Wiley-Blackwell.
Rafferty, R., Robinson, V. H., Harris, J., Argyle, S. A., & Nuttall, T. J. (2019). A pilot study of the in vitro antimicrobial activity and in vivo residual activity of chlorhexidine and acetic acid/boric acid impregnated cleansing wipes. BMC Veterinary Research, 15 (1), 382. doi:10.1186/s12917-019-2098-z
Rojas, F. D., Córdoba, S. B., Ángeles, M. S., Zalazar, L. C., Fernández, M. S., Cattana, M. E., Alegre, L. R., Carrillo-Muñoz, A. J., & Giusiano, G. E. (2016). Antifungal susceptibility testing of Malassezia yeast: comparison of two different methodologies. Mycoses, 60 (2), 104–111. doi:10.1111/myc.12556
Sánchez-Leal, J., Mayós, I., Homedes, J., & Ferrer, L. (2006). In vitro investigation of ceruminolytic activity of various otic cleansers for veterinary use. Veterinary Dermatology, 17(2), 121–127. doi:10.1111/j.1365-3164.2006.00504.x
Sant’Anna Addor, F. A., Schalka, S., Cardoso Pereira, V. M., & Brandão Folino, B. (2009). Correlação entre o efeito hidratante da ureia em diferentes concentrações de aplicação: estudo clínico e corneométrico. Surgical & Cosmetic Dermatology, 1 (1), 5-9.
Sasaki, T., Tsubakishita, S., Tanaka, Y., Sakusabe, A., Ohtsuka, M., Hirotaki, S., Kawakami, T., Fukata, T., & Hiramatsu, K. (2010). Multiplex-PCR method for species identification of coagulase-positive staphylococci. Journal of Clinical Microbiology, 48 (3), 765–769. doi:10.1128/JCM.01232-09
Stahl, J., Mielke, S., Pankow, W. R., & Kietzmann, M. (2013). Ceruminal diffusion activities and ceruminolytic characteristics of otic preparations - an in-vitro study. BMC Veterinary Research, 9, 70. doi:10.1186/1746-6148-9-70
Steen, S. I., & Paterson, S. (2012). The susceptibility of Pseudomonas spp. isolated from dogs with otitis to topical ear cleaners. Journal of Small Animal Practice, 53 (10), 599–603. doi:10.1111/j.1748-5827.2012.01262.x
Swinney, A., Fazakerley, J., McEwan, N., & Nuttall, T. (2008). Comparative in vitro antimicrobial efficacy of commercial ear cleaners. Veterinary Dermatology, 19 (6), 373–379. doi:10.1111/j.1365-3164.2008.00713.x
Thickett, E., & Cobourne, M. T. (2009). New developments in tooth whitening. The current status of external bleaching in orthodontics. Journal of Orthodontics, 36 (3), 194–201.
Vassalli, L., Harris, D. M., Gradini, R., & Applebaum, E. L. (1988). Inflammatory effects of topical antibiotic suspensions containing propylene glycol in chinchilla middle ears. American Journal of Otolaryngology, 9 (1), 1–5.
Downloads
Publicado
Como Citar
Edição
Seção
Licença
Copyright (c) 2021 Carolina Boesel Scherer; Larissa Silveira Botoni; Kelly Moura Keller; Fernanda Morcatti Coura; Antônio Último de Carvalho; Adriane Pimenta da Costa-Val
Este trabalho está licenciado sob uma licença Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Autores que publicam nesta revista concordam com os seguintes termos:
1) Autores mantém os direitos autorais e concedem à revista o direito de primeira publicação, com o trabalho simultaneamente licenciado sob a Licença Creative Commons Attribution que permite o compartilhamento do trabalho com reconhecimento da autoria e publicação inicial nesta revista.
2) Autores têm autorização para assumir contratos adicionais separadamente, para distribuição não-exclusiva da versão do trabalho publicada nesta revista (ex.: publicar em repositório institucional ou como capítulo de livro), com reconhecimento de autoria e publicação inicial nesta revista.
3) Autores têm permissão e são estimulados a publicar e distribuir seu trabalho online (ex.: em repositórios institucionais ou na sua página pessoal) a qualquer ponto antes ou durante o processo editorial, já que isso pode gerar alterações produtivas, bem como aumentar o impacto e a citação do trabalho publicado.
