Desarrollo animal, histología hepatica y actividade antioxidante en músculo de zebrafish (Danio rerio) alimentado con aditivos naturales en la dieta
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i4.27326Palabras clave:
ABTS; DPPH; Extractos naturales; Fitoquímicos; Producción animal.Resumen
Este trabajo se llevó a cabo para evaluar el crecimiento animal, la histología hepática y los efectos antioxidantes en zebrafish alimentados con aditivos naturales en diferentes niveles. Los aditivos naturales estaban compuestos por extracto de Baccharis dracunculifolia, líquido de cáscara de anacardo (CNSL) y aceite esencial de clavo (CLEO). Los grupos fueron: CONT: dieta basal sin adición; CONB: adición de 50 g BHT/kg de ración; MIX1: adición de 50 g de aditivos naturales/kg de ración (60% B. dracunculifolia, 39% CNSL y 1% CLEO); MIX2: adición de 50 g de aditivos naturales/kg de ración (70% B. dracunculifolia, 29% CNSL y 1% CLEO); MIX3: adición de 50 g de aditivos naturales/kg de ración (90% B. dracunculifolia, 9% CNSL y 1% CLEO); y MIX4: adición de 50 g de aditivos naturales/kg de ración (99% B. dracunculifolia, 0,9% CNSL y 0,1% CLEO). La ganancia diaria promedio fue menor para los peces alimentados con la dieta MIX4. El efecto de las dietas se observó en la histología del hígado (P < 0,001), que fue mayor en los peces alimentados con dietas CONB y MIX4. La actividad antioxidante en la dieta evaluada por el ensayo ABTS fue mayor (P < 0,05) para los tratamientos con aditivos naturales. Asimismo, actividad antioxidante en músculo de zebrafish (P < 0,05). Así, la inclusión de 5% de aditivos naturales en la dieta compuesta por extracto de B. dracunculifolia, CNSL y CLEO mejoró la actividad antioxidante del músculo de zebrafish.
Citas
Bakkali, F., Averbeck, S., Averbeck, D., & Idaomar, M. (2008). Biological effects of essential oils - A review. Food and Chemical Toxicology. https://doi.org/10.1016/j.fct.2007.09.106
Bendary, E., Francis, R. R., Ali, H. M. G., Sarwat, M. I., & El Hady, S. (2013). Antioxidant and structure–activity relationships (SARs) of some phenolic and anilines compounds. Annals of Agricultural Sciences, 58(2), 173–181. https://doi.org/10.1016/j.aoas.2013.07.002
Bonin, E., Carvalho, V. M., Avila, V. D., Santos, N. C. A., Zanqueta, E. B., Lancheros, C. A.C., Previdelli, I. T. S., Nakamura, T. U., Filho, B. A. A., Prado, I.N. (2019). Baccharis dracunculifolia: Chemical constituents, cytotoxicity and antimicrobial activity. Lwt. 120 https://doi.org/10.1016/j.lwt.2019.108920
Campos, F.R., Bressan, J., Jasinski, V. C. G., Zuccolotto, T., Silva, L. E., & Cerqueira, L. B. (2016). Baccharis (Asteraceae): Chemical Constituents and Biological Activities. Chemistry & Biodiversity, 13(1), 1–17. https://doi.org/10.1002/cbdv.201400363
Capitani, C. D., Carvalho, A. C. L., Botelho, P. B., Carrapeiro, M. M., & Castro, I. A. (2009). Synergism on antioxidant activity between natural compounds optimized by response surface methodology. European Journal of Lipid Science and Technology. 111(11), 1100-1110. https://doi.org/10.1002/ejlt.200800258
Caro, M., Iturria, I., Santos, M. M., Pardo, M. A., Rainieri, S., Tueros, I., & Navarro, V. (2016). Zebrafish dives into food research: Effectiveness assessment of bioactive compounds. Food and Function. 7, no. 6 (2016): 2615-2623. https://doi.org/10.1039/c6fo00046k
Chakraborty, S. B., Horn, P., & Hancz, C. (2014). Application of phytochemicals as growth-promoters and endocrine modulators in fish culture. Reviews in Aquaculture. 6(1), 1-19. https://doi.org/10.1111/raq.12021
Craig, P. M., & Moon, T. W. (2011). Fasted zebrafish mimic genetic and physiological responses in mammals: A model for obesity and diabetes? Zebrafish. 8(3), 109-117. https://doi.org/10.1089/zeb.2011.0702
Driemeier, D., Cruz, C., & Loretti, A. (2000). Baccharis megapotamica var weirii poisoning in Brazilian cattle. Veterinary and Human Toxicology. 42(4), 220-221.
Fukuda, M., Ohkoshi, E., Makino, M., & Fujimoto, Y. (2006). Studies on the constituents of the leaves of Baccharis dracunculifolia (Asteraceae) and their cytotoxic activity. Chemical and Pharmaceutical Bulletin. 54(10), 1465-1468. https://doi.org/10.1248/cpb.54.1465
Jarvis, B. B., Wang, S., Cox, C., Rao, M. M., Philip, V., Varaschin, M. S., & Barros, C. S. (1996). Brazilian Baccharis toxins: Livestock poisoning and the isolation of macrocyclic trichothecene glucosides. Natural Toxins. 4(2), 58-71. https://doi.org/10.1002/19960402NT2
Khattak, F., Ronchi, A., Castelli, P., & Sparks, N. (2014). Effects of natural blend of essential oil on growth performance, blood biochemistry, cecal morphology, and carcass quality of broiler chickens. Poultry Science. 93(1), 132-137. https://doi.org/10.3382/ps.2013-03387
Kirkwood, J. S., Lebold, K. M., Miranda, C. L., Wright, C. L., Miller, G. W., Tanguay, R. L., Barton, C. L., Traber, G. M., Stevens, J. F. (2012). Vitamin C deficiency activates the purine nucleotide cycle in zebrafish. Journal of Biological Chemistry. 287(6), 3833-3841. https://doi.org/10.1074/jbc.M111.316018
Lewandowski, V., Sary, C., Campos, E., Oliveira, C., Ribeiro, R., & Vargas, L. (2019). Homeopathy improves production and hatching probability of zebrafish eggs. Latin American Journal of Aquatic Research, 47(4), 595–601. https://doi.org/10.3856/vol47-issue4-fulltext-2
Li, W., Hydamaka, A. W., Lowry, L., & Beta, T. (2009). Comparison of antioxidant capacity and phenolic compounds of berries, chokecherry and seabuckthorn. Central European Journal of Biology. 4(4), 499-506. https://doi.org/10.2478/s11535-009-0041-1
Makkar, H. P. S., Francis, G., & Becker, K. (2007). Bioactivity of phytochemicals in some lesser-known plants and their effects and potential applications in livestock and aquaculture production systems. Animal. 1(9), 1371-1391. https://doi.org/10.1017/S1751731107000298
Maqsood, S., Benjakul, S., & Shahidi, F. (2013). Emerging Role of Phenolic Compounds as Natural Food Additives in Fish and Fish Products. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 53(2), 162-179. https://doi.org/10.1080/10408398.2010.518775
Martin, K. R. (2009). Polyphenols as dietary supplements: A double-edged sword. Nutrition and Dietary Supplements. 2, 1-12. https://doi.org/10.2147/nds.s6422
Menke, A. L., Spitsbergen, J. M., Wolterbeek, A. P. M., & Woutersen, R. A. (2011). Normal anatomy and histology of the adult zebrafish. Toxicologic Pathology. 39(5), 759-775. https://doi.org/10.1177/0192623311409597
Miranda, C. D., Godoy, F. A., & Lee, M. R. (2018). Current status of the use of antibiotics and the antimicrobial resistance in the chilean salmon farms. Frontiers in Microbiology. 9, 1284. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.01284
Monteschio, J.O., Souza, K. A., Vital, A. C. P., Guerrero, A., Valero, M. V., Kempinski, E. M. B. C., Barcelos, V. C., Nascimento, K. F., Prado, I. N. (2017). Clove and rosemary essential oils and encapsuled active principles (eugenol, thymol and vanillin blend) on meat quality of feedlot-finished heifers. Meat Science. 130, 50-57. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2017.04.002
Muhl, A., & Liebert, F. (2007). Growth and parameters of microflora in intestinal and faecal samples of piglets due to application of a phytogenic feed additive. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 91(9‐10), 411-418. https://doi.org/10.1111/j.1439-0396.2006.00668.x
Mulla, M., Ahmed, J., Al-Attar, H., Castro-Aguirre, E., Arfat, Y. A., & Auras, R. (2017). Antimicrobial efficacy of clove essential oil infused into chemically modified LLDPE film for chicken meat packaging. Food Control. 22(12), 2052-2058. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2016.09.018
Naiel, M. A. E., Ismael, N. E. M., Negm, S. S., Ayyat, M. S., & Al-Sagheer, A. A. (2020). Rosemary leaf powder–supplemented diet enhances performance, antioxidant properties, immune status, and resistance against bacterial diseases in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. 526, 735370. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2020.735370
Raccach, M. (1984). the Antimicrobial Activity of Phenolic Antioxidants in Foods: a Review. Journal of Food Safety, 6(3), 141–170. https://doi.org/10.1111/j.1745-4565.1984.tb00479.x
Re, R., Pellegrini, N., Proteggente, A., Pannala, A., Yang, M., & Rice-Evans, C. (1999). Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biology and Medicine. 26(9-10), 1231-1237. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3
Rodrigues, D. M., Souza, M. C., Arruda, C., Pereira, R. A. S., & Bastos, J. K. (2020). The Role of Baccharis dracunculifolia and its Chemical Profile on Green Propolis Production by Apis mellifera. Journal of Chemical Ecology. 46(2), 150-162. https://doi.org/10.1007/s10886-019-01141-w
Sangwan, N. S., Farooqi, A. H. A., Shabih, F., & Sangwan, R. S. (2001). Regulation of essential oil production in plants. Plant Growth Regulation. 34(1), 3-21. https://doi.org/10.1023/A:1013386921596
Santos, I. V. F., Duarte, J. L., Fernandes, C. P., Keita H., Amado, J. R. R., Moyado, J. A. V, Navarrete, A., Carvalho, J. C. T. (2016). Use of zebrafish (Danio rerio) in experimental models for biological assay with natural products. African Journal of Pharmacy and Pharmacology. 10(42), 883-891. https://doi.org/10.5897/ajpp2016.4662
Santurio, J. M., Santurio, D. F., Pozzatti, P., Moraes, C., Franchin, P. R., & Alves, S. H. (2007). Atividade antimicrobiana dos óleos essenciais de orégano, tomilho e canela frente a sorovares de Salmonella enterica de origem avícola. Ciencia Rural. 37(3), 803-808. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782007000300031
Souza, K. A., Monteschio, J. O., Mottin, C., Ramos, T. R., Pinto, L. A. M., Eiras, C. E., Guerrero, A., Prado, I. N. (2019). Effects of diet supplementation with clove and rosemary essential oils and protected oils (eugenol, thymol and vanillin) on animal performance, carcass characteristics, digestibility, and ingestive behavior activities for Nellore heifers finished in feedl. Livestock Science. 220, 190-195. https://doi.org/10.1016/j.livsci.2018.12.026
Stegelmeier, B. L., Sani, Y., & Pfister, J. A. (2009). Bacchavis pteronioides toxicity in livestock and hamsters. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 21(2), 208-213. https://doi.org/10.1177/104063870902100205
Sullivan, C., & Kim, C. H. (2008). Zebrafish as a model for infectious disease and immune function. Fish and Shellfish Immunology. 25(4), 341-350. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2008.05.005
Trevisan, M. T. S., Pfundstein, B., Haubner, R., Würtele, G., Spiegelhalder, B., Bartsch, H., & Owen, R. W. (2006). Characterization of alkyl phenols in cashew (Anacardium occidentale) products and assay of their antioxidant capacity. Food and Chemical Toxicology. 44(2), 188-197. https://doi.org/10.1016/j.fct.2005.06.012
Ulloa, P. E., Medrano, J. F., & Feijo, C. G. (2014). Zebrafish as animal model for aquaculture nutrition research. Frontiers in Genetics. 5, 313. https://doi.org/10.3389/fgene.2014.00313
Varaschin, M. S., & Alessi, A. C. (2003). Poisoning of mice by Baccharis coridifolia: An experimental model. Veterinary and Human Toxicology. 45(1), 42-44.
Veiga, R. S., De Mendonça, S., Mendes, P. B., Paulino, N., Mimica, M. J., Lagareiro Netto, A. A., Lira, I. S., López, B. G. C., Negrão V., Marcucci, M. C. (2017). Artepillin C and phenolic compounds responsible for antimicrobial and antioxidant activity of green propolis and Baccharis dracunculifolia DC. Journal of Applied Microbiology. 122(4), 911-920. https://doi.org/10.1111/jam.13400
Vilella, A. J., Severin, J., Vidal, A. U., Heng, L., Durbin, R., & Birney, E. (2008). EnsemblCompara GeneTrees: Complete, duplication-aware phylogenetic trees in vertebrates. Genome Research, 19(2), 327–335. https://doi.org/10.1101/gr.073585.107
Vital, A. C. P., Guerrero, A., Monteschio, J. O., Valero, M. V., Carvalho, C. B., Abreu Filho, B. A., Madrona, G. S., Prado, I. N. (2016). Effect of edible and active coating (with rosemary and oregano essential oils) on beef characteristics and consumer acceptability. PLoS ONE. 11(8), e0160535. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0160535
Zellmer, S., Heck, W. S., Godoy, P., Weng, H., Meyer, C., Lehmann, T., Sparna, T., Schormann, W., Hammad, S., Kreutz, C., Gebhardt, R. (2010). Transcription factors ETF, E2F, and SP-1 are involved in cytokine-independent proliferation of murine hepatocytes. Hepatology. 52(6), 2127-2136. https://doi.org/10.1002/hep.23930.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2022 Tatiane Rogelio Ramos; Kennyson Alves Souza; Vanessa Lewandowski ; Rodolpho Martin do Prado; Mariana Garcia Ornaghi; Ana Carolina Pelaes Vital; Luiz Fernando de Souza Alves; Ricardo Pereira Ribeiro; Ivanor Nunes Prado
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución 4.0.
Los autores que publican en esta revista concuerdan con los siguientes términos:
1) Los autores mantienen los derechos de autor y conceden a la revista el derecho de primera publicación, con el trabajo simultáneamente licenciado bajo la Licencia Creative Commons Attribution que permite el compartir el trabajo con reconocimiento de la autoría y publicación inicial en esta revista.
2) Los autores tienen autorización para asumir contratos adicionales por separado, para distribución no exclusiva de la versión del trabajo publicada en esta revista (por ejemplo, publicar en repositorio institucional o como capítulo de libro), con reconocimiento de autoría y publicación inicial en esta revista.
3) Los autores tienen permiso y son estimulados a publicar y distribuir su trabajo en línea (por ejemplo, en repositorios institucionales o en su página personal) a cualquier punto antes o durante el proceso editorial, ya que esto puede generar cambios productivos, así como aumentar el impacto y la cita del trabajo publicado.
