Desinfestacíon, propagación in vitro y subcultivo de Pereskia aculeata Mill

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v11i13.35548

Palabras clave:

Ácido 1-naftalenoacético; 6-bencilaminopurina; Segmento nodal; Carbón activado; Ora-pro-nóbis.

Resumen

El objetivo de este trabajo fue evaluar la desinfestación, propagación in vitro y subcultivo de ora-pro-nóbis. En el primer experimento, los explantes fueron desinfestados con diferentes concentraciones de hipoclorito de sodio (2%, 4%, 6%). En el segundo, se propagaron 600 segmentos nodales bajo diferentes concentraciones de medio MS (MS, MS/2, MS/4) y combinaciones de fitorreguladores: 1) ANA (0.5μM) + BAP (0.5μM); 2) ANA (0,5 μM) + BAP (1,0 μM); 3) ANA (0,5 μM) + BAP (1,5 μM); 4) ANA (0,5 μM) + BAP (2,0 μM); 5) ANA (0,5 μM), con y sin adición de carbón activado. En el tercero, se realizó un subcultivo en medio MS a partir de los callos desarrollados en el segundo experimento, sometidos a tres tratamientos: T1 - ANA (2μM) + BAP (4μM); T2 - ANA (0,1 μM) + BAP (1 μM) y T3 - ANA (0,5 μM). La concentración de 4% de NaClO fue más eficientes, presentando 5% de contaminación. Las mayores tasas de multiplicación de callos se observaron en medio MS/2 sin adición de carbón vegetal, suplementado con ANA 0,5 μM y diferentes concentraciones de BAP (1,0 μM, 1,5 μM y 2,0 μM) con medias de 0,85 y 0,80 callos por tratamiento. En el 47,16% de los explantes hubo contaminación fúngica y bacteriana y en el 23,5% oxidación. Existe la necesidad de desarrollar protocolos para el establecimiento de ora-pro-nóbis in vitro como, por ejemplo, alternativas para el control de oxidación, contaminación y concentraciones adecuadas de reguladores de crecimiento.

Citas

Aloufa, M. A. I. (2007). Enraizamento in vitro de plantas lenhosas: dificuldades e soluções. Revista Brasileira de Horticultura Ornamental, 13, 1994-1952.

Ângulo-Bejarano, P. I., & Paredes-López, O. (2011). Development of a regeneration protocol through indirect organogenesis in prickly pear cactus (Opuntia fícus-indica (L.) Mill). Scientia Horticulturae, 128(1), 283-288.

Basra, A. S. (2000). Plant Growth Regulators in Agriculture and horticulture: their role and commercial uses. 262p.

Botrel, N., Madeira, N. R., Mello, R. A. de. C., & Amaro, G. B. (2017). Hortaliças não convencionais/hortaliças tradicionais – ora-pro-nóbis. Folder Embrapa Hortaliças.

Castro, T. C. (2015). Produção de plantas e metabólitos de Cleome dendroides Schult. & Schult. f. (Cleomaceae) utilizando diferentes sistemas de cultivo in vitro. [Tese de Doutorado, Universidade do Estado do Rio de Janeiro]. 228p.

Chornobrov, O., & Bilous, S. (2021). In vitro plant regeneration of Christmas cactus ((Haw.) Moran) by indirect morphogenesis. Folia Forestalia Polonica. 63, 68–73.

Cid, L. P. B., & Teixeira, J. B. (2010). Cultivo in vitro de Plantas. Embrapa Informação Tecnológica. 325p.

Cordeiro, L. S., Simões-Gurgel, C., & Albarello, N. (2015). Multiplication and cryopreservation of adventitious roots of Cleome rosea Vahl. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant, 51(3), 249-257.

del Socorro Santos-Díaz, M., Elizalde-Rodríguez, C., & de Lourdes SantosDíaz, M. (2006). Effect of coconut water, darkness and auxins on morphogenesis of Ariocarpus kotschoubeyanus (Cactaceae). Bradleya 2006, 83–88.

Dill, L. (2014). Estratégias de Micropropagação de Calibrachoa sellowiana (Sendtn.) Wijsman e Rosmarinus officinalis L. [Trabalho de Conclusão de Curso, Universidade Federal de Santa Catarina]. 37p.

Flora do Brasil. (2020). Jardim Botânico do Rio de Janeiro. < http://floradobrasil.jbrj.gov.br/ >.

García-Rubio, O., & Malda-Barrera, G. (2010). Micropropagation and reintroduction of the endemic Mammillaria mathildae (Cactaceae) to its natural habitat. HortScience 45, 934–938.

García-Saucedo, P. A., Valdez-Morales, M., Valverde, M. E., Cruz-Hernandez, A., & Paredes-Lopez, O. (2005). Plant regeneration of three Opuntia genotypes used as human food. Plant Cell Tissue and Organ Culture. 80, 215–219.

Giusti, P., Vitti, D., Fiocchetti, F., Colla, G., Saccardo, F., & Tucci, M. (2002). In vitro propagation of three endangered cactus species. Scientia Horticulturae. 95, 319–332.

Girão, L. V. C., Silva Filho, J. C., Pinto, E. B. P., & Bertolucci, S. K. V. (2003). Avaliação da Composição Bromatológica de ora-pro-nóbis. Horticultura Brasileira, 21(2), 1-4.

Grattapaglia, D., & Machado, M. A. (1998). Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Embrapa Serviço de Produção de Informação, 1, 183-260.

Guerra, M. P., Nodari, R. O., Fraga, H. P, F., Vieira, L. N., & Fritsche, Y. (2016). FIT5507 Biotecnologia I (Apostila v2016.1). Universidade Federal de Santa Catarina. 44p.

Hussain, A., Ahmed, I., Nazir, H., & Ullah, I. (2012). Plant Tissue Culture: Current Status and Opportunities. In: Recent Advances in Plant in vitro Culture. InTech.

Ivannikov, R., Lobova, O., Ivannikova, N., & Krasnienkova, I. (2021). Micropropagation and organogenesis of Astrophytum asterias (Zuccà Lem. (Cactaceae Juss.), Blossfeldia liliputiana Werderm and Strombocactus disciformis (DC. Britton & Rose. Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences. 11, e2201.

Legnaioli, S. (2021). O que são proteínas e quais suas funções. https://www.ecycle.com.br/7572-proteinas.html.

Madeira, R. N., Amaro, G. B., Melo, R. A. C., Botrel, N., & Rochinski, E. (2016). Cultivo de Ora-pro-nóbis (Pereskia) em Plantio Adensado sob Manejo de Colheitas Sucessivas. Embrapa Circular Técnica: 156, 20p.

Malda, G., Backhaus, R. A., & Martín, C. (1999). Alterations in growth and crassulacean acid metabolism (CAM) activity of in vitro cultured cactus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 58(1), 1-9.

Melo, N. F. (2002). Hormônios e Reguladores de Crescimento Vegetais. Embrapa Semi-Árido: I Seminário Coda de Nutrição Vegetal, 1-18.

Mercier, H. (2012). Auxinas. In: Kerbauy, G. B. Fisiologia Vegetal. 173-196.

Moraes, F. P., & Colla, L. M. (2006). Alimentos funcionais e nutracêuticos: definições, legislação e benefícios à saúde. Revista Eletrônica de Farmácia, 3(2), 109-122.

Moura, L. C., Titon, M., Fernandes, J. S. C., Santana, R. C., & Oliveira, M. L. R. (2012). Micropropagação de sucupira-preta por meio de gemas axilares. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 47(12), 1691-1698.

Murashige, T., & Skoog, F. (1962). Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum,15, 473-497.

Papafotiou, M., Balotis, G. N., Louka, P. T., & Chronopoulos, J. (2001). In vitro plant regeneration of Mammillaria elongata normal and cristate forms. Plant

Cell Tissue Organ Culture. 65, 163–167.

Pereira, G. A. (2011). Desinfestação e estabelecimento in vitro de explantes de bananeira ‘Grande Naine’ em diferentes concentrações de Hipoclorito de Sódio. Revista Brasileira de Fruticultura, Volume Especial, 22-226.

Poljuha, D., Balen, B., Bauer, A., Ljubeši,c, N., & Krsnik-Rasol, M. (2003). Morphology and ultrastructure of Mammillaria gracillis (Cactaceae) in vitro culture. Plant Cell Tissue Organ Culture. 75, 117–123.

Rocha, L. V., Souza Júnior, J. B. de, Gonçalves, R. G. da M., Ferreira, J. B. N., Araújo, J. S. de P., & Miranda, R. M. (2020). Indução de enraizamento de ora-pro-nóbis (Pereskia aculeata Mill) sob diferentes concentrações de ácido indolbutírico. Nature and Conservation, 14(1), 101–106.

Rodriguez, O. J. L., & Ramirez-Pantoja, P. E. (2020). Micropropagation of selected materials of Opuntia ficus indica L through culture in vitro of areola. Journal of Applied Biotechnology and Bioengineering. 7, 121–126.

Santana, J. G. S., Fonseca, V. O., Costa, A. S., Arrigoni-Blank, M. F., & Blank, A. F. (2006). Influência de concentrações de BAP na micropropagação de manjericão (Ocimum basilicum L. - NSL6421-S2-05). Horticultura Brasileira. 24(1), 1-4.

Santos, R. B., Paiva, R., Paiva, P. D. O., & Santana, J. R. F. (2001). Problemas no cultivo in vitro. In: Cultura de Tecidos. 73-79.

Shukla, M. R., Jones, A. M. P., Sullivan, J. A., Liu, C., Gosling, S., & Saxena, P. K. (2012). In vitro conservation of American elm (Ulmus amerciana): potencial role of auxin metabolismo in sustained plant proliferation. Canadian Journal of Forest Research, 42(4), 686-697.

Silva, J. A. A., Nunes, D. G., Bertoldi, F. C., Palhano, M. N., & Komiekiewicz, N. L. K. (2010). Pão de ora-pro-nóbis: um novo conceito de alimentação funcional. Agropecuária Catarinense, Santa Catarina, 23(1), 35-37.

Souza, L. S., Fior, C. S., Souza, P. V. D., & Schwarz, S. F. (2011). Desinfestação de Sementes e Multiplicação in vitro de Guabijuzeiro a partir de segmentos apicais juvenis (Myrcianthes pungens O.Berg) D. Legrand. Revista Brasileira de Fruticultura, 33(3), 691-697.

Souza, M. R. de M. (2013). Ora-pro-nóbis (Pereskia aculeata Mill.) como alternativa promissora para produção de proteína: densidade de plantio e adubação nitrogenada. [Tese de Doutorado, Universidade Federal de Viçosa]. 87p.

Tofanelli, M. B. D., & Resende, S. G. (2011). Sistemas de condução na produção de folhas de ora-pro-nóbis. Pesquisa Agropecuária Tropical, 41(3), 466-469.

Wakhlu, A., & Bhau, B. S. (2000). Callus formation and plant regeneration from tubercles of Coryphantha elephantidens (Lem.) Lem. In Vitro Cellular Developmental Biology - Plant. 36, 211–214.

Publicado

13/10/2022

Cómo citar

BORDIGNON, K.; NAGEL, J. C. .; SOMMER, L. R. .; HEINZMANN, N. . Desinfestacíon, propagación in vitro y subcultivo de Pereskia aculeata Mill. Research, Society and Development, [S. l.], v. 11, n. 13, p. e499111335548, 2022. DOI: 10.33448/rsd-v11i13.35548. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/35548. Acesso em: 23 nov. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas