Fosfito de potasio y sus implicaciones en el control de Phytophthora plurivora en haya

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8824

Palabras clave:

Control alternativo; Fitopatología; Especies forestales.

Resumen

El haya (Fagus sylvatica) es una de las principales especies forestales de Europa y uno de los principales obstáculos para su cultivo es la aparición de enfermedades causadas por Phytophthora plurivora. Los estudios señalan a los fosfitos como una buena alternativa para el control de las enfermedades causadas por los oomicetos, sin embargo, los mecanismos de acción todavía se están estudiando. El objetivo del estudio fue evaluar el producto comercial basado en el fosfito de potasio, Phytogard® en el control de la enfermedad causada por P. plurivora en la haya, así como evaluar los posibles modos de acción del producto en el patógeno. Se utilizaron plántulas de haya rociadas con diferentes concentraciones de Phytogard® y posteriormente se inoculó el patógeno. Se evaluó la incidencia de la enfermedad, el consumo de agua y la cantidad de ADN del patógeno en los tejidos de la raíz del huésped. En los experimentos in vitro se determinó el crecimiento del micelio, la producción de la masa fresca del micelio y las zoosporas expuestas a Phytogard®. También se evaluaron la pérdida de electrolitos, la peroxidación de lípidos y la actividad de la enzima     β-1,3-glucanasa en el micelio. La morfología de las hifas tratadas o no con Phytogard® se observó en un microscopio electrónico de barrido. Phytogard®, en todas las concentraciones aplicadas, controla la enfermedad causada por P. plurivora de manera preventiva y también inhibe el crecimiento de los micelios y la producción de zoosporas. Además, modifica la morfología de las hifas, actúa sobre la permeabilidad de la membrana y la síntesis de la pared celular del micelio del patógeno.

Citas

Abeles, F. B. & Foence, L. E. (1970). Temporal and hormonal control of β-1,3-glucanase in Phaseolus vulgaris. Plant Physiology, 45, 305-400.

Adams, D. J. (2004). Fungal cell wall chitinases and glucanases. Microbiology, 150, 2029-2035.

Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology. (5a ed.) San Diego: Elsevier Academic Press.

Alexopoulos, C. J., Mims, C. W. & Blackwell, M. (1996). Introductory mycology. (4a ed.) New York: John Wiley.

Bedendo, I. P. (2011). Podridões de raiz e colo. In: Amorim, L.; Rezende, J.A.M. & Bergamin Filho (Ed.). Manual de Fitopatologia (pp. 443-451). São Paulo: Editora Agronômica Ceres.

Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72, 248-257.

Brasier, C. M. (2009). Phytophthora biodiversity: how many Phytophthora species are

there? In: Goheen, E. M. & Frankel, S. J. (Ed.). Phytophthoras in Forests and Natural Ecosystems (pp. 101-115). General Technical Report, 221. Albany: USDA Forest Service.

Cakmak, I. & Horst, W. J. (1991). Effect of aluminium on lipid peroxidation, superoxide dismutase, catalase and peroxidase activities in root tips of soybean. Physiology Plantarum, 83, 463-468.

Carswell, S. C., Grant, B. R., Theodorou, M. E., Harris, J., Niere, J. O. & Plaxton, W. C. (1996). The fungicide phosphonate disrupts the phosphate starvation response in Brassica nigra seedlings. Plant Physiology, 110, 105-110.

Cohen, M. D. & Coffey, M. D. (1986). Systemic fungicides and the control of oomycetes. Annual Review Phytopathology, 24, 311-338.

Dalio, R. J. D., Ribeiro Junior, P. M., Resende, M. L. V., Silva, A. C., Blumer, S., Pereira, V. F., Osswald, W. & Pascholati, S. F. (2012). O triplo modo de ação dos fosfitos em plantas. In: Luz WC (Org.). Revisão Anual de Patologia de Plantas – RAPP, 20 (pp. 206-242). Passo Fundo: Gráfica e Editora Padre Berthier dos Missionários da Sagrada Família.

Dalio, R. J. D., Fleischmann, F., Humez, M. & Wolfgang, O. (2014). Phosphite protects Fagus sylvatica seedlings towards Phytophthora plurivora via local toxicity, priming and facilitation of pathogen recognition. Plos One, 9 (1).

Dercks, W. & Buchenauer, H. (1987). Comparative studies on the mode of action of aluminium ethyl phosphite in four Phytophthora species. Crop Protection, 6, 82-89.

Dunstan, R. H., Smillie, R. H. & Grant, B. R. (1990). The effects of sub-toxic levels of phosphonate on the metabolism and potential virulence factors of Phytophthora palmivora. Physiological and Molecular Plant Pathology, 36, 205-220.

Farmer, E. E. & Mueller, M. J. (2013). ROS-mediated lipid peroxidation and RES-activated signaling. Annual Review of Plant Biology, 64, 429-450.

Frac, Fungicide resistance action committee (2019). Fungal control agents sorted by cross resistance pattern and mode of action. Recuperado de https://www.frac.info/docs/default-source/publications/frac-code-list/frac-code-list-2019.pdf?sfvrsn=98ff4b9a_2.

Guest, D. & Grant, B. R. (1991). The complex action of phosphonates as antifungal agents. Biological Review, 66, 159-187.

Hardy, G. E. S., Barret, S. & Shearer, B. L. (2001). The future of phosphate as a fungicide to control the soilborne plant pathogen Phytophthora cinnamomi in natural ecosystems. Australasian Plant Pathology, 30, 133-139.

Heath, R. L. & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloplasts. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry Biophysics, 125, 189-198.

Jung, T., Hudler, G., Jensen-Tracy, S., Griffiths, H., Fleischmann, F. & Osswald, W. (2005). Involvement of Phytophthora species in the decline of European beech in Europe and the USA. Mycologist, 19, 159-166.

Karnovsky, M. J. (1965). A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolality for use in electron-microscopy. Journal of Cell Biology, 27, 137-138A.

King, M., Reeve, W., Van der Hoek, M. B., Wiliams, N., Mccomb, J., O’Brien, P. A. & Hardy, G. E. S. J. (2010). Defining the phosphite-regulated transcriptome of the plant pathogen Phytophthora cinnamomi. Molecular Genetics & Genomics, 284, 425-435.

Leite, N. de O. G., Chagas, A. B., Costa, M. L. A. da, Farias, L. R. A., Cunha, A. L., Rocha, M. A. do N., Nascimento, C. M. A. do, Rocha Júnior, E. F. da, Maranhão, T. L. G. Q., Santos, A. F., dos & Silva, J. V. (2020). Influências das interações Patógeno- Hospedeiro- Meio Ambiente nas funções Biológicas das plantas. Research, Society and Development, 9 (10), e469108126. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8126.

Lenardon, M., Munro, C. A. & Gow, N. A. R. (2010). Chitin synthesis and fungal pathogenesis. Current Opinion in Microbiology, 13, 416-423.

Lüttringer, M., & De Cormis, L. (1985). Absorption, dégradation et transport du phosétyl-Al et de son metabolite chez la tomate. Agronomie, 5, 423-430.

Marzluf, G. A. (1997). Genetic regulation of nitrogen metabolism in the fungi. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 61 (1), 17-32.

Mills, A. A. S., Platt, H. W., & Hurta, R. A. R. (2004). Effect of salt compounds on mycelia growth, sporulation and spore germination of various potato pathogens. Postharvest Biology and Technology, 34, 341-350.

Orbovic, V., Syverstsen, J. P., Bright, D., Van Clief, D. L. & Graham, J. H. (2008). Citrus seedling growth and susceptibility to root rot as affected by phosphite and phosphate. Journal Plant Nutrition, 31, 774-787.

Packham, J. R., Thomas P. A., Atkinson, M. D. & Degen, T. (2012). Biological flora of the british isles: Fagus sylvatica. Journal of Ecology, 100, 1557-1608.

Roma, R. C. C. (2013). Fosfito de potássio no controle de doenças pós-colheita em bagas de uva ´Itália´ e possíveis mecanismos de ação à Rhizopus stolonifer. Tese de doutorado, Universidade de São Paulo, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba, SP.

Russell, P. E. (2002). Sensitivity baselines in fungicide resistance research and management. Cambridge UK: FRAC.

Schlink, K. (2010). Down-regulation of defense genes and resource allocation into infected roots as factors for compatibility between Fagus sylvatica and Phytophthora citricola. Functional & Integrative Genomics, 10, 253-264.

Schroetter, S., Angeles-Wedler, D., Kreuzig, R. & Schnug, E. (2006). Effects of phosphite on phosphorus supply and growth and growth of corn (Zea mays). Landbauforschung Volkenrodxe, 56, 87-99.

Schwan-Estrada, K. R. F., Stangarlin, J. R. & Pascholati, S. F. (2008). Mecanismos bioquímicos de defesa vegetal. In: Pascholati, S. F., Leite, B., Stangarlin, J. R. & Cia, P. Interação planta-patógeno: fisiologia, bioquímica e biologia molecular (pp. 227-248). Piracicaba: FEALQ.

Shearer, B. L. & Fairman, R. G. (2007). A stem injection of phosphite protects Banksia species and Eucalyptus marginata from Phytophthora cinnamomi for at least four years. Australasian Plant Pathology, 36, 78-86.

Stangarlin, J. R. & Leite, B. (2008). Alterações fisiológicas na suscetibilidade. In: Pascholati, S.F.; Leite, B.; Stangarlin, J.R.; Cia, P. Interação planta-patógeno: fisiologia, bioquímica e biologia molecular (pp. 117-226). Piracicaba: FEALQ.

Walters, D. R. & Bingham, I (2007). Influence of nutrition on disease development caused by fungal pathogens: Implications for plant disease control. Annual Applied Biology, 151, 307-324.

Weiland, J. E., Nelson, A. H. & Hudler G. W. (2010). Agressiveness of Phytophthora cactorum, P. citricola I, and P. plurivora from European beech. Plant Disease, 94, 1009-1014.

Wilkinson, C. J., Holmes, J. M., Dell, B., Tynan, K. M., Mccomb, J. A., Shearer, B. L., Colquhoun, I. J. & Hardy, G. E. S. (2001). Effect of phosphite on in planta zoospore production of Phytophthora cinnamomi. Plant Pathology, 5, 587-593.

Publicado

08/10/2020

Cómo citar

REZENDE, D. C.; BRANDÃO, D. F. R.; BRAND , S. C.; BLUMER, S.; PASCHOLATI, S. F.; MAFRA, N. M. Fosfito de potasio y sus implicaciones en el control de Phytophthora plurivora en haya. Research, Society and Development, [S. l.], v. 9, n. 10, p. e5629108824, 2020. DOI: 10.33448/rsd-v9i10.8824. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/8824. Acesso em: 26 nov. 2024.

Número

Sección

Ciencias Agrarias y Biológicas