Fosfito de potássio e suas implicações no controle de Phytophthora plurivora em faia

Autores

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8824

Palavras-chave:

Controle alternativo; Fitopatologia; Espécie florestal.

Resumo

A faia (Fagus sylvatica) é uma das principais espécies das florestas na Europa e um dos principais entraves no cultivo dessa espécie é a ocorrência de doença causada por Phytophthora plurivora. Trabalhos apontam os fosfitos como boa alternativa para o controle de doenças causadas por oomicetos, entretanto, os mecanismos de ação ainda estão sendo estudados. O objetivo do trabalho foi avaliar o produto comercial à base de fosfito de potássio, Phytogard® no controle da doença causada por P. plurivora em faia, bem como avaliar os possíveis modos de ação do produto no patógeno. Foram utilizadas mudas de faia aspergidas com diferentes concentrações de Phytogard® e, posteriormente, inoculadas com o patógeno. Foram avaliados a incidência da doença, o consumo de água e a quantidade de DNA do patógeno nos tecidos das raízes do hospedeiro. Nos experimentos in vitro, foi determinado o crescimento micelial, produção de massa fresca de micélio e de zoósporos expostos ao Phytogard®. Avaliou-se também a perda de eletrólitos, peroxidação de lipídios e a atividade da enzima β-1,3-glucanase do micélio. A morfologia das hifas tratadas ou não com o Phytogard® foram observadas em microscópio eletrônico de varredura. O Phytogard®, em todas as concentrações aplicadas controla de maneira preventiva a doença causada por P. plurivora e também inibe o crescimento micelial e a produção de zoósporos. Além disso, modifica a morfologia das hifas, atua na permeabilidade de membrana e na síntese de parede celular do micélio do patógeno.

Referências

Abeles, F. B. & Foence, L. E. (1970). Temporal and hormonal control of β-1,3-glucanase in Phaseolus vulgaris. Plant Physiology, 45, 305-400.

Adams, D. J. (2004). Fungal cell wall chitinases and glucanases. Microbiology, 150, 2029-2035.

Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology. (5a ed.) San Diego: Elsevier Academic Press.

Alexopoulos, C. J., Mims, C. W. & Blackwell, M. (1996). Introductory mycology. (4a ed.) New York: John Wiley.

Bedendo, I. P. (2011). Podridões de raiz e colo. In: Amorim, L.; Rezende, J.A.M. & Bergamin Filho (Ed.). Manual de Fitopatologia (pp. 443-451). São Paulo: Editora Agronômica Ceres.

Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72, 248-257.

Brasier, C. M. (2009). Phytophthora biodiversity: how many Phytophthora species are

there? In: Goheen, E. M. & Frankel, S. J. (Ed.). Phytophthoras in Forests and Natural Ecosystems (pp. 101-115). General Technical Report, 221. Albany: USDA Forest Service.

Cakmak, I. & Horst, W. J. (1991). Effect of aluminium on lipid peroxidation, superoxide dismutase, catalase and peroxidase activities in root tips of soybean. Physiology Plantarum, 83, 463-468.

Carswell, S. C., Grant, B. R., Theodorou, M. E., Harris, J., Niere, J. O. & Plaxton, W. C. (1996). The fungicide phosphonate disrupts the phosphate starvation response in Brassica nigra seedlings. Plant Physiology, 110, 105-110.

Cohen, M. D. & Coffey, M. D. (1986). Systemic fungicides and the control of oomycetes. Annual Review Phytopathology, 24, 311-338.

Dalio, R. J. D., Ribeiro Junior, P. M., Resende, M. L. V., Silva, A. C., Blumer, S., Pereira, V. F., Osswald, W. & Pascholati, S. F. (2012). O triplo modo de ação dos fosfitos em plantas. In: Luz WC (Org.). Revisão Anual de Patologia de Plantas – RAPP, 20 (pp. 206-242). Passo Fundo: Gráfica e Editora Padre Berthier dos Missionários da Sagrada Família.

Dalio, R. J. D., Fleischmann, F., Humez, M. & Wolfgang, O. (2014). Phosphite protects Fagus sylvatica seedlings towards Phytophthora plurivora via local toxicity, priming and facilitation of pathogen recognition. Plos One, 9 (1).

Dercks, W. & Buchenauer, H. (1987). Comparative studies on the mode of action of aluminium ethyl phosphite in four Phytophthora species. Crop Protection, 6, 82-89.

Dunstan, R. H., Smillie, R. H. & Grant, B. R. (1990). The effects of sub-toxic levels of phosphonate on the metabolism and potential virulence factors of Phytophthora palmivora. Physiological and Molecular Plant Pathology, 36, 205-220.

Farmer, E. E. & Mueller, M. J. (2013). ROS-mediated lipid peroxidation and RES-activated signaling. Annual Review of Plant Biology, 64, 429-450.

Frac, Fungicide resistance action committee (2019). Fungal control agents sorted by cross resistance pattern and mode of action. Recuperado de https://www.frac.info/docs/default-source/publications/frac-code-list/frac-code-list-2019.pdf?sfvrsn=98ff4b9a_2.

Guest, D. & Grant, B. R. (1991). The complex action of phosphonates as antifungal agents. Biological Review, 66, 159-187.

Hardy, G. E. S., Barret, S. & Shearer, B. L. (2001). The future of phosphate as a fungicide to control the soilborne plant pathogen Phytophthora cinnamomi in natural ecosystems. Australasian Plant Pathology, 30, 133-139.

Heath, R. L. & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in isolated chloplasts. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry Biophysics, 125, 189-198.

Jung, T., Hudler, G., Jensen-Tracy, S., Griffiths, H., Fleischmann, F. & Osswald, W. (2005). Involvement of Phytophthora species in the decline of European beech in Europe and the USA. Mycologist, 19, 159-166.

Karnovsky, M. J. (1965). A formaldehyde-glutaraldehyde fixative of high osmolality for use in electron-microscopy. Journal of Cell Biology, 27, 137-138A.

King, M., Reeve, W., Van der Hoek, M. B., Wiliams, N., Mccomb, J., O’Brien, P. A. & Hardy, G. E. S. J. (2010). Defining the phosphite-regulated transcriptome of the plant pathogen Phytophthora cinnamomi. Molecular Genetics & Genomics, 284, 425-435.

Leite, N. de O. G., Chagas, A. B., Costa, M. L. A. da, Farias, L. R. A., Cunha, A. L., Rocha, M. A. do N., Nascimento, C. M. A. do, Rocha Júnior, E. F. da, Maranhão, T. L. G. Q., Santos, A. F., dos & Silva, J. V. (2020). Influências das interações Patógeno- Hospedeiro- Meio Ambiente nas funções Biológicas das plantas. Research, Society and Development, 9 (10), e469108126. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8126.

Lenardon, M., Munro, C. A. & Gow, N. A. R. (2010). Chitin synthesis and fungal pathogenesis. Current Opinion in Microbiology, 13, 416-423.

Lüttringer, M., & De Cormis, L. (1985). Absorption, dégradation et transport du phosétyl-Al et de son metabolite chez la tomate. Agronomie, 5, 423-430.

Marzluf, G. A. (1997). Genetic regulation of nitrogen metabolism in the fungi. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 61 (1), 17-32.

Mills, A. A. S., Platt, H. W., & Hurta, R. A. R. (2004). Effect of salt compounds on mycelia growth, sporulation and spore germination of various potato pathogens. Postharvest Biology and Technology, 34, 341-350.

Orbovic, V., Syverstsen, J. P., Bright, D., Van Clief, D. L. & Graham, J. H. (2008). Citrus seedling growth and susceptibility to root rot as affected by phosphite and phosphate. Journal Plant Nutrition, 31, 774-787.

Packham, J. R., Thomas P. A., Atkinson, M. D. & Degen, T. (2012). Biological flora of the british isles: Fagus sylvatica. Journal of Ecology, 100, 1557-1608.

Roma, R. C. C. (2013). Fosfito de potássio no controle de doenças pós-colheita em bagas de uva ´Itália´ e possíveis mecanismos de ação à Rhizopus stolonifer. Tese de doutorado, Universidade de São Paulo, Escola Superior de Agricultura “Luiz de Queiroz”, Piracicaba, SP.

Russell, P. E. (2002). Sensitivity baselines in fungicide resistance research and management. Cambridge UK: FRAC.

Schlink, K. (2010). Down-regulation of defense genes and resource allocation into infected roots as factors for compatibility between Fagus sylvatica and Phytophthora citricola. Functional & Integrative Genomics, 10, 253-264.

Schroetter, S., Angeles-Wedler, D., Kreuzig, R. & Schnug, E. (2006). Effects of phosphite on phosphorus supply and growth and growth of corn (Zea mays). Landbauforschung Volkenrodxe, 56, 87-99.

Schwan-Estrada, K. R. F., Stangarlin, J. R. & Pascholati, S. F. (2008). Mecanismos bioquímicos de defesa vegetal. In: Pascholati, S. F., Leite, B., Stangarlin, J. R. & Cia, P. Interação planta-patógeno: fisiologia, bioquímica e biologia molecular (pp. 227-248). Piracicaba: FEALQ.

Shearer, B. L. & Fairman, R. G. (2007). A stem injection of phosphite protects Banksia species and Eucalyptus marginata from Phytophthora cinnamomi for at least four years. Australasian Plant Pathology, 36, 78-86.

Stangarlin, J. R. & Leite, B. (2008). Alterações fisiológicas na suscetibilidade. In: Pascholati, S.F.; Leite, B.; Stangarlin, J.R.; Cia, P. Interação planta-patógeno: fisiologia, bioquímica e biologia molecular (pp. 117-226). Piracicaba: FEALQ.

Walters, D. R. & Bingham, I (2007). Influence of nutrition on disease development caused by fungal pathogens: Implications for plant disease control. Annual Applied Biology, 151, 307-324.

Weiland, J. E., Nelson, A. H. & Hudler G. W. (2010). Agressiveness of Phytophthora cactorum, P. citricola I, and P. plurivora from European beech. Plant Disease, 94, 1009-1014.

Wilkinson, C. J., Holmes, J. M., Dell, B., Tynan, K. M., Mccomb, J. A., Shearer, B. L., Colquhoun, I. J. & Hardy, G. E. S. (2001). Effect of phosphite on in planta zoospore production of Phytophthora cinnamomi. Plant Pathology, 5, 587-593.

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Publicado

08/10/2020

Como Citar

REZENDE, D. C.; BRANDÃO, D. F. R.; BRAND , S. C.; BLUMER, S.; PASCHOLATI, S. F.; MAFRA, N. M. Fosfito de potássio e suas implicações no controle de Phytophthora plurivora em faia. Research, Society and Development, [S. l.], v. 9, n. 10, p. e5629108824, 2020. DOI: 10.33448/rsd-v9i10.8824. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/8824. Acesso em: 17 jul. 2024.

Edição

Seção

Ciências Agrárias e Biológicas