Surto de Francisella noatunensis subsp. orientalis em tilapias do Nilo juvenis cultivadas em tanque-redes na bacia do rio Araguari, Brasil

Autores

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v10i11.19332

Palavras-chave:

Granuloma; Lesão cutânea; Oreochromis niloticus.

Resumo

Objetivou-se neste estudo identificar e descrever a ocorrência de alterações anatomopatológicas e histopatológicas em tilápias do nilo juvenis, naturalmente infectadas por Francisella noatunensis subsp. orientalis (Fno). As tilápias do Nilo deste estudo foram cultivadas em tanques-rede na região da bacia do rio Araguari, Minas Gerais, Brasil, cuja taxa de mortalidade variou de 40 a 60%, das quais 64 amostras de peixes foram coletadas e enviadas para exame em laboratório. Na necropsia, foram observados nódulos semelhantes a granulomas no baço 59/64 (92,2%), rim 24/64 (37,5%) e fígado 09/64 (14,1%). Fno foi detectado em 98% (49/50) das amostras por PCR. Na análise dos resultados, observou-se forte correlação entre lesões externas e internas, uma vez que lesões granulomatosas presentes no baço e rim simultaneamente do mesmo animal, eram acompanhadas de úlceras cutâneas, sugerindo que a lesão cutânea está relacionada à presença de Fno nas tilápias, indicando assim, que este achado possa ser utilizado como ferramenta importante para o diagnóstico precoce da doença. Dessa forma, a alta prevalência de Fno observada nesta pesquisa permite caracterizar um surto na região. Ressalta-se que principalmente em relação ao consumo de carne de tilápia, embora existam espécies zoonóticas no grupo Francisella, o potencial zoonótico do Fno ainda não é conhecido e deve ser melhor estudado.

Referências

Andrade, A. S. (2020). Aquicultura brasileira: a visão do Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento a partir do sistema de registro geral da pesca e aquicultura. Research, Society and Development, 9(10), e2759108398-e2759108398. http://dx.doi.org/10.33448/rsd-v9i10.8398

Assis, G. B. N., Oliveira, T. F., Figueiredo, H. C., & Leal, C. A. G. (2016). Sensitivity and specificity of real-time PCR and bacteriological culture for francisellosis in farm-raised Nile tilapia (Oreochromis niloticus L). Journal of fish diseases, 40(6), 785-795. https://doi.org/10.1111/jfd.12559

Assis, G. B. N., Tavares, G. C., Pereira, F. L., Figueiredo, H. C. P., & Leal, C. A. G. (2017). Natural coinfection by Streptococcus agalactiae and Francisella noatunensis subsp. orientalis in farmed Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Journal of fish diseases, 40(1), 51-63. https://doi.org/10.1111/jfd.12493

Ayres, M., Ayres Júnior, M., Ayres, D. L., Santos, A. A. S., & Ayres, L. L. (2007). BioEstat 5.4: aplicações estatísticas nas áreas das ciências biológicas e médicas. 5. ed. Belém, PA: Publicações Avulsas do Mamirauá. Recuperado de https://www.researchgate.net/profile/Alex-De-Assis-Dos-Santos-2/publication/263608962_BIOESTAT_-_aplicacoes_estatisticas_nas_areas_das_Ciencias_Bio-Medicas/links/02e7e53b598e69ebfe000000/BIOESTAT-aplicacoes-estatisticas-nas-areas-das-Ciencias-Bio-Medicas.pdf

Balamurugan, S., Deivasigamani, B., Kumaran, S., Sakthivel, M., Rajsekar, T., & Priyadharsini, P. (2012). Melanomacrophage centers aggregation in P lineatus spleen as bioindicator of environmental change Asian Pacific. Journal of Tropical Disease, 2(S2), S635-S638. https://doi.org/10.1016/S2222-1808(12)60235-7

Baumgartner, W. A., Hawke, J. (2011). Bacterial diseases cause granulomas in fish: varied staining methods identify pathogens. Global Aquaculture, 14(4), 34-36.

Birkbeck, T. H., Feist, S. W., & Verner-Jeffreys, D. W. (2011). Francisella infections in fish and shellfish. J Fish Dis, 34(3), 173-187. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2010.01226.x

Colquhoun, D. J., & Duodu, S. (2011). Francisella infections in farmed and wild aquatic organisms. Veterinary Research, 42(1), 47. https://doi.org/10.1186/1297-9716-42-47

Costa, F. A. A., Leal, C. A. G., Leite, R. C., & Figueiredo, H. C. P. (2014). Genotyping of Streptococcus dysgalactiae strains isolated from Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L). Journal of fish diseases, 37(5), 463-469. https://doi.org/10.1111/jfd.12125

Crane, D. D., Griffin, A. J., Wehrly, T. D., & Bosio, C. M. (2013). B1a cells enhance susceptibility to infection with virulent Francisella tularensis via modulation of NK/NKT cell responses. The Journal of Immunology, 190(6), 2756-2766. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1202697

Dalebroux, Z. D., & Swanson, M. S. (2012). ppGpp: magic beyond RNA polymerase. Nature Reviews Microbiology, 10(3), 203-212. https://doi.org/10.1038/nrmicro2720

Delphino, M. K. V. C., Leal, C. A .G., Gardner, I. A., Assis, G. B. N., Roriz, G. D., Ferreira, F., ... Gonçalves, V. S. P. Seasonal dynamics of bacterial pathogens of Nile tilapia farmed in a Brazilian reservoir. Aquaculture, 498, 100-108. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2018.08.023

Duodu, S., Larsson, P., Sjoèdin, A., Soto, E., Forsman, M., & Colquhoun, D. J. (2012). Real-time PCR assays targeting unique DNA sequences of fish-pathogenic Francisella noatunensis subspecies noatunensis and orientalis. Diseases of Aquatic Organisms, 101(3), 225-234. https://doi.org/10.3354/dao02514

El-Sayed, A. F. M. (2006). Tilapia Culture., Wallingford, UK: CABI International Publishing. https://doi.org/10.1079/9780851990149.0000

Fernandez-Alarcon, M. F , Santana, A. M., Viadanna, P. H. O., Manzini, B. Natori, M. M., Ishikawa, C. M. & Tachibana L. (2019). Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged infection by Francisella noatunensis subsp. orientalis via an intragastric route protocol, Aquaculture, 510, 380-385. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2019.06.007

Ferullo, D. J., & Lovett, S. T. (2008). The stringent response and cell cycle arrest in Escherichia coli. PLoS genetics, 4(12), e1000300. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1000300

Hsieh, C. Y., Tung, M. C., Tu, C., Chang, C. D., & Tsai, S. S. (2006). Enzootics of visceral granulomas associated with Francisella-like organism infection in tilapia (Oreochromis spp). Aquaculture, 254, 129-138. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.03.044

Instituto Nacional de Meteorologia (INMET). (2017). Estação de Uberlândia Temperatura no período de 01 de Julho de 2017 a 31 de Julho de 2017. Recuperado de http://wwwinmetgovbr/portal/indexphp?r=home/page&page=rede_estacoes_auto_graf

Jatobá, A., Klipp, S. P., & Hoppe, R. (2016). Primeiro relato de Francisella noatunensis subespécie orientalis no sul do Brasil–relato de caso. Acta Veterinaria Brasilica, 10(2), 172-176. DOI: https://doi.org/10.21708/avb.2016.10.2.5512

Joshi, R., Almeida, D. B., Costa, A. R., Skaarud, A., Pádua Pereira, U., Knutsen, T. M., ... & Alvarez, A. T. (2021). Genomic selection for resistance to Francisellosis in commercial Nile tilapia population: genetic and genomic parameters, correlation with growth rate and predictive ability. Aquaculture, 537, 736515. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.736515

Ferreira Junior, J. A., Leonardo, A. S., Azevedo, J. P. M. V. B., Rodrigues, F. R., Nascimento, K. A., Macêdo, J. T. S. A., & Pedroso, P. M. O. (2018). Outbreak of Infection by Piscinoodinium pillulare and Trichodina spp. in Tambaquis (Colossoma macropomu), Pirapitingas (Piaractus brachypomus) and Tilapias (Oreochromis niloticus) in the Federal District, Brazil. Acta Scientiae Veterinariae, 46, 293. https://doi.org/10.22456/1679-9216.86827

Leal, C. A., Tavares, G. C., & Figueiredo, H. C. (2014). Outbreaks and genetic diversity of Francisella noatunensis subsp orientalis isolated from farm-raised Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in Brazil. Genetics and Molecular Research, 13(3), 5704-5712. https://doi.org/10.4238/2014.July.25.26

Lewis, J., & Soto, E. (2019). Gene expression of putative type VI secretion system (T6SS) genes in the emergent fish pathogen Francisella noatunensis subsp. orientalis in different physiochemical conditions. BMC microbiology, 19(1), 1-9. https://doi.org/10.1186/s12866-019-1389-7

Linnaeus, C. (1758). Systema Naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis. (10th revis. ed., vol. 1). Laurentius Salvius: Holmiae.

Neyrão, I. M. (2017). Mediação de respostas imunes e do sistema de defesa antioxidante pelo cortisol em pacu (Piaractus mesopotamicus). (Dissertação de Mestrado), Universidade Estadual Paulista, Jaboticabal. Recuperado de https://repositorio.unesp.br/bitstream/handle/11449/150261/neyrao_im_me_jabo_int.pdf?sequence=6&isAllowed=y

Noga, E. J. (2010). Fish disease: diagnosis and treatment. Hoboken, Nova Jersey: Blackwell Publishing.

Ortega, C., Mancera, G., Enriquez, R., Vargas, A. Martínez, S., ... Romero, A. (2016). First identification of Francisella noatunensis subsp orientalis causing mortality in Mexican tilapia Oreochromis spp. Diseases of Aquatic Organisms, 120(3), 205-215. https://doi.org/10.3354/dao02999

Pereira, A. S., Shitsuka, D. M., Parreira, F. J., & Shitsuka, R. (2018). Metodologia da pesquisa científica.

Pereira, F. L., Tavares, G. C., Carvalho, A. F., Rosa, J. C. C., Rezende, C. P., Leal, C. A. G., & Figueiredo, H. C. P. (2019). Effects of temperature changes in the transcriptional profile of the emerging fish pathogen Francisella noatunensis subsp. orientalis. Microbial pathogenesis, 133, 103548. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2019.103548

Qiang, L., Ningqiu. L., Xiaozhe. F., Qiandong. H., Ouqin, C., Lihui L., ... Shuqin, W. (2015). An outbreak or granulomatous inflammation associated with Francisella noatunensis subsp orientalis in farmed tilapia (Oreochromis niloticus x O aureus) in China Chinese. Chinese Journal of Oceanology and Limnology, 34(3), 460-466. https://doi.org/10.1007/s00343-016-4311-2

Raghiante, F. (2016). Francisella noatunensis orientalis em tilápias (Oreochromis niloticus) cultivadas em tanques-rede na bacia hidrográfica do rio Araguari – Minas Gerais. (Tese de Doutorado), Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho, Botucatu, SP.

Raghiante, F., Ferrasso, M. M., Rodrigues, M. V., Biondi, G. F., & Martins, O. A. (2017). Francisella spp. em tilápias no Brasil: uma revisão. Revista Brasileira de Higiene e Sanidade Animal, 11(1), 119-130. Recuperado de http://www.higieneanimal.ufc.br/seer/index.php/higieneanimal/article/view/385

Rodrigues, M. V., Francisco, C. J., David, G. S., Silva, R. J., Falcone-Dias, M. F., Araújo Júnior, J. P. (2018). Monitoring of Francisella noatunensis subsp. orientalis in farmed Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in Brazil. Aquaculture Internationa, 26(1), 127-138. http://dx.doi.org/10.1007/s10499-017-0204-4

Rosendo, J. S., & Rosa, R. (2012). Comparação do estoque de C estimado em pastagem e vegetação nativa de cerrado. Sociedade & Natureza, 24(2), 59-379. DOI: http://dx.doi.org/10.1590/S1982-45132012000200014

Sambrook, J. F., & Russell, D. W. (2001). Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd ed., New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press.

Sebastião, F. A., Pilarski, F., Kearney, M. T., & Soto, E. (2017). Molecular detection of Francisella noatunensis subsp orientalis in cultured Nile tilapia (Oreochromis niloticus L) in three Brazilian states. Journal of fish diseases, 40(11), 1-5. https://doi.org/10.1111/jfd.12636

Soto, E., Bowles, K., Fernandez, D., & Hawke, J. P. (2010). Development of a real-time PCR assay for identification and quantification of the fish pathogen Francisella noatunensis subsp orientalis. Dis Aquat Organ, 89(3),199-207. https://doi.org/10.3354/dao02204

Soto, E., Abrams, S. B., & Revan, F. (2012). Effects of temperature and salt concentration on Francisella noatunensis subsp. orientalis infections in Nile tilapia Oreochromis niloticus. Diseases of aquatic organisms, 101(3), 217-223. https://doi.org/10.3354/dao02533.

Soto, E., Brown, N., Gardenfors, Z. O., Yount, S., Revan, F., Francis, S., ... Camus, A. (2014). Effect of size and temperature at vaccination on immunization and protection conferred by a live attenuated Francisella noatunensis immersion vaccine in red hybrid tilápia. Fish & Shellfish Immunology, 41(2), 593-599. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2014.10.009

Tavares-Dias, M. (2009). Manejo e sanidade de peixes em cultivo. Macapá, AP: Embrapa Amapá. Recuperado de https://www.infoteca.cnptia.embrapa.br/handle/doc/353099

Trewavas, E. (1983). Tilapiine fishes of the genera Sarotherodon, Oreochromis and Danakilia. London, UK: Bulletin of the British Museum (Natural History). 1983.

Valladão, G. M. R., Alves, L. O., & Pilarski, F. (2016). Trichodiniasis in Nile tilapia hatcheries: diagnosis, parasite: host-stage relationship and treatment. Aquaculture, 451, 444-450.

https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2015.09.030

Valenti, W. C., Barros, H. P., Moraes-Valenti, P., Bueno, G. W., & Cavalli, R. O. (2021). Aquaculture in Brazil: past, present and future. Aquaculture Reports, 19, 100611. https://doi.org/10.1016/j.aqrep.2021.100611

Yusni, E., & Rambe, N. (2019). Identification of ectoparasites in Fry Tilapia (Oreochromis Niloticus) in Aquaculture Pond. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 260(1), 012110). https://doi.org/10.1088/1755-1315/260/1/012110

Zago, A. C., Franceschini, L., Garcia, F., Schalch, S. H. C., Gozi, K. S., & Silva, R. J. (2014). Ectoparasites of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) in cage farming in a hydroelectric reservoir in Brazil. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária, 23(2),171-178. https://doi.org/10.1590/S1984-29612014041

Downloads

Publicado

22/08/2021

Como Citar

CARREON , M. M. .; VIADANNA, P. H. de O. .; HIRANO, L. Q. L. .; FERNANDEZ-ALARCON, M. F. .; CASTRO, I. P. de .; JUNQUEIRA JUNIOR, D. G. .; SILVA, H. O. .; COSTA, F. A. A. .; LIMA, A. M. C. . Surto de Francisella noatunensis subsp. orientalis em tilapias do Nilo juvenis cultivadas em tanque-redes na bacia do rio Araguari, Brasil. Research, Society and Development, [S. l.], v. 10, n. 11, p. e40101119332, 2021. DOI: 10.33448/rsd-v10i11.19332. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/19332. Acesso em: 30 jun. 2024.

Edição

Seção

Ciências Agrárias e Biológicas