Obliteração sanguínea renal transitória como alternativa ao estudo da síndrome de isquemia-reperfusão renal em modelo animal

Autores

DOI:

https://doi.org/10.33448/rsd-v11i4.27338

Palavras-chave:

Catetos; Isquêmia-reperfusão; Modelo animal; Nefropatias.

Resumo

Este trabalho visa avaliar a viabilidade do método de obliteração sanguínea renal transitória como alternativa ao estudo da SIR renal em catetos (Tayassu tajacu), tendo em vista a provável similaridade morfofisiológica desta espécie com os humanos, uma vez que a mesma apresenta proximidade filogenética com o suíno doméstico. Foram utilizados oito animais, os quais foram submetidos a procedimento cirúrgico para indução de nefropatia isquêmica mediante clampeamento dos vasos renais com pinça vascular por 60 minutos. Foram colhidas amostras para mensuração sérica de ureia, creatinina e relação proteína / creatinina urinária – UPC, além de avaliação ultrassonográfica renal, ambos antes da indução e no 10º e 20º dias pós-indução, e coleta de material para exames histopatológicos. Os resultados demonstraram diferença nos níveis de resistividade renal entre os momentos avaliados, aumento de ecogenicidade renal com perda da relação córtico-medular e presença de discretas alterações glomerulares e várias alterações túbulointersticiais na análise histopatológica. Concluiu-se que o cateto caracteriza-se como um bom modelo experimental para estudos de nefropatias isquêmicas induzidas, contudo faz-se necessário a padronização de seus parâmetros bioquímicos renais, sorológicos e urinários em regime nutricional idêntico, haja visto a grande variabilidade de tais dados dentro da espécie.

Biografia do Autor

Matheus Levi Tajra Feitosa, Universidade Estadual do Maranhão

Possui graduação em Medicina Veterinária pela Universidade Estadual do Maranhão - UEMA (2006), Mestrado em Ciências Pela Universidade de São Paulo - USP (2008) e Doutorado em Ciências pela USP (2011). No mestrado trabalhou com modelo animal de osteonecrose da cabeça do fêmur em ovinos e terapia celular nas lesões estabelecidas. No doutorado, trabalhou com a lesão medular crônica em cães e a terapia celular com células tronco da polpa dentária humana. Possui experiência em modelos animais convencionais e não convencionais, anestesiologia veterinária, cirurgia veterinária geral e ortopédica, neuroanatomia e neurocirurgia veterinária. Possui ainda ampla experiência em cultivo celular e terapia celular. É pesquisador da área de terapia celular e células-tronco na terapia das afecções neurológicas. Atualmente é professor das disciplinas Anatomia Descritiva e Clínica Cirúrgica Veterinária (UEMA). Docente do Programa de Pós Graduação em Ciência Animal da Universidade Estadual do Maranhão (UEMA).

Lucilene dos Santos Silva, Universidade Federal do Piauí

Médica Veterinária graduada pela Universidade Federal do Piauí (UFPI).Possui Residência Médico-Veterinária na área de Patologia Animal (UFPI ), mestrado e doutorado em Ciência Animal, área de concentração: Sanidade e reprodução animal (UFPI). Pós-doutorado em Ciência Animal (PNPD/CAPES/UFPI) na área de Terapia Celular. Possui experiência na área de Medicina Veterinária, com ênfase em Patologia Animal e Patologia Clínica Veterinária. Professora adjunta do curso de Medicina Veterinária da UFPI, Campus Professora Cinobelina Elvas, Bom Jesus, nas áreas de Patologia Clínica Veterinária e Biofísica.

Maria Acelina Martins de Carvalho, Universidade Federal do Piauí

Médica Veterinária, Doutora na área de Medicina Veterinária - Anatomia dos Animais Domésticos (USP FMVZ - 1995), Estágio em Morfologia no Medical College of Ohio, USA. Professora Titular do Departamento de Morfofisiologia Veterinária da UFPI (1978-2020). Atualmente, aposentada, integra o Programa de Professor Sênior - PROSÊNIOR da UFPI, como Professora Sênior, vinculada ao Programa de Pós-Graduação em Tecnologias Aplicadas a Animais de Interesse Regional (PPGTAIR) CCA-UFPI. Orientadora de mestrado e doutorado no PPGTAIR- UFPI e PPG em Biotecnologia (PPGB) da Rede Nordeste de Biotecnologia - RENORBIO. Tem experiência em gestão científica, tecnológica e acadêmica: Pró-Reitora de Pesquisa e Pós-Graduação da UFPI (2004 a 2008), Coordenadora Estadual do PPGB / RENORBIO (2010 a 2013); Vice-Diretora do Centro de Ciências Agrárias UFPI (1997 a 2001) e Chefe do Departamento de Morfofisiologia Veterinária do CCA UFPI (1981 a 1984). Integrou a Câmara Técnica de Ciências Agrárias da FAPEPI, Divisão Técnica e Científica de Ciências da Vida do Núcleo de Inovação e Transferência de Tecnologia (NINTEC/UFPI); Comitê Institucional PIBITI, na área Tecnologia e Inovação para Agropecuária (2009 a 2017). Atua na área de Medicina Veterinária, Ciências Morfológicas, Biologia do Desenvolvimento, aspectos aplicados à Biotecnologia, Células-Tronco e Terapia Celular em modelos animais, desenvolvendo projetos científicos e tecnológicos voltados à regeneração de órgãos e de tecidos. É Líder / fundadora do Núcleo Integrado de Morfologia e Pesquisas com Células-tronco (NUPCelt/UFPI), Possui mais de 110 artigos publicados em periódicos com seletiva política editorial, 3 Registros de Softwares, 1 Patente concedida e mais 3 depósitos de patente, junto ao INPI.

Alcyone de Oliveira Paredes, Pesquisadora

Mestre em Saúde do Adulto e da Criança pela Universidade Federal do Maranhão - UFMA. Possui especialização em Saúde Materno-infantil pela Universidade Federal do Maranhão - UFMA e Citologia Clínica pela Sociedade Brasileira de Citologia Clínica - SBCC. Bacharel em Enfermagem pela Faculdade Santa Terezinha - CEST e Farmácia-Bioquímica pela Universidade Federal do Maranhão - UFMA. Tem experiência na área de Saúde Pública, Atenção Básica, envolvendo projetos de pesquisa na Atenção à Saúde do Adulto e Idoso e Atenção à Saúde da Mulher.

Renato dos Anjos Souza, Universidade Federal de Alagoas

Possui Graduação em Ciências Biológicas (Bacharelado) pela Universidade Federal de Pernambuco (UFPE), Licenciatura Plena em Ciências Biológicas e da Saúde pela Universidade Católica de Brasília - DF (UCB) e Graduação em Análise e Desenvolvimento de Sistemas (Tecnólogo) pela Universidade Paulista - DF (UNIP). Especialista Lato Sensu em Análises Clínicas, Toxicológicas e Bromatológicas com Docência Superior pela Faculdade Isaac Newton de Salvador - BA (FACINE). Atualmente é Mestrando em Ensino de Biologia pelo Programa ProfBio na Universidade Federal de Alagoas (UFAL).

Referências

Almeida, A. M. B., Nogueira Filho, S. L. G., Nogueira, S. S. C., & Munhoz, A. D. (2011). Aspectos hematológicos de catetos (Tayassu tajacuI) mantidos em cativeiro. Pesq. Vet. Bras. 31 (2):173-177.

Alves, M. A. R. (2004). Diagnóstico de Doença Renal Crônica: Avaliação de Proteinúria e Sedimento Urinário. J Bras Nefrol. 26(3).

Anders, H. J., & Ryu M. (2011) Renal microenvironments and macrophage phenotypes determine progression or resolution of renal inflammation and fibrosis. Kidney Int 80: 915–925.

Aparício, P. M. G. (2004). Fisiología reproductiva y desarrolo de métodos diagnósticos del estado reproductivo de La hembra de pecari de collar (Tayassu tajacu Linnaeus, 1758) de la Amazônia. Tese de Doutorado em Sanidade Animal, Facultat de Veterinària, Universitat Autònoma de Barcelona, Barcelona. 146p.

Associação Brasileira de Transplante de Órgãos (ABTO). (2013). Dados numéricos da doação de órgãos e transplantes realizados por estado e instituição no período: janeiro / setembro – 2013. Registro Brasileiro de Transplantes. Ano XIX.

BanaeI, S. 2015). Novel role of microRNAs in renal ischemia reperfusion injury. Renal failure, 37(7), 1073-1079.

Bezerra, D. O., Feitosa, M. L. T., Almeida, H. M., Costa, F. A. L., Braga, J. F. V., Souza, F.A. L., Alves, F.R., Pessoa, G. T., & Carvalho, M. A. M. (2014). Collared Pecary (tayassu tajacu) as a new model of renal ischemic injury inducedby clamping the renal artery. Acta Cirúrgica Brasileira. 29 (9), 560-572.

Bragato, N., Fioravanti, M. C. S., Braga. L. G., Reis, D. C., & Borges, N. C. (2015). Lesão renal tubular aguda em cães e gatos: fisiopatogenia e diagnóstico ultrassonográfico. Enciclopédia biosfera, Centro Científico Conhecer - Goiânia, v.11 n.22, p.

Costa, M. F. B. (2019). Efeito nefroprotetor do extrato alcoólico de Lippia sidoides em modelos de lesão renal aguda por isquemia/reperfusão. (DISSERTAÇÃO) – Universidade Federal do Ceará.

Farris, A. B., & Alpers, C. E. (2014). What is the best way to measure renal fibrosis?: A pathologist’s perspective. Kidney Int Suppl. 4(1): 9–15.

Forrester, S. D. (2008). Nefropatias e Ureteropatias. In Birchard, S. J., Sherding, R. G. Manual Saunders – Clínica de Pequenos Animais. 3ª ed., São Paulo: Editora Roca, p. 1001.

Galvez C. H., Montoya G. E., Nofre Sanchez P., Schettini Z. L, &Mendoza B. P. (2004). Sanidad em el manejo del sajino (Tayassu tajacu) en el trópico. VI Congresso International sobre Manejo de Fauna Silvestre en la Amazonia y Lationamerica, 5-10 septembre, Iquitos, Peru, p.38. (Resumo)

Grauer G. F. (2011). Proteinuria: measurement and interpretation. Top Companion Anim Med. 26(3):121-7.

Kezic, A. et al. (2016). Mitochondria-Targeted Antioxidants: Future Perspectives in Kidney Ischemia Reperfusion Injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, v. 2016, 12p.

Jeong, B. Y., Park, S., Cho, S., Yu, S., Lee, H. Y., Park, C. G., Kang, J., Jung, D., Park, M. H., Hwang, W., Yun, S., Jung, J., Yoon, S. (2018) TGF- b -mediated NADPH oxidase 4-dependent oxidative stress promotes colistin-induced acute kidney injury. Journal Antimicrob Chemother, 73, 962–972.

Konopka, C. L., Jurach, A., & Wender, O.C.B. (2007). Experimental model for the study of chronic renal ischemia in rats. Morphologic, histological and ultra-structural analysis. Acta Cirúrgica Brasileira - Vol 22 (1) - 12-21.

Lochmiller, R. L., & Grant, W. E. (1984). Serum chemistry of collared peccary (Tayassu tajacu). Journal Wildlife Disease, 20(2):134-140.

Manesh, Y. H., Hemmati, S., Shirooe, S., Nabavi, S. M., Bonakdar, A. T., Fayaznia, R., Asgardoon, M. H., Dehnavi, A. Z., Ghafouri, M., Wandiou, J. G.N., Caprioli, G., Sut, S., Maggi, F. Dall`acqua, S. (2019). Protective effects of hydroalcoholic extracts from an ancient apple variety ‘Mela Rosa dei Monti Sibillini’ against renal ischemia/reperfusion injury in rats. Food Funct, 10, 7544-7552

.

Monteiro R, Brandau R, Gomes WJ, Braile. DM. (2009). Tendências em experimentação animal. Revista Brasileira Cirurgia Cardiovascular, 24(4): 506-513.

Moon, K. H. et al. (2016). Kidney diseases and tissue engineering. Methods, 99, 112-119.

Pires, M. A, Travassos, F. S., Gärtner, F. (2004). Atlas de Patologia Veterinária. Ed. Lidel, Lisboa.

Roso, N. C. (1998). Estudo da proteção renal durante a isquemia e reperfusão em: Sampaio, I. B. M. Estatística aplicada à experimentação animal. Belo Horizonte: Fundação de Ensino e Pesquisa em Medicina Veterinária e Zootecnia. 221p.

Santos, R. V. Merline, M. B., Souza, L. P., Machado, V. M. V., Pantoja, J. C. F., & Prestes, N. C. (2013). Ultrassonografia Doppler na avaliação renal de cadelas diagnosticadas com piometra antes e após tratamento com ovariosalpingohisterectomia. Pesquisa Veterinária Brasileira. 33(5):635-642.

Schroppel, B., & Legendre, C. (2014). Delayed kidney graft function: from mechanism to translation. Kidney international, 86(2), 251-258.

Semedo, P., Donizetti-Oliveira, C., Burgos-Silva, M., et al. (2010). Bone marrow mononuclear cells attenuate fibrosis development after severe acute kidney injury. Lab Invest, 90: 685–695.

Singh, A. P. (2012). Animal models of acute renal failure. Pharmacological Reports, v. 64, p. 31-44.

Sousa, D. L. (2019). Efeito protetor do óleo essencial de Cymbopogon citratus na injúria de células renais induzidas por isquemia e reperfusão: estudo In vitro e In silico. (DISSERTAÇÃO) – Universidade Federal do Ceará.

Strutz, F., & Neilson E. G. (2003). New insights into mechanisms of fibrosis in immune renal injury. Springer Semin Immunopathol. 24(4):459-76.

Waki, M. F., Martorelli C. R., Mosko P. E., & Kogika M. M. (2010). Classificação em estágios da doença renal crônica em cães e gatos: abordagem clínica, laboratorial e terapêutica. Ciência Rural, 40, 2226-22

Weng, X., Li, S., Qin, Z., Xie, Y., Song, Q., Zhu, Q., & Song, D. (2018). Protective Effect of Nicotinamide Adenine Dinucleotide Phosphate on Renal Ischemia-Reperfusion Injury. Kidney Blood Press Res., v. 43, n. 3, p. 651–663.

Yamaki, I. N., Pontes, R. V. S., Costa, F. L. S., Yamaki, V. N., Teixeira, R. K. C., R Yasojima, E. Y., & Brito, M. V. H. (2016). Síndrome De Isquemia E Reperfussão Renal: Efeito Da Lidocaína E Do Pós-condicionamento Local, Rev. Col. Bras. Cir. 348-353.

Yamaki, V. N., Gonçalves, T. B., Coelho, J. V. B., Pontes, R. V. S., Costa, F. L. S., & Brito, M. V. H. (2012). Efeito Protetor Do Per-condicionamento Isquêmico Remoto Nas Lesões Da Síndrome De Isquemia E Reperfusão Renal Em Ratos, Rev. Col. Bras. Cir., 529-533.

Zhao, M., Zhou, Y., Liu, S., Li, L., Chen, Y., Cheng, J., Lu, Y., & Liu, J. (2018). Control release of mitochondria-targeted antioxidant by injectable self-assembling peptide hydrogel ameliorated persistent mitochondrial dysfunction and inflammation after acute kidney injury. Drug Delivery, 25(1), 546–554.

Downloads

Publicado

23/03/2022

Como Citar

HONORATO, R. dos A. .; FEITOSA, M. L. T. .; SILVA, L. dos S. .; CARVALHO, M. A. M. de .; PAREDES, A. de O. .; ANGELIM, N. B. de A. .; SOUZA, R. dos A. . Obliteração sanguínea renal transitória como alternativa ao estudo da síndrome de isquemia-reperfusão renal em modelo animal. Research, Society and Development, [S. l.], v. 11, n. 4, p. e43911427338, 2022. DOI: 10.33448/rsd-v11i4.27338. Disponível em: https://rsdjournal.org/index.php/rsd/article/view/27338. Acesso em: 27 jul. 2024.

Edição

Seção

Ciências Agrárias e Biológicas