Obliteração sanguínea renal transitória como alternativa ao estudo da síndrome de isquemia-reperfusão renal em modelo animal
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v11i4.27338Palavras-chave:
Catetos; Isquêmia-reperfusão; Modelo animal; Nefropatias.Resumo
Este trabalho visa avaliar a viabilidade do método de obliteração sanguínea renal transitória como alternativa ao estudo da SIR renal em catetos (Tayassu tajacu), tendo em vista a provável similaridade morfofisiológica desta espécie com os humanos, uma vez que a mesma apresenta proximidade filogenética com o suíno doméstico. Foram utilizados oito animais, os quais foram submetidos a procedimento cirúrgico para indução de nefropatia isquêmica mediante clampeamento dos vasos renais com pinça vascular por 60 minutos. Foram colhidas amostras para mensuração sérica de ureia, creatinina e relação proteína / creatinina urinária – UPC, além de avaliação ultrassonográfica renal, ambos antes da indução e no 10º e 20º dias pós-indução, e coleta de material para exames histopatológicos. Os resultados demonstraram diferença nos níveis de resistividade renal entre os momentos avaliados, aumento de ecogenicidade renal com perda da relação córtico-medular e presença de discretas alterações glomerulares e várias alterações túbulointersticiais na análise histopatológica. Concluiu-se que o cateto caracteriza-se como um bom modelo experimental para estudos de nefropatias isquêmicas induzidas, contudo faz-se necessário a padronização de seus parâmetros bioquímicos renais, sorológicos e urinários em regime nutricional idêntico, haja visto a grande variabilidade de tais dados dentro da espécie.
Referências
Almeida, A. M. B., Nogueira Filho, S. L. G., Nogueira, S. S. C., & Munhoz, A. D. (2011). Aspectos hematológicos de catetos (Tayassu tajacuI) mantidos em cativeiro. Pesq. Vet. Bras. 31 (2):173-177.
Alves, M. A. R. (2004). Diagnóstico de Doença Renal Crônica: Avaliação de Proteinúria e Sedimento Urinário. J Bras Nefrol. 26(3).
Anders, H. J., & Ryu M. (2011) Renal microenvironments and macrophage phenotypes determine progression or resolution of renal inflammation and fibrosis. Kidney Int 80: 915–925.
Aparício, P. M. G. (2004). Fisiología reproductiva y desarrolo de métodos diagnósticos del estado reproductivo de La hembra de pecari de collar (Tayassu tajacu Linnaeus, 1758) de la Amazônia. Tese de Doutorado em Sanidade Animal, Facultat de Veterinària, Universitat Autònoma de Barcelona, Barcelona. 146p.
Associação Brasileira de Transplante de Órgãos (ABTO). (2013). Dados numéricos da doação de órgãos e transplantes realizados por estado e instituição no período: janeiro / setembro – 2013. Registro Brasileiro de Transplantes. Ano XIX.
BanaeI, S. 2015). Novel role of microRNAs in renal ischemia reperfusion injury. Renal failure, 37(7), 1073-1079.
Bezerra, D. O., Feitosa, M. L. T., Almeida, H. M., Costa, F. A. L., Braga, J. F. V., Souza, F.A. L., Alves, F.R., Pessoa, G. T., & Carvalho, M. A. M. (2014). Collared Pecary (tayassu tajacu) as a new model of renal ischemic injury inducedby clamping the renal artery. Acta Cirúrgica Brasileira. 29 (9), 560-572.
Bragato, N., Fioravanti, M. C. S., Braga. L. G., Reis, D. C., & Borges, N. C. (2015). Lesão renal tubular aguda em cães e gatos: fisiopatogenia e diagnóstico ultrassonográfico. Enciclopédia biosfera, Centro Científico Conhecer - Goiânia, v.11 n.22, p.
Costa, M. F. B. (2019). Efeito nefroprotetor do extrato alcoólico de Lippia sidoides em modelos de lesão renal aguda por isquemia/reperfusão. (DISSERTAÇÃO) – Universidade Federal do Ceará.
Farris, A. B., & Alpers, C. E. (2014). What is the best way to measure renal fibrosis?: A pathologist’s perspective. Kidney Int Suppl. 4(1): 9–15.
Forrester, S. D. (2008). Nefropatias e Ureteropatias. In Birchard, S. J., Sherding, R. G. Manual Saunders – Clínica de Pequenos Animais. 3ª ed., São Paulo: Editora Roca, p. 1001.
Galvez C. H., Montoya G. E., Nofre Sanchez P., Schettini Z. L, &Mendoza B. P. (2004). Sanidad em el manejo del sajino (Tayassu tajacu) en el trópico. VI Congresso International sobre Manejo de Fauna Silvestre en la Amazonia y Lationamerica, 5-10 septembre, Iquitos, Peru, p.38. (Resumo)
Grauer G. F. (2011). Proteinuria: measurement and interpretation. Top Companion Anim Med. 26(3):121-7.
Kezic, A. et al. (2016). Mitochondria-Targeted Antioxidants: Future Perspectives in Kidney Ischemia Reperfusion Injury. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, v. 2016, 12p.
Jeong, B. Y., Park, S., Cho, S., Yu, S., Lee, H. Y., Park, C. G., Kang, J., Jung, D., Park, M. H., Hwang, W., Yun, S., Jung, J., Yoon, S. (2018) TGF- b -mediated NADPH oxidase 4-dependent oxidative stress promotes colistin-induced acute kidney injury. Journal Antimicrob Chemother, 73, 962–972.
Konopka, C. L., Jurach, A., & Wender, O.C.B. (2007). Experimental model for the study of chronic renal ischemia in rats. Morphologic, histological and ultra-structural analysis. Acta Cirúrgica Brasileira - Vol 22 (1) - 12-21.
Lochmiller, R. L., & Grant, W. E. (1984). Serum chemistry of collared peccary (Tayassu tajacu). Journal Wildlife Disease, 20(2):134-140.
Manesh, Y. H., Hemmati, S., Shirooe, S., Nabavi, S. M., Bonakdar, A. T., Fayaznia, R., Asgardoon, M. H., Dehnavi, A. Z., Ghafouri, M., Wandiou, J. G.N., Caprioli, G., Sut, S., Maggi, F. Dall`acqua, S. (2019). Protective effects of hydroalcoholic extracts from an ancient apple variety ‘Mela Rosa dei Monti Sibillini’ against renal ischemia/reperfusion injury in rats. Food Funct, 10, 7544-7552
.
Monteiro R, Brandau R, Gomes WJ, Braile. DM. (2009). Tendências em experimentação animal. Revista Brasileira Cirurgia Cardiovascular, 24(4): 506-513.
Moon, K. H. et al. (2016). Kidney diseases and tissue engineering. Methods, 99, 112-119.
Pires, M. A, Travassos, F. S., Gärtner, F. (2004). Atlas de Patologia Veterinária. Ed. Lidel, Lisboa.
Roso, N. C. (1998). Estudo da proteção renal durante a isquemia e reperfusão em: Sampaio, I. B. M. Estatística aplicada à experimentação animal. Belo Horizonte: Fundação de Ensino e Pesquisa em Medicina Veterinária e Zootecnia. 221p.
Santos, R. V. Merline, M. B., Souza, L. P., Machado, V. M. V., Pantoja, J. C. F., & Prestes, N. C. (2013). Ultrassonografia Doppler na avaliação renal de cadelas diagnosticadas com piometra antes e após tratamento com ovariosalpingohisterectomia. Pesquisa Veterinária Brasileira. 33(5):635-642.
Schroppel, B., & Legendre, C. (2014). Delayed kidney graft function: from mechanism to translation. Kidney international, 86(2), 251-258.
Semedo, P., Donizetti-Oliveira, C., Burgos-Silva, M., et al. (2010). Bone marrow mononuclear cells attenuate fibrosis development after severe acute kidney injury. Lab Invest, 90: 685–695.
Singh, A. P. (2012). Animal models of acute renal failure. Pharmacological Reports, v. 64, p. 31-44.
Sousa, D. L. (2019). Efeito protetor do óleo essencial de Cymbopogon citratus na injúria de células renais induzidas por isquemia e reperfusão: estudo In vitro e In silico. (DISSERTAÇÃO) – Universidade Federal do Ceará.
Strutz, F., & Neilson E. G. (2003). New insights into mechanisms of fibrosis in immune renal injury. Springer Semin Immunopathol. 24(4):459-76.
Waki, M. F., Martorelli C. R., Mosko P. E., & Kogika M. M. (2010). Classificação em estágios da doença renal crônica em cães e gatos: abordagem clínica, laboratorial e terapêutica. Ciência Rural, 40, 2226-22
Weng, X., Li, S., Qin, Z., Xie, Y., Song, Q., Zhu, Q., & Song, D. (2018). Protective Effect of Nicotinamide Adenine Dinucleotide Phosphate on Renal Ischemia-Reperfusion Injury. Kidney Blood Press Res., v. 43, n. 3, p. 651–663.
Yamaki, I. N., Pontes, R. V. S., Costa, F. L. S., Yamaki, V. N., Teixeira, R. K. C., R Yasojima, E. Y., & Brito, M. V. H. (2016). Síndrome De Isquemia E Reperfussão Renal: Efeito Da Lidocaína E Do Pós-condicionamento Local, Rev. Col. Bras. Cir. 348-353.
Yamaki, V. N., Gonçalves, T. B., Coelho, J. V. B., Pontes, R. V. S., Costa, F. L. S., & Brito, M. V. H. (2012). Efeito Protetor Do Per-condicionamento Isquêmico Remoto Nas Lesões Da Síndrome De Isquemia E Reperfusão Renal Em Ratos, Rev. Col. Bras. Cir., 529-533.
Zhao, M., Zhou, Y., Liu, S., Li, L., Chen, Y., Cheng, J., Lu, Y., & Liu, J. (2018). Control release of mitochondria-targeted antioxidant by injectable self-assembling peptide hydrogel ameliorated persistent mitochondrial dysfunction and inflammation after acute kidney injury. Drug Delivery, 25(1), 546–554.
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