Combinação de monensina, virginiamicina, micros minerais e leveduras sobre o perfil bioquímico no sangue e stress oxidativo no plasma, fígado e músculo de bovinos alimentados com dieta de alto grão
DOI:
https://doi.org/10.33448/rsd-v9i11.9918Palavras-chave:
Aditivos naturais; Atividade antioxidante; Carbonilação de proteínas; Glutationa peroxidase.Resumo
Este trabalho foi realizado para avaliar o efeito da combinação da monensina, virginiamicina e micros minerais + leveduras (Avantage-Confinamento®) sobre o hemograma, estresse oxidativo e atividade antioxidante no plasma sanguíneo, fígado e músculo de bovinos alimentados com dieta alto grão. Um total de 36 touros (Europeu vs. Nelore), com idade média de 24 ± 3,2 meses e peso vivo médio inicial de 385,5 ± 3,84 kg foram distribuídos em um delineamento inteiramente casualizado, com quatro dietas e nove repetições por dieta. A dieta basal foi composta por 850 g/kg de MS de concentrado e 150 g/kg de MS de silagem de milho, fornecida ad libitum por 84 dias. A composição da dieta foi a mesma para todos os animais. As quarto dietas foram: CONT – dieta basal; MONE – dieta basal e inclusão de 30 mg/kg de matéria seca de monensina; MO+VI – dieta basal e inclusão de 30 mg/kg de monensina + 30 mg/kg da matéria seca de virginiamicina; MO+AD – dieta basal e inclusão de 30 mg/kg de monensina + 3,0 g/kg da matéria seca de micros minerais e Saccharomyces cerevisiae (Advantage™ Confinamento). Dentre as variáveis relacionadas ao perfil bioquímico, houve alteração no volume corpuscular médio, creatinina e ureia ao longo dos dias de confinamento. Os parâmetros de avaliação do fígado, avaliado por marcador oxidativo e antioxidante não foram influenciados pelas dietas experimentais. Para os parâmetros de avalição do estado oxidativo na carne, observou-se que inclusão dos aditivos reduziu o dano oxidativo, descarbonilação da proteína muscular, e que os bovinos alimentados com dietas suplementadas com monensina + virginiamicina ou monensina associada com microminerais + leveduras aumentaram a concentração muscular de GSH, em comparação a dieta CONT e MONE.
Referências
Arcuri, P. B., Lopes, F. C. F., Carneiro, J. C., & FUNEP. (2011). Microbiologia do rumen. In T. T. Berchielli, A. V Pires, & S. G. Oliveira (Eds.), Nutrição de Ruminantes (2th ed.), 115–148.
Aruoma, O. I. (1998). Free radicals, oxidative stress, and antioxidants in human health and disease. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 75(2), 199–212. https://doi.org/10.1007/s11746-998-0032-9.
Beal, M. F. (2002). Oxidatively modified proteins in aging and disease. Free Radical Biology and Medicine, 32(9), 797–803. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(02)00780-3.
Benzie, I. F. F., & Strain, J. J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239(1), 70–76.
Berchielli, T. T., Pires, A. V, Oliveira, S. G., & FUNEP. (2011). Nutrição de Ruminantes (2th ed.). FUNEP.
Bergen, W. G., & Bates, D. B. (1984). Ionophores: their effect on production efficiency and mode of action. Journal of Aimal Science, 58(6), 1465–1483.
Bergmeyer, H U, & Bergmeyer, J. (1985). Methods of enzymatic analysis, vol. VI. Verlag Chemie: Weinheim, Germany.
Bergmeyer, Hans Ulrich. (1987). Methods of enzymatic analysis. Journal of Clinical Pathology, 40(8), 934–934. https://doi.org/10.1136/jcp.40.8.934-a.
Buege, J. A., & Aust, S. D. (1978). [30] Microsomal lipid peroxidation. Methods in Enzymology, 52, 302–310. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(78)52032-6
Cocito, C. (1979). Antibiotics of the virginiamycin family, inhibitors which contain synergistic components. Microbiological Reviews, 43(2), 145–198. https://doi.org/10.1128/mmbr.43.2.145-192.1979.
Coe, M. L., Nagaraja, T. G., Sun, Y. D., Wallace, N., Towne, E. G., Kemp, K. E., & Hutcheson, J. P. (1999). Effect of virginiamycin on ruminal fermentation in cattle during adaptation to a high concentrate diet and during an induced acidosis. Journal of Animal Science, 77(8), 2259–2268. https://doi.org/http://jas.fass.org/content/77/8/2259.
Daun, C., & Åkesson, B. (2004). Glutathione peroxidase activity, and content of total and soluble selenium in five bovine and porcine organs used in meat production. Meat Science, 66(4), 801–807. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1016/S0309-1740(03)00178-5
Erasmus, L. J., Muya, C., Erasmus, S., Coertze, R. F., & Catton, D. G. (2008). Effect of virginiamycin and monensin supplementation on performance of multiparous Holstein cows. Livestock Science, 119(1–3), 107–115. https://doi.org/http://jas.fass.org/content/77/8/2259.
Fonseca, M. P., Borges, A. L. C. C., Silva, R. R., Lage, H. F., Ferreira, A. L., Lopes, F. C. F., Pancoti, C. G., & Rodrigues, J. A. S. (2016). Intake , apparent digestibility , and methane emission in bulls receiving a feed supplement of monensin , virginiamycin , or a combination. Animal Production Science, 56(7), 1041–1045. https://doi.org/10.1071/AN14742.
Goodrich, R. D., Garrett, J. E., Gast, D. R., Kirick, M. A., Larson, D. A., & Meiske, J. C. (1984). Influence of monensin on the performance of cattle. Journal of Animal Science, 58(6), 1484–1498. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/6378865
Gornall, A. G., Bardawill, C. J., & David, M. M. (1949). Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. Journal of Biological Chemistry, 177(2), 751–766.
Hissin, P. J., & Hilf, R. (1976). A fluorometric method for determination of oxidized and reduced glutathione in tissues. Analytical Biochemistry, 74(1), 214–226. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90326-2.
Hobson, P. N., & Stewart, C. S. (2012). Rumen microbial ecosystem (2nd ed.). Blackie Academic & Professional.
Jaffe, M. (1986). Quantitative colorimetric determination of creatinine in serum or urine. Z. Physiol. Chem, 10, 391–400.
Jain, N. C. (1993). Essentials of Veterinary Hematology. Wiley-Blackwell.
Kaneko, J. J., Harvey, J. W., & Bruss, M. L. (2008). Clinical biochemistry of domestic animals (6th ed.), 1. Academic press.
Konvičná, J., Vargová, M., Paulíková, I., Kováč, G., & Kostecká, Z. (2015). Oxidative stress and antioxidant status in dairy cows during prepartal and postpartal periods. Acta Veterinaria Brno, 84(2), 133–140. https://doi.org/10.2754/avb201584020133
Kramer, J. W. (2000). Normal hematology of cattle, sheep and goats. In B. F. Feldman, J. G. Zinkl, & N. C. Jain (Eds.), Schalm’s veterinary hematology, 5, 1075–1084. Lippincott Williams and Wilkins Philadelphia.
Kurz, M. W. (2004). Nutritional modulation of immunity and physiological responses in beef calves. Texas A&M University.
Ladikos, D., & Lougovois, V. (1990). Lipid oxidation in muscle foods: A review. Food Chemistry, 35(4), 295–314. https://doi.org/10.1016/0308-8146(90)90019-Z
Levine, R. L., Garland, D., Oliver, C. N., Amici, A., Climent, I., Lenz, A.-G., Ahn, B.-W., Shaltiel, S., & Stadtman, E. R. (1990). [49] Determination of carbonyl content in oxidatively modified proteins. Methods in Enzymology, 186, 464–478. https://doi.org/10.1016/0076-6879(90)86141-H
López-Alonso, M. (2012). Trace Minerals and Livestock: Not Too Much Not Too Little. ISRN Veterinary Science, 2012, 1–18. https://doi.org/10.5402/2012/704825
Marklund, S., & Marklund, G. J. (2007). Biochem catalytic activity of superoxide dismutase: A method based on its concentration-dependent constant decrease in rate of autoxidation of pyrogallol. Current Science, 47, 1481–1482.
Montano, M. F., Manriquez, O. M., Salinas-Chavira, J., Torrentera, N., & Zinn, R. A. (2015). Effects of monensin and virginiamycin supplementation in finishing diets with distiller dried grains plus solubles on growth performance and digestive function of steers. Journal of Applied Animal Research, 43(4), 417–425. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.1080/09712119.2014.978785.
Moreira, F. B., Prado, I. N., Cecato, U., Wada, F. Y., & Mizubuti, I. Y. (2004). Forage evaluation, chemical composition, and in vitro digestibility of continuously grazed star grass. Animal Feed Science and Technology, 113(1–4). https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2003.08.009
Nagaraja, T. G., Newbold, C. J., Van Nevel, C. J., & Demeyer, D. I. (2012). Manipulation of ruminal fermentation. In P. N. Hobson & C. S. Stewart (Eds.), The rumen microbial ecosystem 1, 523–632. Black Acaddemic & Professional.
Niki, E. (1999). Action of antioxidants against oxidative stress. In M. Dizdaroglu & A. E. Katarataya (Eds.), Advances in DNA Damage and Repair, 313–318. Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4615-4865-2_25.
Ornaghi, M. G., Guerrero, A., Vital, A. C. P., Souza, K. A., Passetti, R. A. C., Mottin, C., Araújo Castilho, R., Sañudo, C., & Prado, I. N. (2020). Improvements in the quality of meat from beef cattle fed natural additives. Meat Science, 163(108059), 108059. https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2020.108059
Pereira, A. S. et al. (2018). Metodologia da pesquisa científica. [eBook]. Santa Maria. Ed. UAB/NTE/UFSM. Recuperado de https://www.ufsm.br/app/uploads/sites/358/2019/02/Metodologia-da-Pesquisa-Cientifica_final.pdf
Pereira, M. C. S., Rigueiro, A. L. N., Oliveira, C. A., Soutello, R. V. G., Arrigoni, M. de B., & Millen, D. D. (2018). Different doses of sodium monensin on feedlot performance, carcass characteristics and digestibility of Nellore cattle. Acta Scientiarum. Technology, 41, e34988--e34988. https://doi.org/10.4025/actascitechnol.v41i1.34988.
Rigueiro, A. L. N., Pereira, M. C. S., Squizatti, M. M., Ferreira, M. M., Dondé, S. C., Luiz, F. P., Silvestre, A. M., Muller, L. R., Garcia, C. P., Bueno, A. P. D., Toledo, L. V, Estevam, D. D., Martins, C. L., Arrigoni, M. D. B., & Millen, D. D. (2020). Different combinations of sodium monensin and virginiamycin during feedlot finishing of Nellore cattle. Animal Production Science, 60(8), 1061–1072. https://doi.org/https://doi.org/10.1071/AN18657.
Rivaroli, D. C., Del Mar Campo, M., Sañudo, C., Guerrero, A., Jorge, A. M., Vital, A. C. P., Valero, M. V., Prado, R. M., & Prado, I. N. (2020). Effect of an essential oils blend on meat characteristics of crossbred heifers finished on a high-grain diet in a feedlot. Animal Production Science, 60(4), 595–602. https://doi.org/10.1071/AN18620
Sá-Nakanishi, A. B., Soni-Neto, J., Moreira, L. S., Gonçalves, G. A., Silva, F. M. S., Bracht, L., Bersani-Amado, C. A., Peralta, R. M., Bracht, A., & Comar, J. F. (2018). Anti-Inflammatory and Antioxidant Actions of Methyl Jasmonate Are Associated with Metabolic Modifications in the Liver of Arthritic Rats. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2018, 2056250. https://doi.org/10.1155/2018/2056250
Sánchez-Valle, V., Chavez-Tapia, N. C., Uribe, M., & Méndez-Sánchez, N. (2012). Role of oxidative stress and molecular changes in liver fibrosis: a review. Current Medicinal Chemistry, 19(28), 4850–4860.
SAS. (2004). SAS/STAT User guide, Version 9.1.2. SAS Institute Inc.
Schelling, G. T. (1984). Monensin mode of action in the rumen. Journal of Animal Science, 58(6), 1518–1527.
Silva, M., Lima, W. G., Silva, M. E., & Pedrosa, M. L. (2011). Efeito da estreptozotocina sobre os perfis glicêmico e lipídico e o estresse oxidativo em hamsters. Arquivos Brasileiros de Endocrinologia & Metabologia, 55(1), 46–53. https://doi.org/10.1590/S0004-27302011000100006.
Souza, K. A., Ramos, T. R., Bonin, E., Carvalho, V. M., Guerrero, A., Bagaldo, A. R., Cecato, U., & Prado, I. N. (2020). Performance and immune response of steers Nellore finished in feedlot and fed diets containing dry leaves of Baccharis dracunculifolia. Research, Society and Development, 9(10), e339107776. https://doi.org/10.33448/rsd-v9i10.7776
Thrall, M. A. (2015). Hematologia e Bioquímica Clínica Veterinária. In 2. ed. Editora Roca.
Valadares Filho, S. C., Costa e Silva, L. F., Gionbelli, M. P., Rotta, P. P., Marcondes, M. I., Chizzotti, M. L., & Prados, L. F. (2016). Exigências nutricionais de zebuínos puros e cruzado - BR-Corte (Vol. 1). Universidade Federal de Viçosa. https://doi.org/10.5935/978-85-8179-111-1.2016b001.
Valadares Filho, S. C., Pina, D. S., & FUNEP. (2011). Fermentação ruminal. In T. T. Berchielli, A. V Pires, & S. G. Oliveira (Eds.), Nutrição de Ruminantes (2th ed.), 161–192. FUNEP.
Weiss, W. P. (2005). Antioxidant nutrients, cow health, and milk quality. Dairy Cattle Nutrition Workshop, Department of Dairy and Animal Sciences, Penn State, 11–18.
Witzig, M., Zeder, M., & Rodehutscord, M. (2018). Effect of the ionophore monensin and tannin extracts supplemented to grass silage on populations of ruminal cellulolytics and methanogens in vitro. Anaerobe, 50, 44–54. https://doi.org/https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2018.01.012.
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